神経細胞型の表面のためのフローサイトメトリーのプロトコルおよび細胞内抗原解析

Summary

神経細胞型の表面抗原および/または細胞内抗原のフローサイトメトリー分析のためのプロトコルの詳細な説明を提供します。実験計画の重要な側面、段階的な方法論的手順、およびフローサイトメトリーの基本原理が説明され、神経生物学者がこの強力な技術を活用できるようになります。

Abstract

フローサイトメトリーは、免疫学、血液学、腫瘍学における細胞集団を定義するために広く使用されてきました。ここでは、神経細胞型における分化(CD)表面抗原および細胞内抗原のクラスターのフローサイトメトリー解析のためのプロトコルについて詳しく説明します。方法論的手順の段階的な説明には、神経in vitro培養物の回収、オプションのカルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル(CFSE)標識ステップ、その後の標識CD抗体(CD24、CD54など)による表面抗原染色、その後の一次/二次抗体または蛍光標識Fabフラグメントによる細胞内抗原検出(ゼノン標識)が含まれます。このビデオでは、最も重要な手順を示しています。さらに、実験計画の原則、重要なコントロールの包含、およびフローサイトメトリー解析の基本(ターゲット集団の特定とデブリの排除、ゲーティング戦略、スペクトルオーバーラップの補正)について簡単に説明し、フローサイトメトリーの予備知識が限られている神経生物学者がその有用性を評価し、この強力な方法論をより有効に活用できるようにします。

Introduction

フローサイトメトリーを広範囲に固有の散乱特性、細胞表面抗原の発現、および他の蛍光パラメーター^1-3を介して細胞集団を定義するために、免疫学、血液学および腫瘍学に ​​おいて利用されてきた。血液系統の開発および疾患に私達の洞察は、その初期の実装^4,5の後にこの方法論の連続洗練の有意な程度の結果である。フローサイトメトリーの定量的および全体的な分析的な潜在意識の高まりは、最近、幹細胞研究におけるそのより広範な使用を奨励している短い時間枠⁶と同様に深い進歩を可能にすることができる。しかし、特に神経集団を分析し、単離するためのフローサイトメトリーの適用は、長い挑戦として認識されている。当然、懸濁液中に存在する造血細胞とは対照的に、神経細胞型は、典型的には、グリアおよび様々Oを含んでいてもよい過度に複雑なソースから収穫するTHER周囲の細胞ならびにプロセス有利子ニューロンの複雑なネットワーク。したがって、神経生物学、毎日研究ルーチンでの完全な電位にフローサイトメトリーの多様性を実現するために至っていない。しかし、神経生物学における分析レパートリーの貴重な要素とみなすことができる限り、生存単一細胞懸濁液を生成することができる（およびプロトコルは、その目的の⁷のために考案し、最適化されている）として、フローサイトメトリーおよび蛍光活性化細胞選別（FACS） ^8-11。

。流体工学、光学、エレクトロニクス： フローサイトメトリー分析フローサイトメーターの構成要素の、図1の原理フローサイトメーターは、3つの主要な系を含む。 （一次組織から、またはインビトロ培養中で調製）懸濁液中の細胞の層流をシースfluiによって達成される流体力学経由dは、その中心コアにサンプルを限定フォーカシング。光学部品は、適切な検出器に信号を導く細胞および光学フィルタのストリームを照らすレーザーで構成されている。検出された光信号は、電気信号に変換し、その後、コンピュータで処理し、データ分析とゲーティングのためのモニター上で可視化されている。この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

サイトメーターのビルディングブロックを含む根本的なファンダメンタルズの少なくとも基本的な理解から、フローサイトメトリー法利益のユーザーは、（レビューのために^12,13を参照してください。また、 図1を参照）。レーザビームは、次に、「単一のファイル」次々レーザビームを通過懸濁液中の細胞を含み、流体力学的に集束流体の流れと交差する。 interceptiこの呼掛け点からの光の散乱レーザ結果と細胞（またはそのことについては、他の粒子）の上。散乱光は、レーザー方向（粒の大きさに関連付けられた前方散乱）、ならびにその方向に垂直な（;粒子/細胞のgranulosityを反映する側方散乱）を連続して検出することができる。これらの前述の散乱特性は、（またまたは細胞破片、空気の泡、 など ）、非標識試料は、一般的に最初のゲーティングのために使用される側方散乱プロット変量前方散乱の信号（イベント）が生成されますなぜ特異的標識を必要としない。適切なレーザ及び対応する励起および発光スペクトルのために特定のフィルタを使用することにより、細胞は、その陽性、強度のレベル、または蛍光マーカーの非存在について分析することができる。フローサイトメトリー用途の大部分は、細胞表面抗原を介して特性評価に焦点を当てている。造血lineagとは異なり、eは、神経系統は、表面エピトープの発現パターン⁵によれば以下広く定義されて残っている。表面抗原を利用することの利点の一つは、生きている細胞は、FACSなどのパラダイムを選別細胞を施すことができることである。これとは対照的に、細胞内抗原の染色は、生細胞を必要とする下流の適用を排除する、エピトープ - 抗体相互作用を媒介するために固定および透過手順が必要です。注目すべきは、このようなアプローチは、まだ数多くの定量的アッセイ¹⁴だけでなく、RNAとタンパク質発現の¹⁵のための下流の分析を可能にします。血液学、免疫学および腫瘍学は、多くの場合、特定の部分集団^16を定義するために連携してダース以上のマーカーを使用してきた。さらに、質量フローサイトメトリーまたはCyTOFは現在30のパラメータを同時に^17,18まで分析することができる。

神経幹細胞の用途、ならびに初代培養物における細胞の不均一性のために^14,19,20体外は一般的な現象で^21-23です。興味のある標的集団を代表していない細胞は、実験的な読み出し^24,25のための潜在的交絡因子を具現化。好都合には、不均一な細胞懸濁液中に存在する異なる細胞のサブセットは、これらの様々な集団を定義するために利用することができる抗原の発現プロファイル、（既知の、またはまだ解読する）別個に耐える。したがって、細胞の不均一性を解決する際に重要な役割を果たし、それによって、（in vitroアッセイ 、細胞療法における ）生物医学的適用を容易にし、最も関連性のサブセット^24,26に着目して定量的な読み出しを最適化することができるフローサイトメトリー。種々の表面抗原の組み合わせは、特定の神経細胞型の定量および単離を可能にするために、過去数年にわたって確認されている。これは、神経幹細胞^27、NSCの単離のためのCD15 / CD24 / CD29表面抗原の組み合わせの濃縮にCD133を含み、差異他の署名^29,30の中で、神経およびグリアサブセット^25を分離するためのテッドニューロンと神経堤細胞²⁸またはCD15 / CD24 / CD44 / CD184 / CD271。ニューロンを超えて、グリアマーカーは、A2B5 ^{31、CD44 25、NG2 32}とGLAST ^33が含まれ^ています。最近の出版物は、パーキンソン細胞移植におけるドーパミン作動性前駆体を濃縮するために、中脳底板前駆体マーカーコリン^34,35を36パラダイムに利用している。 CD分子は、マーカーが、細胞-細胞相互作用および細胞外マトリックス分子および成長^因子37からの合図に応答する細胞の能力の機能的に関連するメディエーターだけではない。さらに、神経系統の発達を特徴づけるために、コンビナトリアルCD抗原の武器を強化する一つの戦略は、目的の特定の細胞型のためのCD抗原の組み合わせをスクリーニングし、定義することが知られている細胞内マーカーを使用することである。我々は最近、このようなアプローチを悪用し、CD4を特定した9F ^- / CD200神経に分化誘導された多能性幹細胞培養系³⁸からのニューロンのサブセットを豊かにするための新しいアプローチとして^高い組合せ発現パターン。ここでは、表面染色および細胞内染色は、フローサイトメトリーにより神経細胞の亜集団を定義するために同時に使用することができる後者のプロトコル（およびその任意の変形）を議論する。

実験プロトコルオプションの図2のフロー図は図は、プロトコルに関与する主要な工程の概略図を示している。任意の工程（CFSE色素または細胞内抗原の標識は）ライトグレーのボックスで示されます。収穫後、細胞表面染色の前に、神経細胞懸濁液の生存度および細胞数を評価することが不可欠である。陽性と同様にネガティブコントロールは、対象のサンプルに加えて、含まれる必要がある。サンプルは、フローサイトメトリー分析によって分析および/ ​​または細胞ソーティングパラダイムで使用することができる。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

我々は以前に細胞内染色³⁸二次抗体と組み合わせて一次抗体を使用しているが、我々は今、それによって細胞操作³⁹のステップを減らす、わずかな変化などの蛍光Fab断片（Zenon標識）を介して一次抗体の非共有結合標識を導入する。また、プロトコルの汎用性のさらなる例としては、抗原染色表面の前スクシンイミジルエステル（CFSE）のカルボキシフルオレセインずつの実験のサブセットの任意の標識を使用する。このようなCFSEプレ標識は（2つの細胞株または実験条件の即時の直接比較を可能にする対 CFSE標識。分散またはインキュベーション時間の微妙な違いを削減し、抗体を保存する、単一のサンプルチューブ内で）標識されていない。 CFSEは、一般的に増殖^41,42及びバーコード実験^43,44において、細胞追跡⁴⁰のために使用される確立された蛍光色素である。最後に、ここで説明収穫とラベル付けの手順は実行し、実際のソート·ステップ（FACS、免疫磁気細胞分離またはイムノ）は原則的に、このプロトコルの一部ではありませんが、降伏抗原表面受けることができるサンプルまたは細胞内のラベルベースの​​並べ替えのアプリケーション^{15 25,28。}

この記事では、我々はを目指し：として細胞内のCFSE色素標識工程^41,45を提示^し 、細胞内の標的の検出のためのプロトコルとしてだけでなく、組み合わせた表面と細胞内の抗原解析^38をまとめ、実行可能な表面抗原染色プロトコル^25,28をまとめるcomのための実験的なオプションparativeは、神経細胞集団の解析、およびサイトメトリー分析を（適切なコントロール^13,46、戦略およびデータプレゼンテーション^47をゲート制御）流れるようにアプローチをまとめる。

Protocol

1.神経細胞の回収

1. 顕微鏡による評価：
   1. 実験を開始する前に、明視野または位相差顕微鏡による培養物の状態を確認。
      注：解剖から得られた一次神経組織ではあるが、原則的に、均等に影響を受けやすいサイトメトリー分析^14,28を流れるように、プロトコルの焦点はインビトロ神経細胞システムから得られた細胞であることに注意してください。
2. 収穫細胞^7：
   1. RT（ 例えば 、T75フラスコに5 mlの6ウェルプレートにウェル当たり3ミリリットル、または10 mlの優しく/ Ca ²⁺のMgを有する接着細胞の皿/フラスコを洗浄^2+を含まないリン酸緩衝生理食塩水（PBS） 10cmディッシュ）。
      注：PBSをプロトコル全体で使用さは、Mg ²⁺ / Ca ²⁺の自由である。
      1. ビデオ例えば、80％のコンフルエンシーでSH-SY5Y神経芽細胞腫細胞のT75フラスコを使用する。例ここで追加の洗浄工程を適用しますかなりの破片が皿の中の存在である。
      2. 血清アルブミンを含むPBS ^48を 、パーコール、またはフィコール⁴⁹遠心分離勾配および/ ​​または市販のビーズ^50,51との洗浄を考慮してください。ミエリンおよび他の脂質または他の汚染物質の除去は、成人原発組織源が使用されている場合は特に重要である。
   2. 組織培養容器の表面全体を覆​​って適切な音量で予め温めておいた（37℃）トリプシン置換を加える。
      注：あるいは、のAccutaseまたは他の酵素消化のオプションを検討してください。この重要な工程は、負^（7参照）表面エピトープの発現に影響を及ぼし得る。
   3. 細胞は切り離すことができるように（細胞型に応じて）を5分間2 - 37℃で皿/フラスコをインキュベートする。静かに細胞を取り除くために、血清学的ピペットで組織培養容器またはフラッシュをタップします。 （このように、後の工程での細胞の損失および凝固を引き起こす可能性があります）消化の上は避けてください。
   4. Q二回フローバッファー（PBS中の2％FBS）の体積を添加することによりトリプシン交換uenchし、15mlコニカルチューブ中で細胞を集める。
   5. 単一細胞懸濁液を調製するために - （1,000μlの100）または5ミリリットルの血清学的ピペットを穏やかにマイクロピペットを用いて細胞懸濁液を粉砕する。
   6. 25℃で5分間、220×gで細胞を集める。慎重に後ろにペレットを残して上清を吸引除去する。
   7. フローバッファの適切な体積でペレットを再懸濁ペレット（ 例えば、サイズに応じて、SH-SY5Y細胞の一つコンフルエントT75フラスコのための典型的な収率は、少なくとも10×10 ^6個の細胞を、ケース内のセルであるフロー緩衝液5ml）中に再懸濁する。
      注： - 100μmのメッシュ大きなチャンクまたは凝固が認められた場合、30を介してフィルタリングする。
3. ^52を数えるセル：
   1. trは、体積で定義された比率で微量遠心管に細胞懸濁液の少量のアリコートを移し、希釈血球計または自動細胞計数システムへの転送前にypan青または代替可能性染料。
   2. （CFSE標識に進む場合）0.1％BSAでフローバッファーまたはPBSの適切な体積を添加することによって、1×10 ⁶生細胞/ mlの濃度の細胞懸濁液を希釈する。
      NOTE：ヨウ化プロピジウム、7-アミノD、アネキシンV及び市販の固定可能な生存率アッセイキットは、細胞の生存率を評価するための代替オプションを表す。また、先に記載⁵³のようにカスパーゼ3蛍光を用いてアポトーシスアッセイを使用することができる。蛍光チャネルは、すべてのサンプルに含まれている場合、後続のステップのためのオプションが制限される場合があり、これらの試薬により「占有」されます。

CFSEを使用して2細胞内の色素の標識（図3）

1. 容易に使用することができ、所望のストック濃度にCFSE希釈する。
   注：これらの実験のためのストック濃度0.01ミリモルを用いた。経験的にCFSEの最適な使用濃度を決定します。
2. 0.1μMの最終濃度のために細胞（ セクション1.3.2、PBS + 0.1％BSA中1×10 ⁶細胞/ mlの濃度）の1mlあたり0.01 mMのCFSE溶液10μlを追加します。簡単に言えば渦はよく混合する。
   注：ここで使用CFSE濃度は、一般的に増殖アッセイに適用されるものよりも約10倍低い、染料のため、細胞毒性は最小限に抑えられます。我々は、細胞の生存率にマイナスの効果を観察しないでください。
3. 絶えず振盪（200rpm）しながら室温で5分間インキュベートする。光から保護します。
4. チューブに流れバッファの5ボリュームを追加することで染料を消光。 RTで5分間94×gで遠心分離する。
5. 背後にペレットを残して上澄みを捨てる。フロー·バッファの5ボリュームで細胞を再懸濁する。
6. RTで5分間94×gで遠心分離する。 / 1×10 ⁶細胞の濃度で上清を、フロー緩衝液中の再懸濁細胞を捨てるミリリットル。
7. 染色された細胞懸濁液に興味のある非染色細胞の数と同じ数を追加します。抗原染色プロトコル（ 第3節 ） を表面に進みます。

CFSE色素標識を介して2つの細胞株の間の差動CD表面抗原発現の図3の検出。SH-SY5Y神経芽腫細胞を非標識BJ線維芽細胞と比較して、後続の識別のためCFSEで予め標識されている。表面マーカーCD24またはCD54（APCへの結合の両方）との混合試料（右パネル）の共染色は、細胞株によりCFSE染色（;矢頭= BJ線維芽細胞の矢印= SH-SY5Y）に容易に識別可能であることを示している。 SH-SY5Y細胞の大多数は、CD24ではないCD54（ICAM-1）を発現する。これとは対照的に、BJ線維芽細胞（CFSE陰性）は、CD54陽性であるが、CD24のための大部分はネガティブ。「https://www.jove.com/files/ftp_upload/52241/52241fig3highres.jpg "ターゲット=" _空白 ">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

3.細胞表面染色

1. サンプルおよびクリティカルコントロールを含むラベルチューブ（ 表1参照）。

チューブなし。	サンプル名	抗原フォア	希釈
1	非染色細胞	-
2	シングルステンド	CD24-APC	午前1時50分
3	シングルステンド	TUJ1-アレクサフルオロ488	1：2000
4	ステンドダブル	CD24-APC	午前1時50分
		TUJ1-アレクサフルオロ488	1：2000
5	シングルステンド	セカンダリのみ：アレクサフルオロ488	1：2000

典型的なフローサイトメトリー実験に含まれるチューブの表1. Lイスト。表には、このビデオの記事で説明した共染色実験に必要なサンプル管の最小セットを示しています。理想的な実験は、得られた結果の正確な解釈のために必要なすべての（正、負、ならびに補償制御）の制御を含む必要がある。

2. （ セクション2.7または1.3.2からの）各1.5ミリリットルマイクロ遠心チューブに100μlの細胞懸濁液を追加します。
   注：必ず、0.1×10 ⁶細胞の最小値は、細胞懸濁液100μlあたり存在していることを確認します。
3. 適切な希釈でサンプルにフォアコンジュゲートした抗体を追加します。
   注：実験前に各抗体の作業希釈を決定します。リストOについては、表2を参照してくださいF神経表面抗原。

抗原	細胞型	リファレンス
CD15	神経幹細胞	[28、67]
CD24	神経細胞	[28、68]
CD29	神経幹細胞	[28、69、70]
CD44	グリア細胞	[25]
たCD49f	神経幹細胞	[38]
CD56（NCAM）	神経細胞	[71]
CD133	神経幹細胞	[27]
CD184	神経幹細胞およびグリア細胞	[25]
CD200	神経細胞	[38]
CD271	神経堤幹細胞
A2B5	グリア細胞	[31]
コリン	ドーパミン作動性前駆体	[35、36]
FORSE1	神経幹細胞（NSC）	[72]
GLAST	グリア細胞	[33]
NG2	グリア細胞	[32]

神経表面抗原の表2の選択。この表は、神経系統を特徴づけるために使用される表面抗原の増加パネルを例示するために、様々な神経細胞タイプによって発現されることが見出され、表面エピトープのリストを提供する。この選択が完了し、これらのマーカーのほとんどは、他の神経および非神経細胞の範囲で表現されていることをほど遠いであることに注意してください。したがって、いくつかのマーカーの組み合わせは、より良い示さ神経サブセットを定義し、単離するために必要とされる。

暗闇の中でオービタルシェーカー（200 rpm）で30分間インキュベートする。
1. フロー緩衝液洗浄
   1. チューブに流れ緩衝液1mlを追加します。 4℃で4分間380×gで遠心し。
   2. 背後にペレットを残して上澄みを捨てる。
2. 再び洗浄ステップを繰り返します。
3. 2回目の洗浄の後、上清をデカントし、100μlの最終容量に流れバッファー中で細胞を再懸濁する。
4. フローサイトメトリー分析のためのサンプルを使用してください。また、 第4節と5に進みます。
   注：細胞が選別し、培養後のFACSに戻されるべきである場合（ つまり、固定または透過処理せずに実行可能な細胞懸濁液）は、収穫、染色および分析ステップの間に無菌技術を適用します。

4.固定および透過³⁸

1. パラホルムアルデヒド（PFA）を使用して固定。
   1. PBS中の2％PFAを含む固定バッファを準備します。
      
   2. 細胞懸濁液100μlに固定緩衝液500μlを追加。
   3. 暗闇の中でオービタルシェーカー（100 rpm）の上で室温で15分間チューブをインキュベートします。
2. PBS洗浄。
   1. チューブに1mlのPBSを追加します。 4℃で3分間380×gで遠心し。
   2. チューブに約100μlのを残して上清をデカント/捨てる。
3. Tween-20を持つ透過化：
   1. PBS中の0.7％のTween-20を含む透過化バッファを準備します。
   2. 細胞懸濁液100μlに透過化緩衝液500μlを追加。
   3. 暗闇の中でオービタルシェーカー（100 rpm）の上で室温で15分間チューブをインキュベートします。
4. （4.2節で説明したように）をPBSで細胞を1回洗浄し、チューブのcoから上清を除去mpletely、背後にある唯一のペレットを残す。

5.細胞内抗原染色^38（図4）

1. 一次抗体溶液の調製：
   1. 1％ウシ血清アルブミン、10％血清（ 例えば、正常ロバ又はヤギ血清）および0.5％Tween-20をPBS中に含有する希釈緩衝液中の一次抗体を希釈する。
      注：二次抗体がで提起された種に応じて、使用する血清を選択してください。
   2. また、メーカーの指示に従って、一次抗体のゼノンフルオレセイン標識を使用しています。
      1. 適切な希釈（20μlの≤総量）でPBS中に一次抗体1μgのを準備します。
      2. 抗体溶液にゼノンフルオレセインのIgG標識試薬（成分A）の5μlを添加する。
      3. RTで5分間混合物をインキュベートする。
      4. 反応混合物にゼノンブロッキング試薬（成分B）の5μlを添加する。
      5. インキュベートRTで5分間混合。 30分以内にサンプルに抗体を適用します。
2. 一次抗体染色：
   1. 細胞ペレットに一次抗体溶液100μlを加え、穏やかに混合するために粉砕する。
   2. また、適切な希釈で細胞懸濁液にゼノンのフルオレセイン標識抗体を追加。
   3. 光から保護し、オービタルシェーカー（200rpm）し、上で室温で30分間チューブをインキュベートします。 （セクション4.2で説明したように）、PBSで細胞を1回洗浄し背後にある唯一のペレットを残して、完全にチューブから上清を除去。
3. （ゼノンフルオレセイン標識抗体には必要ありません）二次抗体染色：
   1. 適切な濃度でPBS中に二次抗体を希釈する。
   2. 細胞ペレットに二次抗体溶液100μlを加え、穏やかに混合するために粉砕する。暗闇の中でシェーカー（200 rpm）の上で、室温で30分間チューブをインキュベートします。
4. （4.2節で説明したように）PBSでサンプルを2回洗浄します。
5. フロー緩衝液で1回洗浄する（3.5節を参照）。
6. フロー·バッファの約150μlの細胞を再懸濁し、フローサイトメーターで分析する。

表面および細胞内タンパク質の、図4の共染色。フローサイトメトリーのデータの一次+二次抗体ベースの表面染色と組み合わせたゼノンフルオレセインベースの細胞内染色の対の間の比較を例示する。 y軸（左上象限）及びx軸（右下象限）の排他的陽性はそれぞれ、MAP2およびCD24について染色した細胞を示す。共染色した後、共有MAP2及びCD24の発現は、右上象限（右パネル）に見ることができる。使用しての比較アレクサフルオロ488。MAP2標識利回り同様の結果のためのゼノンフルオレセイン（下）対（上AF488） この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

6.フローサイトメトリー分析

1. 信号検出のための適切なフィルターを、フローサイトメーターを用いて染色プロトコルの完了直後にフローサイトメトリー分析を行う。 FL-1（30分の533）、FL-2（40分の585）、およびFL-4（25分の675）バンドパスフィルタと488nmの青と640nmの赤色レーザーを使用してください。
2. 破片および死細胞を除く前方および側方散乱に基づいて主ゲートを設定します。
3. 未染色標本とシングルステンドコントロールを使用して、スペクトルの重複のための補償に基づく≤0.5％に表面と細胞内抗原のための蛍光ゲートを設定します。

Results

ここで紹介するプロトコルは、汎用性の実験的アプローチ（ 図2）を可能にします。その短いバージョン（1、3、6ステップ ）においては、表面抗原の単純な染色のためのガイドと考えることができる。そのより複雑な形態において、細胞内抗原の範囲で共標識パラダイムの数は（2および/ ​​または4〜5の任意の工程 ）を追求することができる。また、CFSE標識工程は、細胞-細胞相互作用の研究またはフローサイトメトリーバーコード実験（ ステップ2）における集団の細胞標識/追跡のための有用性を例示する。 （ ステップ2及び/又は3から得られた）、生存細胞集団は、細胞選別パラダイム（FACS）およびポストソート細胞培養を含む下流の分析に適している。一方、組み合わせた細胞表面抗原染色（3〜5ステップ ）独自の権利で、分析読み出しの機会を提供します。例えば、（ <...

Discussion

ここに提示されたプロトコルがよくヒト幹細胞由来の神経細胞培養のために確立されているが、同様の一次組織または神経細胞株を含む他の神経細胞供給源に適用することができる。胚のソースに加えて、神経幹細胞または前駆細胞は、成人の脳²⁷の神経原性領域から抽出することができる。また、フローサイトメトリーおよびFACSが成熟ニューロン^54、アストロ^33、ミクログリア^55、オリゴデンドロサイト^56、または出生後の脳組織からの内皮細胞⁵⁷を含む様々な細胞集団を定量分析し、単離するために利用することができる。

手順のいずれかの過剰なフローサイトメトリーの読み出しに影響を与える散乱特性の大規模な変化につながる可能性に関係なく、ソースの、固定および透過化のための最適条件は、実験的に各細胞型について決定される必要がある。プロトコルの効率もSTABILに依存表面分子のityが透過処理を投稿。これは、異なる表面エピトープは、種々の程度の手順の一部として細胞操作によって影響され得ること...

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
DMEM/F12 (1:1) (ダルベッコの改変イーグル培地/栄養混合物 F-12)	Life Technologies	11330057
Ca2+ Mg2+	Life Technologies
ウシ胎児血清、適格、EU承認、南アメリカ原産(FBS)	Life Technologies	10270-106
MEM 非必須アミノ酸(100x)	Life Technologies	11140035
TrypLE Express	Life Technologies	12604013
Trypan blue solution, 0.4%	Life Technologies	15250061
パラホルムアルデヒド	Carl Roth	335.3
ウシ血清アルブミン (BSA) フラクション V	PAA Laboratories, Coelbe	K41-001
Tween-20 Detergent	Calbiochem	655205
Carboxyフルオレセインスクシンイミジルエステル (CFSE)	eBioscience	65-0850-84
DMSO	AppliChem	A1584
ボトルトップフィルター express plus 0.22 & micro;m, 250 ml	ミリポア	SCGPU02RE
培養処理フラスコ (T 25)	NUNC	156367
細胞培養処理フラスコ (T 75)	NUNC
コニカルチューブ (15 ml)	Greiner Bio-One	188271
コニカルチューブ (50 ml)	Greiner Bio-One	227261
パスツールピペット、ガラス (150 mm)	STEIN Labortechnik, レムヒンゲン
S03710150ピペットチップ(0.1-10 & micro;l)	Corning	4125
ピペットチップ (1-200 µl)	Corning	4126
ピペットチップ (100-1000 µl)	Corning	4129
Serological pipets, 5 ml	Corning	4051
Serological pipets, 10 ml	Corning	4101
血清ピペット、25 ml	Corning	4251
微量遠心チューブ(0.5 ml)	Sarstedt	72,699
遠心チューブ(1.5 ml)	Greiner Bio-One	616201
微量遠心チューブ (2.0 ml)	Sarstedt	72,695,500
Anti-Human CD24 APC monoclonal antibody	eBioscience	17-0247-42	作業希釈率 1:50
抗ヒト CD54 PE モノクローナル抗体	eBioscience	12-0549-42	ワーキング希釈率 1:50
ニューロン クラス III β-チューブリン (Tuj1) ポリクローナル抗体	コーヴァンス	PRB-435P	ワーキング希釈率 1:2,000
Alexa Fluor 488ロバ反ウサギ	Life Technologies	A21206	作業希釈率 1:2,000
ゼノン®フルオレセインウサギIgGラベリングキット	Life Technologies	Z-25342
Neubauer-Improved counting chamber	Marienfeld	0640010
Vortex	サイエンティフィック・インダストリーズ	G560E
Thermomixer comfort	Eppendorf	5355 000.001
Accuri C6 flow cytometer	Becton Dickinson (BD)	653118
Microcentrifuge冷蔵、PerfectSpin 24R	Peqlab	91-PSPIN-24R
オービタルシェーカー、ユニマックス 1010	ハイドルフ	543-12310-00
遠心分離機冷蔵、ロタンタ 96 RC	ヘティッチ	4480-50
Class II Biological Safety Cabinet Safe 2020	Thermo Scientific	51026640
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顕微鏡、Axiovert 40 CFL	Zeiss	451212
Pipet controller, accu-jet pro	ブランド	26303
マイクロピペット、Pipetman neo P20N(2-20µl)	Gilson	F144563
Micropipet, Pipetman neo P200N (20-200 µl)	Gilson	F144565
Micropipet, Pipetman neo P1000N (100-1000 µl)	ギルソンF144566