ヒト多発性骨髄腫(MM)細胞は、間葉系細胞と生存および増殖のための細胞外マトリックス成分の支援微小環境が必要です。我々は、腫瘍の増殖、浸潤および血管形成に対する抗がん剤の効果を研究するために移植されたヒト骨髄腫および間葉細胞とin vivoでニワトリ胚モデルを確立しました。
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方法論記事
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ヒト多発性骨髄腫(MM)細胞は、間葉系細胞と生存および増殖のための細胞外マトリックス成分の支援微小環境が必要です。我々は、腫瘍の増殖、浸潤および血管形成に対する抗がん剤の効果を研究するために移植されたヒト骨髄腫および間葉細胞とin vivoでニワトリ胚モデルを確立しました。
多発性骨髄腫(MM)、悪性形質細胞疾患は、不治のままであり、新規の薬剤は、患者の予後を改善するために必要とされます。これにより、骨の微小環境と自動/パラクリン成長因子の欠如により、ヒトMM細胞を育成することは困難です。したがって、ヒトMM細胞に対する新規治療薬の作用を研究するために、in vitroおよびin vivo培養系において適切な確立が急務となっています。ここでは、in vitroおよびin vivoで 、複雑な3D環境内でヒト多発性骨髄腫細胞を増殖するためのモデルを提示します。 MM細胞株OPM-2及びRPMI-8226は、GFP導入遺伝子を発現するようにトランスフェクトされた三次元スフェロイド、ヒト間葉系細胞とコラーゲンI型基質の存在下で培養しました。加えて、スフェロイドは、ニワトリ胚の漿尿膜(CAM)に移植した腫瘍の成長は、ステレオ蛍光顕微鏡法によってモニターしました。どちらのモデルも、新たな治療DRUの研究を可能にします複雑な3D環境と導入遺伝子に特異的なGFP-ELISAにおける移植片の均質化後の腫瘍細胞塊の定量化でGS。また、下にある宿主組織へのホストおよび腫瘍細胞の浸潤の血管新生応答は、実体顕微鏡により毎日モニターし、ヒト腫瘍細胞(KI-67、CD138、ビメンチン)、または宿主壁細胞被覆血管に対する免疫組織化学染色によって分析することができます(デスミン/ ASMA)。
結論として、onplantシステムは、複雑な3D環境でのMM細胞の増殖と血管新生を研究することができますし、MM細胞の生存および増殖を標的とする新規治療化合物のスクリーニングを可能にします。
多発性骨髄腫(MM)は、骨髄における悪性形質細胞の増殖、骨病変、免疫不全1を特徴としています。プロテアソーム阻害剤(ボルテゾミブ)や免疫調節薬(ポマリドマイド、レナリドマイド)などの新たな治療選択肢はあるものの、MMは依然として不治の悪性腫瘍であり、予後は厳しいままです2。予後不良は、MM細胞クローンの異常な不均一性によって説明され、特に長時間の治療とMMクローンの選択圧下で、治療に対する反応が変動する原因となる可能性があります3。
新薬とその組み合わせの前臨床試験は、将来の医薬品開発にとって重要で時間のかかるステップです。したがって、MMの生物学的理解を深め、新薬の発見を可能にするためには、MMの有用なinvivoモデルが必要です。実際、血液悪性腫瘍および治療薬に最適な異種移植モデルは、重症複合免疫不全(SCID)マウス4-7、非肥満糖尿病/SCID(NOD/SCID)マウス8,9、またはβ-ミクログロブリンノックアウトNOD/SCIDマウス10,11などの免疫不全マウスである。
ヒトMMのマウスモデルは、いくつかの側面でヒトの疾患の表現型に似ていることがありますが、免疫不全マウスは近交系されているため、薬物に対する個々の反応を一つしかシミュレートせず、コストは非常に高くなります。免疫抑制のために、動物は特別な維持条件を必要とし、マウスでのヒトMMの生着には6週間から2ヶ月が必要です9,12、ただし、細胞が技術的に要求の厳しい手順を使用して骨髄に直接移植され、動物の生存率が低くなっています7,13。そのため、幹細胞ベースのオルガノイドモデル14、組織工学15、または洗練された3D細胞培養モデル16を用いた新しい方法が確立されている。近い将来、前臨床薬物試験のための古典的な動物実験と競合するでしょうが、生体の全身毒性試験に取って代わることはできません。
ニワトリの胚は、17-19歳になるまでの適応免疫応答の欠如により、ヒトの細胞や組織の異種移植に適した生物であることが以前に実証されています。さらに、各ニワトリ胚は、ニワトリ集団内の遺伝的多様性により、適用された薬剤または腫瘍細胞に対する個々の反応を反映しています。絨毛膜(CAM)は、腫瘍依存性血管新生を研究するための確立されたシステムです20-22。固形腫瘍をCAMに移植すると、増殖、浸潤、血管新生、転移など、in vivoでがんの多くの特徴を示します23-27。
私たちのグループの以前の経験に基づいて、CAM異種移植モデル20,26,27を使用して、ヒト3D培養システムの利点とex ovo発達ニワトリ胚のモデルを組み合わせたヒトMMモデルが確立されました。このMMモデルシステムにより、MM増殖の進行のリアルタイムモニタリング、細胞量の定量化、および前臨床薬物試験が可能になります。
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//:実験動物福祉のhatching.The NIH Officeは、この領域(HTTPで書かれたガイダンスを提供するまでオーストリアの法律、および米国公衆衛生サービスの実験動物福祉の事務所によると、鳥類の胚は生きた脊椎動物とは見なされませんwww.grants.nih.gov/grants/olaw/references/ilar91.htmおよびNIH公開番号:06から4515)。
1.細胞培養およびレンチウイルストランスフェクション
2. 3D-多発性骨髄腫スフェロイドモデル
CAM 3. 3D多発性骨髄腫異種移植モデル
4. ELISAによるEGFPタンパク質の定量
5. Immunohi血管や侵入腫瘍細胞のstochemical分析
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3D多発性骨髄腫スフェロイドアッセイにおける標的化合物のインビトロでの分析で
これにより、in vitroで初代ヒトMM細胞を培養する制限に、我々は、細胞外成長マトリックスおよび骨髄( 図1A、B)から支持初代ヒト間葉系細胞を利用したヒトMM細胞株のためのインビトロ培養モデルにおける新しい3Dを確立しました。 EGFPトランスジェニックMM細胞株は、スフェロイド内の3D成長後に視覚化し、MM腫瘍塊の定量化を可能にします。両方のMM細胞株OPM-2 EGFPおよびRPMI-8226 のeGFPステレオ蛍光顕微鏡でGFPの発現によって可視化したボルテゾミブ腫瘍の漸増濃度(1〜100nMの)の存在下で3日間培養した( 図1C) 。腫瘍細胞塊は、スフェロイドの均質化後に定量化し、GFP-ELISA( 図1でのeGFPの内容...
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難治性MMのための新たな治療薬の開発は、薬物に対するヒトMM細胞の感受性を評価するために少ない時間がかかり、高価な生体内のシステムを必要とします。これまで、わずか数の生体内のシステムは、新しい抗骨髄腫治療の前臨床評価のために利用可能です。それらのすべては、化合物ライブラリー29の大規模スクリーニングのためにそれらの限界があります。
ヒトMM細胞のための最高の現行モデルは、高度免疫不全マウス7,13,30と七面 鳥の胚29です。 SCIDマウスおよび鳥類胚異種移植モデルの両方は、MMの生物学を研究し、新規の治療化合物を試験するために使用することができます。しかし、マウス系は、近交系の遺伝子型を含む、技術的に要求の厳しい手順、長い観察期間と高いコストを、いくつかの制限があります。
本研究では、新規な3Dスフェロイドおよびトリ異種移植モデルは、ヒトのMESの存在を伴うヒトMM細胞の生物学を研究するために提示されています支持部品としてenchymal幹細胞及び細胞外マトリックス。 MM細胞が強く、それぞれの...
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著者らは、全く競合する金融利害関係はありません
著者は、免疫組織化学とニワトリ胚の準備における優れた技術支援を提供してくださったCornelia Heisさんに感謝したいと思います。この研究は、オーストリア科学基金(FWF Grant No. P19552)と欧州連合(EU FP7プロジェクトOptatio No:278570)の支援を受けました。
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| 名前 | 会社 | カタログ番号 | コメント |
|---|---|---|---|
| RPMI-8226細胞 | DSMZ | ACC 9 | STRプロファイル |
| OPM-2細胞 | DSMZ | ACC 50 | STRプロファイルヒト |
| 間葉系幹細胞 | PromoCell | PC-C-12974 | |
| HEK293FTセル | Invitrogen | R700-07 | |
| RPMI1640 Medium | Sigma Aldrich | R0883 | |
| ウシ胎児血清 HyClone | ThermoScientific | SH30070.03 | |
| L-Glut- Pen- Strep solution | Sigma | G6784 | |
| DMEM Medium | Gibco | 31966 | |
| NEAA | Sigma Life Sciences | M7145 | |
| Transfection Medium/Opti-MEM | Gibco | 51985 | |
| eGFP レンチウイルス粒子 | GeneCopoeia | LPP-EGFP-LV105 | すぐに使用できるウイルス粒子 |
| pLenti6/V5Dest6 eGFP ベクター | Invitrogen | PN 35-1271 | 著者から |
| ViralpowerTM 包装ミックス | Invitrogen | P/N 35-1275 | |
| トランスフェクション試薬/ リポフェクタミン 2000 | Invitrogen | 11668-027 | |
| ブラストシジン | Invitrogen | R210-01 | |
| ネオマイシン | バイオクロム | A2912 | |
| コラーゲン-タイプ1 ラットテール | BDバイオサイエンス | 354236 | |
| DMEM粉末 | テクノロジー | ズ Art.Nr 10338582 | |
| プリチデプシン | ファーママーボル | ||
| テゾミブ | LKT研究所 | B5871 | |
| SPF-white hen eggs | Charles River | Fertilized white Leghorn ニワトリの卵 | |
| プラスチック計量ボート | neoLab Art.Nr. 1-1125 | for ex-ovo culture | |
| Petridish square (Lids) | Simport | D210-16 | for ex-ovo culture |
| RIPA Buffer (10x) | Cell Signaling | #9806 | |
| Protease阻害剤錠剤 | Roche | 11 836 170 001 | |
| Complete Mini EDTA-free | |||
| GFP ELISA | Cell Biolabs, Inc. | AKR-121 | |
| Histocette II | Simport | M493-6 | |
| PFA 37% | Roth | 7398.1 | |
| DPBS | Lonza | BE17-512F | |
| Ethanol absolut | Normapur | 20,821,321 | |
| Roti-Histol | Roth | Art.Nr.6640.4 | |
| Paraplast | Sigma | A6330 | |
| SuperFrost顕微鏡スライド | R. Langenbrinck | アート-NR。 | |
| Labor- u. Medizintechnik | 03-0060 | ||
| DakoCytomation ウォッシュバッファー 10x | DakoCytomation | Code-NR. | |
| S 3006 | |||
| ターゲット回収液 (10x) pH 6,1 | DAKO | Code-Nr. | |
| S 1699 | |||
| H2O2 | Merck | ||
| m-a-hu ASMA clone 1A4 | DAKO | M0851 | |
| m-a-hu CD138 clone MI15 | DAKO | M7228 | |
| m-a-hu Vimentin clone V9 | DAKO | M0725 | |
| m-a-hu Desmin clone D33 | DAKO | M0760 | |
| m-a-hu Ki67 クローンMIB-1 | ダコ | M7240 | |
| ビオチン化ヤギ - 抗マウスIgG | Vector Laboratories Inc. | BA-9200 | |
| ベクタステインエリートABCキット | ベクターラボラトリーズ株式会社 | #PK-6100 | |
| FAST DAB錠セット。 | シグマバイオケミカル | ズ#D4293 | |
| メイヤー'S haemalaun solution | Merck | 1,092,490,500 | |
| Roti Histokitt | Roth | Art.Nr.6638.2 | |
| ベンチトップロータリーミクロトーム | Thermo Electron, Shandon Finesse ME+ | ||
| Tissue embedding station | Leica, TP1020 | ||
| Egg-Incubator | Grumbach | BSS160 | |
| デジタルカメラ(オリンパスE410)とフレキシブルな冷光を連結した実体蛍光顕微鏡 | オリンパス、SZX10 | ||
| Ultra Turrax | IKA T10 | ホモジナイザー |
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