方法論記事

水生微生物Metaproteomicsワークフロー：細胞からのトリプシンペプチドのタンデム質量分析ベースの分析に適し

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DOI：

10.3791/52827

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2015年9月15日

 , 
1Department of Biology, Concordia University

この記事について

サマリー

このプロトコルは、海水から採取された微生物バイオマスからのタンパク質とDNAの抽出と濃縮、その後のタンデム質量分析に基づくプロテオミクス分析に適したトリプシンペプチドの生成のためのものです。

要約

メタゲノム技術、メタトランスクリプトミクス、メタプロテオミクスなどのメタオミクス技術は、微生物群集の構造と代謝の理解を助けることができます。メタゲノミクスだけでは強力ですが、機能的な可能性を解明することしかできません。一方、メタプロテオミクスは、発現したin situ代謝とコミュニティの機能の記述を可能にします。ここでは、カートリッジフィルターユニット(Sterivexフィルターユニットなど)で収集され、RNA安定化溶液(RNAlaterなど)で保存された海洋微生物細胞からのペプチド消化と抽出、および細胞溶解、タンパク質およびDNAの単離のためのプロトコールについて説明します。質量分析に基づくプロテオミクス研究では、ペプチドタンデム質量スペクトルを翻訳ヌクレオチド配列のデータベースと比較することにより、ペプチドとタンパク質の同定が行われます。サンプルのメタゲノムを検索データベースに含めると、マススペクトルから同定できるペプチドとタンパク質の数が増えます。したがって、このプロトコルでは、DNAは同じフィルターから単離され、その後メタゲノム解析に使用することができます。

概要

微生物は、ユビキタスであり、地球の物質循環1に重要な役割を果たしています。現在、微生物群集の構造と機能を特徴づけるために利用可能な多数の分子アプローチがあります。 4 -最も一般的な16S rRNA遺伝子配列の分析は、環境DNA 2からPCR増幅されます。 16S rRNA遺伝子解析の欠点は、それが唯一の代謝機能にはほとんどの情報を、系統発生的アイデンティティと社会構造についての情報を提供することです。これとは対照的に、このようなメタゲノミクス、metatranscriptomicsとmetaproteomicsとしてのアプローチは、コミュニティの構造と代謝に​​関する情報を提供しています。 8 -メタゲノミクス、または生物の集合体の遺伝子含有量の分析は、社会5の構造と機能の可能性についての情報を提供します。強力なものの、この機能の可能性は、代謝に対応しない場合があります生物の活動。生物の遺伝子型は、RNAに転写し、さらに表現型をもたらす、タンパク質に翻訳することができるそれらの各々は、その遺伝子によって表されます。従って、環境中の微生物の機能的活性の理解を助けるために、ポストゲノム解析は、9実行されるべきです。それは任意の環境で転写される遺伝子を明らかにするためMetatranscriptomics、またはRNA転写物の分析に便利です。しかし、mRNAのレベルは、常に翻訳調節、RNAの半減期、および複数のタンパク質コピーは、すべてのmRNAの10のために生成することができるという事実に起因し、それらの対応するタンパク質のレベルと一致しません。

これらの理由のmetaproteomicsのために今の環境微生物学のための重要なツールとして認識されています。共通metaproteomicは、複雑なサンプル中のタンパク質のほぼ完全な補完は、通常エンを通して、精製し、同時に分析されているショットガンプロテオミクスのアプローチを使用して分析します質量分析計のペプチドおよび分析にzymatic消化。続くタンデム質量分析（MS / MS）「ペプチドフィンガープリント」は、タンパク質データベース検索によって、ペプチド配列および起源の可能性タンパク質（概説については11を参照）を決定するために使用されます。プロテオミクスの研究は、過去25年間で、ゲノムデータの可用性の増加や高スループットのタンパク質の同定および定量11,12を可能にする質量分析計の感度および精度の向上のおかげで長い道のりを歩んできました。タンパク質は、遺伝子発現の最終産物であるので、metaproteomicデータは、任意の与えられた環境で活性である生物、それらが発現しているものタンパク質を判断するのに役立ちます。環境変数の特定のセットは、生物やコミュニティの表現型にどのように影響するかを決定しようとする場合に有利です。初期の段階では、海でのMS / MSベースmetaproteomic研究が対象となるの特定のタンパク質を同定するために使用されましたSAR11の海洋細菌13の光駆動プロトンポンプテオに焦点を当てた最初の研究で、微生物系統、。より最近では、比較metaproteomic分析が複雑な地域社会との差タンパク質発現パターンを解明しました。例としては、沿岸北西部大西洋14または南極半島5における代謝の時間的シフトの識別が含まれます。他の研究では、生産性の高い沿岸湧昇システム 15に低栄養環流から地理的トランセクトに沿って、例えば、空間スケールを越えタンパク質発現パターンの変化を説明しています。 metaproteomicsのさらなるレビューのために我々はシュナイダーら （2010）9、ウィリアムズら （2014年）16をお勧めします。標的プロテオミクスはまた、環境17,18における特定の代謝経路の発現を定量するために近年使用されています。

THEReはmetaproteomic分析には、主な3つの相です。第一段階は、試料収集、細胞溶解及びタンパク質の濃度を含むサンプル調製です。海洋微生物のサンプルの収集は、多くの場合、一般に、0.22μmのカートリッジを使用して、自由生活微生物細胞の捕捉のためにろ過し、より大きな真核生物細胞、粒子と粒子に関連する細菌を除去するためにプレフィルターを通して海水の濾過を伴いますフィルタユニット19,20。これらのフィルタは、プラスチックシリンダーでincasedされ、フィルタユニット内で実行することができる細胞溶解及びタンパク質抽出プロトコルは、貴重なツールであろう。バイオマスが得られると、細胞は、タンパク質抽出を可能にするために溶解されなければなりません。いくつかの方法は、溶解法をベースグアニジン-HCl溶解21とドデシル硫酸ナトリウム（SDS）を含む、使用することができます。 SDSのような界面活性剤は、膜を破壊し、多くのタンパク質の種類を可溶化でconcentrati非常に効率的であるが、下流タンパク質消化及びMS分析22に干渉することが0.1％と低く、ONS。主要な関心事のイオン源23内の逆相液体クロマトグラフィーとイオン抑制または蓄積の解像力、トリプシン消化効率にSDSの悪影響です。

第二段階は、タンパク質が、最初のトリプシンペプチドの一次アミノ酸配列を確認するために使用することができるAM / zの断片化パターンをもたらす、LC MS / MS分析に続いて酵素消化に供される分画及び分析です。さまざまな消化方法が使用される界面活性剤の種類、ならびに下流の質量分析ワークフローに応じて行うことができます。我々のプロトコルでは、ゲルのSDSを除去した1次元PAGE電気泳動は、任意の洗剤汚染を除去するために利用されています。このような膜タンパク質として、可溶化することが困難であるタンパク質の分析は、高いconcenの使用を必要としますSDSまたは他の界面活性剤のtrations。これは、SDSゲル電気泳動との互換性の問題につながります。研究の目的は、タンパク質を可溶化するために、これらの硬質の可溶化を必要とする場合、チューブゲルシステムは、22,24を使用することができます。チューブゲル法、電気泳動を使用することなく、ゲルマトリックス内のタンパク質を組み込みます。続いて可溶化するために使用される任意の界面活性剤は、タンパク質消化の前に削除されます。

第三段階は、バイオインフォマティクス解析です。この段階でMS / MSペプチドデータは、サンプル中に存在するペプチドおよびタンパク質を決定するために翻訳されたヌクレオチド配列データベースに対して検索されます。ペプチドの同定は、それがに対して検索されているデータベースに依存しています。マリンmetaproteomicデータは、一般的に参照ゲノムから成るデータベースに対して検索され、そのようなグローバル・オーシャン・サンプリングデータセット25、ならびに単一セルとメタゲノムのデータが未培養のLiからゲノムを増幅します26,27 neages。タンパク質同定はまたmetaproteomicデータは 5導出されたのと同じ試料からメタゲノム配列を含めることによって増加させることができます。

ここでは、微生物バイオマスからのMS / MSに基づく分析を濾過により回収し、RNA安定化溶液中で保存するのに適したペプチドを生成するためのプロトコルを提供します。 DNAとタンパク質は、同じ試料から単離するためのタンパク質およびDNAの沈殿に至るまでのすべてのステップが同じになるように、ここで説明されたプロトコルができます。唯一のフィルタは、タンパク質およびDNA抽出の両方のために必要とされるので、実用上の観点から、より少ない濾過が必要とされます。また、このプロトコルは2以前に公開されたプロトコルの組み合わせ、適応及び改変によって作成されたことを感謝したいです。細胞溶解工程は、斎藤ら。（2011）28、コンポーネントがShevcheから適応されるダイジェストゲル内トリプシンから適応されていますNKOら。 （2007年）29。

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プロトコル

1.試薬を準備

  1. 0.1 MのTris-HCl pH7.5で、5％グリセロール、10mMのEDTA及び1％SDS：SDS抽出溶液を調製します。 4℃で0.22μmフィルターとストアを使用してフィルター滅菌します。
  2. ポリアクリルアミドゲルに必要な株式試薬を準備します。
    1. 1.5 Mトリス塩酸pHが8.8を準備します。室温で0.22μmフィルターとストアを使用してフィルター滅菌します。
    2. 0.5 Mトリス塩酸pHは6.8。室温で0.22μmフィルターとストアを使用してフィルター滅菌します。
    3. 10％SDSを準備します。フィルターは、室温で0.22μmフィルターとストアを使用して滅菌します。
  3. ゲル内トリプシン消化およびペプチド抽出に必要なソリューションを準備します。
    1. 100mMの重炭酸アンモニウムを準備します。 4℃で0.22μmフィルターとストアを使用してフィルター滅菌します。
    2. 1 M DTTストックを準備します。 -80℃で100mMの重炭酸アンモニウムとストアに懸濁しました。
    3. 550 mMのヨードアセトアミドストックを準備します。に懸濁100 mMの-80℃での重炭酸アンモニウムとストア。
    4. 100 ngの/μlのトリプシンストックを準備します。 -80℃で1.5 mlマイクロチューブに60μlのアリコートとストア。
    5. 1％ギ酸、2％アセトニトリル：抽出液を準備します。
    6. 5％アセトニトリルおよび0.1％ギ酸：再懸濁溶液を調製します。

2. RNA安定化策に保存された細胞とカートリッジフィルターユニットで細胞溶解を実行

  1. カートリッジフィルターユニット（1.5 ml）でのフィルタのルアーロック端部に取り付けられた60 mlの注射器を使用して、2 mlのマイクロ遠心チューブにRNA安定化溶液を追い出します。
  2. 任意の細胞破片をペレットに17000×gで10分間、2 mlのマイクロ遠心チューブを遠心。ステップ2.3でフィルターが目詰まりしないようにするためです。
  3. 凍結/ THAから溶解した細胞に由来する任意のタンパク質を捕捉するために、10K超遠心フィルターユニットに上清を移しますサンプルのワットペレットを廃棄しないでください。なお、ステップ2.5で使用されます。 30分間、または体積が約600μlに減少するまで、3,270×gで超遠心フィルターユニットの遠心分離を行います。
  4. P10チップの先端を溶融し、先端の開口端とカートリッジフィルターユニットの非ルアーロック側を遮断します。これには、抽出緩衝液とバイオマスがステップ2.5から2.7の間に脱出しないことを保証します。
  5. 1ミリリットルのSDS抽出液中にペレットを中断し、元のカートリッジフィルターユニットにそれをピペット。カートリッジフィルターユニットにピペットする最も簡単な方法は、P1000の先端にP200チップをスタックし、ピペッティングのために、この二重のヒントを使用することです。
  6. 総容積が約2mlとなるようにカートリッジフィルターユニットにSDS抽出液1mlを添加し、ハイブリダイゼーションオーブン中で回転させながら室温で10分間インキュベートします。 3しわくちゃラボを50mlコニカルチューブの底にワイプ置きます。閉じたカートリッジフィルター部の両端をパラフィルム50 mlのチューブにカートリッジフィルターユニットを置きます。蓋を閉じて、ハイブリダイゼーションオーブンにチューブを入れます。
  7. 10分の場所Sterivex後発泡フローターでフィルタとルアーロック端に5ミリリットルの注射器で固定します。フロート、15分間95℃の水浴中でインキュベートします。
  8. クールカートリッジフィルターユニットをしようとする（ステップ2.6のように）、室温で1時間回転します。
  9. （ステップ2.3）前と同じ超遠心フィルターユニットに60 mlシリンジにフィルタのうちSDS抽出液/細胞溶解物を放出します。カートリッジフィルターユニットに新鮮SDS抽出液1mlを加え、手で30秒間混合し、60 mlの注射器を用いて超遠心フィルターユニットに追い出します。これは、すべてのタンパク質が除去されていることを確認するためにカートリッジフィルターユニットを洗浄することです。
  10. 3,270×gでまたはフィルタユニット内の容積が600未満μLになるまで、45分間超遠心フィルターユニットに遠心分離を行い。
  11. フロースルーを捨て、新鮮なSDS抽出液を補充して超遠心フィルターユニットを。
  12. 遠心3270×gでさらに45分間、フィルタユニット。
  13. 繰り返し二回より2.11と2.12を繰り返します。超遠心フィルターユニット内の最終容量は、最終的なスピンの最後に最も600μlのであることを確認します。
  14. この時点で、二つに濃縮物を分割します。一つの画分は、DNA沈殿および他のタンパク質のための沈殿のために使用されます。
    注：分別量をろ過したバイオマス量や製品の使用目的によって異なります。私たちのケースでは、DNA沈殿に向かって10％とタンパク質沈殿に向かって90％に濃縮物を分割します。

3.タンパク質の沈殿

  1. 10秒のための濃縮物および渦の一冊にアセトン（50:50）：4倍量のメタノールを追加します。 -20℃で一晩インキュベートします。
  2. 30分間17000×gでスピンダウン。上清を除去そしてペレットを1時間（または乾燥するまで）のためにスピードバックで乾燥（目に見えないかもしれない）しましょう​​。
    注意：これはそれが困難な再懸濁するために行うことができるようにオーバーペレットを乾燥させないでください。
  3. SDS抽出溶液25μlにペレットを一時停止します。その後、ピペッティングにより再懸濁一時間座ってみましょう。
  4. タンパク質アッセイキットおよび製造業者の指示に従って用いてタンパク質を定量化します。

4. DNAを沈殿

  1. 500μlのマークまで、DNA沈殿のために使用される濃縮液画分をSDS-抽出溶液を加えます。このステップは、単にそれが簡単で動作するようになって、溶液の体積を増加させることです。
  2. 10秒間ボルテックス（例えばMPCタンパク質沈殿試薬として）タンパク質沈殿試薬の0.583ボリュームを追加します。あなたは、白色の沈殿物フォームが表示されるはずです。
    注：我々はまた、フェノール使用している：クロロホルムDNA抽出法を、それが低いボリュームにより困難です。我々は、使用してより優れたDNA収量を得ましたMPCタンパク質沈殿試薬。
  3. 17000×gで遠心分離し、10分間、4℃。
  4. さらに1.5 mlのマイクロ遠心チューブに上清を移し、イソプロパノール0.95ボリュームを追加します。 30〜40回転倒。
  5. 最大速度で4℃で10分間遠心。
  6. 慎重にデカントし、上清を捨てます。
  7. 70％エタノール750μlので二回洗浄します。
  8. 空気乾燥をさせた後、ピペッティングによりできるだけ多くのエタノールを除去します。
    注意：これはそれが困難な再懸濁するために行うことができるようにオーバーするDNAを乾燥させないでください。
  9. 低TEバッファー、pH 8（10 mMトリス塩酸、0.1mMのEDTA）25μlの再懸濁。
  10. 二本鎖DNAアッセイキット及び製造業者の指示を用いてDNAを定量化します。その品質を確認するために、DNAの3μLにアガロースゲル（1％）電気泳動を行います。

5. SDS-PAGEタンパク質のゲル

  1. サンプルバッファー（950μlのレムリ試料緩衝液および50μlのβメルカプトエタノール）を準備します。
  2. 15μgのタンパク質に対応する量、またはサンプル緩衝液の等体積の20μLの最大を追加し、4分間沸騰。 SDS-PAGEを行うことができるまで、サンプルは現在-80℃で保存することができます。
  3. 5％アクリルアミドスタッキングゲルを有する10％アクリルアミド分離ゲルを準備します。
  4. サンプルおよびタンパク質ラダーの4μlのゲルをロードします。 250 kDaのラダーマーカーはちょうど分離ゲルに達するまで一定の120 Vでゲルを実行します。
  5. 製造者の指示に従って染色ベースのクマシーを用いてゲルを染色。

6.ゲル内トリプシン消化し、ペプチドの抽出

注：6.10までここからすべてのステップは、汚染を最小限にするために生物学的安全キャビネット内で実行されます。

  1. 各レーンのための10 kDaのラダーマークの下に余分なゲルを切り取ります。各レーンは、個別MS / MSで分析します。表面積を増加させ、すべてのsquaを配置するために1ミリメートル×1ミリメートルの正方形の中に各レーンをカット低結合マイクロ遠心チューブにレーンからのres。全てのレーンのためにこれを繰り返します。 （1％酢酸を乾燥し、切断することが困難になってからゲルを防止するために使用することができます）。
    注：汚染を最小化することは、この段階で重要であるので、ゲルスライスを、ゲルを作るために使用されるガラスSDS-PAGEゲル上で金型生物学的安全キャビネットの中で行われます。
  2. 脱染色
    1. 各低結合管、近くにキャップ内に100mMの重炭酸アンモニウムの50μLを分注し、37℃で10分間インキュベートします。
    2. アセトニトリル、近いキャップの50μLを分注し、37℃で5分間インキュベートします。
    3. 吸引し、150μlのを捨てます。
    4. 繰り返しは6.2.1と6.2.2を繰り返します。
    5. 吸引し、95μLを破棄します。
  3. 脱水
    1. 50μlのアセトニトリル、近くにキャップを分注し、5分待ってください。吸引し、45μLを破棄し、10分待ってください。
  4. 削減
    1. 100 mMのAMMで希釈した50μlのDTT（10 mMのを、分注オニウム重炭酸塩）、近くにキャップし、37℃で30分を待ちます。
  5. アルキル化
    1. 50μlのヨードアセトアミド（100mMの重炭酸アンモニウムで希釈した55 mMの、）、近くにキャップを分注し、37℃で20分を待ちます。
    2. アセトニトリル、近いキャップの100μLを分注し、37℃で5分間インキュベートします。吸引し、195μ​​Lを破棄します。
  6. ウォッシュ
    1. 50μlの重炭酸アンモニウム、クローズキャップを分配し、37℃で10分間インキュベートします。
    2. アセトニトリル、近いキャップの50μLを分注し、37℃で5分間インキュベートします。吸引し、120μLを破棄します。
  7. 脱水
    1. 50μlのアセトニトリル、近くにキャップを分注し、5分待ってください。吸引し、45μLを破棄します。
    2. アセトニトリル50μLを分注し、5分待ってください。
    3. 吸引し、75μLを破棄し、5分待ってください。
  8. 消化
    1. 6 NG /μlのトリプシン（Uの25〜30μLを分注しntilすべてのゲル断片）が覆われています。閉じるキャップし、室温で30分待ちます。
    2. 37℃で一晩（4.5時間以上）インキュベートします。
    3. 室温で30分間座ってみましょう。
  9. 抽出およびペプチド転送
    1. 抽出溶液の30μLを分注し、氷上で30分間、蓋をカバーしています。
    2. 吸引し30μlの、新しいラベル低結合チューブで吸引量を分注します。
    3. （ゲルと）元の管に抽出溶液12μlのアセトニトリルの12μLを分注します。閉じるキャップと氷上で30分間インキュベートします。
    4. 吸引し、新しいチューブに15μlの預金。
    5. ステップ（6.9.3および6.9.4）を繰り返します。
  10. 乾燥するまでスピードバックで新しいチューブを置きます。
  11. 再懸濁溶液50μlで再懸濁します。再懸濁し、10分間培地上で渦。
  12. ナノナノ/ LCバイアルまたは適切な96ウェルプレートのいずれかにピペットペプチド溶液/ LCMS / MSの仕事。

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結果

デモンストレーションとして、我々は、二つの表面から採取した海水サンプルとカナダ北部の沿岸海洋のクロロフィル最大でプロトコルを行いました。海で、海水の6-7 Lが3μmのGF / Dをプレフィルターに通したが、その後、微生物細胞は、ウォルシュら 20のプロトコルに従って、0.22μmのカートリッジフィルターユニットに収集しました。細胞はすぐにさらに処理されるまでRNA安定化溶液中で保存しました。それがここに提示されると研究室に戻ると、私たちはプロトコルを行いました。濃縮された細胞溶解物を分けました。 DNAは、ボリュームの残りの10％から沈殿させながら、タンパク質は、体積の90％から沈殿させました。我々は、タンパク質の24〜26μgのこれらのサンプルから高品質のDNAの250から308 ngの（ 図1）を回収しました。ゲル内トリプシン消化とペプチド抽出した後、我々は、オービトラップエリに結合されたナノLCを用いてMS / MS分析に供したペプチドをテ質量分析計（サーモフィッシャーサイエンティフィック、ウォルサム、マサチューセッツ州、米国）。ペプチドから、我々はサンプ...

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ディスカッション

サンプル保存はmetaproteomic研究の鍵であると前作は、RNA安定化溶液は、前タンパク質抽出28に細胞を収納するのに便利記憶バッファであることを実証しました。理想的には、サンプルは33,34を取り扱い中のタンパク質発現の変化を打ち消すために、その場で保持されることになります。実際には、 その場でサンプリングし、固定技術が船配備楽器による自律的な収集とサンプルの保存を可能にする、開発されています。しかし、これらの技術へのアクセスは、常に現実的ではありません。そうでない一般的なケースでは、サンプルは採取後できるだけ早く保護されるべきです。

ここでは、一般的に水生微生物学で使用されたカートリッジフィルターユニット上に収集RNA安定化溶液格納されている細胞からタンパク質を抽出するためのプロトコルを提示します。プロトコルは、PRに続いて、SDS-溶解液および加熱を用いて細胞溶解を含みます必要に応じて脱塩工程として倍増超遠心フィルターユニットを使用してotein濃縮工程。これは、濃縮および脱塩ステップは見過...

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開示事項

著者らは開示するものは何もない。

謝辞

著者は、ナノLC MS/MSのサンプル調製に関する専門知識とアドバイスを提供してくださったMarcos Di Falco氏と、LC MS/MS分析のためのレジャイナ大学のZoran Minic博士に感謝したいと思います。 この研究は、NSERC(DG402214-2011)およびCRC(950-221184)の資金提供によって支援されました。DCは、Concordia Institute for Water, Energy, and Sustainable SystemsとFQRNTの支援を受けました。

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
ステリベックス -GP 0.22 μmフィルターユニットMilliporeSVGP01050Sampling
RNAlater Stabilization SolutionAmbionAM7021Sampling
Tris バイオベーシック77-86-1 または TB0196-500Gタンパク質抽出/ SDS PAGEゲル
DTTSigma-AldrichD0632-1Gタンパク質抽出
SDSバイオベーシック15-21-3タンパク質抽出/ SDS PAGEゲル
EDTAバイオベーシック6381-92-6タンパク質抽出
グリセロールフィッシャーサイエンティフィック56-81-5タンパク質抽出
10K アミコン フィルターミリポアUFC801024タンパク質抽出
メタノールSigma-Aldrich179337-4Lタンパク質沈殿
アセトンフィッシャー サイエンティフィック67-64-1タンパク質沈殿
MPC タンパク質沈殿試薬エピセンターmmP03750DNA 沈殿
2-プロパノールフィッシャー サイエンティフィック67-63-0DNA沈殿物
Qubit dsDNA BR Assay kitLife TechnologiesQ32850DNA 定量
Qubit Protein Assay kitLife TechnologiesQ33211タンパク質定量
ショ糖バイオ ベーシック57-50-1SDS PAGE ゲル
TEMEDBio Rad161-0800SDS PAGE ゲル
APSBio Rad161-0700SDS PAGE ゲル
30%アクリルアミドBio Rad161-0158SDS PAGE gel
SimplyBlue SafeStainInvitrogenLC6060SDS PAGE gel
GlycineBio Rad161-0718SDS PAGE gel
B-mercaptoethanolBio Basic60-24-2SDS PAGE gel
Laemmli Sample BufferBio Rad161-0737SDS PAGE gel
Precision Plus Protein万華鏡ラダーバイオラッドバイオ Rad 161-0375EDUSDS PAGE ゲル
アセトニトリルVWRCABDH6044-4インゲル トリプシン消化
NH4HCO3バイオ ベーシック1066-33-7インゲル トリプシン消化
DTTSigma-AldrichD0632-1Gインゲル トリプシン消化
ギ酸Sigma-AldrichF0507-500MLインゲル トリプシン消化
HPLCグレードH2OSigma-Aldrich270733-4Lインゲルトリプシン消化
ヨードアセトアミドバイオベーシック144-48-9インゲルトリプシン消化
トリプシンプロメガV5111インゲルトリプシン消化
LoBindチューブ1.5 mlエッペンドルフ22431081ゲルトリプシン消化
2 ml ROBOバイアル9 mmCandian Life ScienceVT009/C395SBゲル内トリプシン消化
PP BMインサート、スプリングなしCandian Life Science4025P-631内トリプシンダイジェ
器 物 物 物タンパク質イン物 物ゲルスト

参考文献

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