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方法論記事

成人ヒト線維芽細胞の導出と拡張神経前駆細胞へのそれらの直接変換

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⸱

DOI：

10.3791/52831

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2015年7月29日

 ,  ,  ,  , 
1Institute of Anatomy and Cell Biology, University of Würzburg, 2Institute of Reconstructive Neurobiology, University of Bonn, 3German Cancer Research Center, Heidelberg

この記事について

サマリー

人工多能性幹細胞の生成は、自家移植の導出のための魅力的な展望を提供しています。しかし、多能性状態と面倒な再分化の進行はまだ臨床の翻訳を妨げます。ここでは、成人のヒト線維芽細胞の誘導および誘導神経前駆細胞への直接変換と神経系統へその後の分化を説明します。

要約

体細胞への成人皮膚線維芽細胞およびその後の分化の誘導多能性幹細胞（性IPSC）の生成は、組織適合性の障壁を回避する自家移植の導出のための魅力的な展望を提供しています。しかし、所望の系統に多能性状態とその後の完全な差別化の進行が原因関連する新生物の可能性とゲノム不安定性のiPS細胞技術の臨床翻訳のための障害のままです。最近、我々及び他の体細胞だけそれによって多能性状態の進行を回避する、定義された係数を用いてiPS細胞にも多能体性幹細胞の別の型に変換することができないことを示しました。具体的には、誘発された神経前駆細胞（iNPCs）へのヒト線維芽細胞の直接変換は、そのような細胞置換、疾患モデルとして、さまざまな用途のための新規な自己細胞供給源の可能性を告げますおよび薬剤スクリーニング。ここでは、タイムリーな制限のOct4、Sox2の、Klf4の発現、ならびにC-MycのことでiNPCsに皮膚生検とその効率的な直接変換することにより、成人ヒト一次線維芽細胞の単離を記載しています。 SOX2陽性神経上皮コロニーは、誘導の17日後に表示され、INPCラインはモノクローナル単離および拡張することにより効率的に確立することができます。誘導期の間に感染し、白血病抑制因子の補充のウイルス多数の正確な調整は、最大0.2％の変換効率を達成するための重要な要素を表しています。これまでのところ、患者固有INPCラインは12以上の継代のために拡張することができ、均一に、このようなネスチンおよびSox2の発現などの神経幹/前駆細胞の形態学的および分子的特徴を表示します。それぞれ、TUJ1およびGFAPに対して染色することによって判断されるようにINPCラインは、ニューロンとアストロサイトに分化させることができます。結論として、我々は派生と悲惨のための堅牢なプロトコルを報告しますこのような自家神経細胞置換および疾患モデルとして、生物医学的用途のための細胞源を提供するかもしれない安定拡張可能な神経前駆細胞へのヒト線維芽細胞のCT変換。

概要

2006年に山中らは初めて多能性状態1への体細胞の再プログラミングの可能性を示すことができました。この脱分化は、4つの転写マウス線維芽細胞でのOct4、Sox2の、Klf4及びc-Myc因子の過剰発現によって達成されました。生成されたいわゆる人工多能性幹細胞（iPS細胞）は胚性幹細胞（ESC）に機能的な等価性を示し、したがって、成体生物のすべての細胞型に分化することができます。後で性IPSCに再プログラム一年は、ヒト線維芽細胞2のために達成することができます。動物モデルにおける実験は、iPS細胞由来の細胞は、一般に、パーキンソン病（PD）3-5に、例えば 、細胞置換療法に使用することができることを実証します。しかし、性IPSCの使用に関連するいくつかの制限は、それらの治療の可能性を完全に実現するための障害物を表します。まず第一に、多能性状態への細胞の再プログラミングとその後品質管理は、一般的に大規模なので、高価な細胞培養の手順で得た時間がかかり、非効率的なプロセスです。第二に、性IPSCは、生物医学アプリケーションの前に、目的の所望の細胞型に再分化される必要があり、分化した集団中の残留多能性細胞の確率がかなりの腫瘍形成能力を保有し、したがって、細胞移植後6高リスクが表示されます。第三に、初期化プロセスは、通常lenti-またはレトロウイルス感染によって、再プログラミング因子を誘導することによって達成されます。宿主ゲノムへのこれらのウイルスの統合は、挿入突然変異誘発および/ ​​または導入遺伝子7,8の制御されない活性化につながる可能性があります。非統合システムが挿入突然変異及びトランスジーン活性化の危険性を最小限にする、標的細胞への再プログラミング因子を送達するために開発されてきました。これらの導入遺伝子のないアプローチの例は、非組み込みを用いた細胞の再プログラミングされていますアデノまたはセンダイウイルス9,10、DNAベースのベクター11または組換えタンパク質13,14の合成mRNAを12または形質導入のトランスフェクションなどのDNAフリー法の適用。導入遺伝子を含まないiPS細胞の誘導のためのもう一つの有望な方法は、loxP配列で修飾されたレンチウイルスの再プログラミングの構築物の使用とのCre-loxP配列のDNA組換えシステム15,16を用いて、導入遺伝子のその後の欠失です。

細胞置換療法のための神経細胞を生成するために、より簡単な方法は、有糸分裂後のニューロン17-20への線維芽細胞の直接変換を表します。 Vierbuchen らは、転写の過剰発現は、マウス線維芽細胞17〜20％のニューロンの生成にASCL1、Brn2とMyt1l結果因子と報告しました。 2011年にはNeuroD1の過剰発現と組み合わせて、同じ3つの転写因子がノイへのヒト線維芽細胞の分化転換を可能にすることが、示されましたRONS 19。人為的なニューロンは、デュアルSMAD-とGSK3β-阻害20下ASCL1とNgn2の過剰発現によって生成することができます。注目すべきは、ニューロンへの線維芽細胞の直接変換をさらに拡大し、バイオバンクを許可していない非増殖性、有糸分裂後の細胞集団を生成します。

最近では、増殖性神経幹/前駆細胞集団への線維芽細胞の直接変換は、21-26を報告しました。明確にするために、すべてのこれらの細胞型は、このレポートに誘導される神経前駆細胞（iNPCs）と命名されます。 Han らは iNPCsを生成するBrn4、Sox2、c-Myc、およびKlf4を過剰発現します。一次組織または多能性細胞のいずれかに由来し、それらの神経幹細胞の対応と同様に、これらのiNPCsはtripotentialであり、ニューロン、アストロサイトおよびオリゴデンドロサイト21に分化することができました。当社グループは、Sox2の、Klf4の過剰発現を伴うわずかに異なる変換プロトコルを報告しました、およびc-Mycおよびわずか5日間誘導されたOct4-式。このアプローチでは、我々は再プログラミング22因子の完全な抑制を示し、マウス胚および成体の線維芽細胞から安定して増殖するiNPCsを生成することができます。性IPSCとは対照的に、iNPCsは、移植後の27腫瘍形成能を示さありません。我々はiNPCs 22臨床的に有用であることが実証された、脱髄の動物モデル、ミエリン欠損ラットに正常に変換細胞を使用しました。それまでは、NPCは唯一の多能性幹細胞または一次神経組織28-32から生成することができます。 iNPCsは凍結保存し、ニューロン、アストロサイトおよびオリゴデンドロサイトに分化することができますすることができ、安定拡張可能な細胞です。多くの努力は、ヒト細胞23,26,33,34に対するマウスから直接変換プロトコルを適応させるためになされています。 2012年には、線維芽細胞におけるSox2の単一因子の過剰発現は、マウスおよびヒトiNPCsを生成するのに十分であることが発表されました 33アップ。著者らは、胎児包皮線維芽細胞からのヒトiNPCsの発生を報告し、Sox2のとネスチンに対して染色することによって、それらを特徴とします。しかし、再プログラミングのために使用される標的細胞は、臨床で利用できるようにして行われ、動物モデルでの移植によって変換された細胞の機能的特徴付けがなかったしません、非常に特定の細胞型を表します。より最近の刊行物は、Sox2の、C-MycおよびBrn2またはBrn4 34のいずれかの過剰発現によりヒト胎児線維芽細胞からのニューロン限定前駆細胞の生成を説明しています。生成された細胞株は、自己再生能を示し、末端神経の様々なタイプに分化することができます。これらの細胞は異種の起源であり、1つは、残留例えば、製剤中の神経堤幹細胞の存在を除外することはできませんしかし、胎児線維芽細胞の使用は、好ましくない。 2014年に、朱らは、ヒト成人とネオの直接変換を報告しました単独でのOct4またはOct4のと共にSox2の過剰発現及び細胞培養培地への小分子の添加によりtripotential神経前駆細胞への出生線維芽細胞。注目すべきは、彼らの研究のSox2のに基づいて、単独で直接変換26を誘導するのに不十分でした。さらに最近では、呂らは山中の過剰発現は、拡張可能tripotential神経の発生で温度上昇の結果により、ウイルスの24時間およびその後の不活性化のためにセンダイウイルスによってOct4-、Sox2-、Klf4-、C-Mycの因子ことを報告しました前駆細胞23。結論として、ヒト細胞に公開変換プロトコルはこれまで、共通の山中因子の少なくとも一つ以上の過剰発現を持っているが、多くの場合、タイムリーな制限された方法で、直接駆動するのに必要な最小限の分子要因の明確な兆候はありませんiNPCsへの変換。タイムリーな制限されたいずれかの遺伝的手段によるのOct4の過剰発現、合成mRNAを用いたトランスフェクション、またはcエル透過性共にSox2の、KLF-4、およびc-mycの構成的発現を有するタンパク質は、まだ安定人間INPC線をもたらさありませんでした。このように、センダイウイルスのアプリケーションは、すべての山中因子を過剰発現し、タイムリー22,31がこれまで得意な作戦を表す一緒に最適化された神経のメディア誘導条件とウイルス23の熱不活性化することによってその活性を制限します。

いくつかの研究は、NSCの、または異なる動物疾患モデルにおけるそれらの分化対応の携帯の機能を実証します。ヒト多能性幹細胞から神経前駆細胞は、神経炎症性疾患、多発性硬化症35,36のマウスモデルに移植されています。 EAEにおけるhESC由来神経前駆細胞の適用性（実験的自己免疫性脳脊髄炎）-miceは最初2008年に示された35。多能神経前駆細胞は、マウスの脳の脳室に注入し、移植の結果EAEの臨床徴候の減少に編。 Kim らは、ヒトES細胞からのオリゴデンドログリア前駆体を生成し、EAE-マウスに脳室内のものを移植しました。移植は10日以上生存しなかったが、マウスは、神経機能および白質36において炎症誘発性免疫細胞の減少の有意な改善を示しました。幹細胞療法はまた、NPCのに成功し、それぞれの動物モデルで使用することができるように前臨床パーキンソン病の標的化のために適用されています。このために、前駆細胞は、いずれの多能性幹細胞38-40または41が使用された間葉系幹細胞から分化した胎児脳組織37から誘導しました。 2012年には、我々は、マウスiNPCsはミエリン欠損（MD）のラット22の脳に移植後のプロテオリタンパク質、主要ミエリンタンパク質成分を、生成することができることを示しました。その証明の原理実験治療applicabilによるiNPCsの性は、最初に証明され、すぐに別の研究32で確認しました。しかし、人間のiNPCsの治療的使用の完全な可能性が探求されていません。

ここでは、（i）皮膚生検を介して、成人患者からのヒト初代細胞の誘導、神経前駆状態にヒト線維芽細胞の（ii）の直接変換およびニューロンに分化するiNPCsの（iii）の能力の堅牢かつ統合されたプロセスを表示しますおよびグリア系統。このプロトコルの使用は、治療用途のための自家ヒト細胞の生成を高速化するのに役立ちます。

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プロトコル

本研究で用いたヒト線維芽細胞は、ヴュルツブルク、ドイツの大学の倫理委員会によって同意し、倫理的なクリアランスを通知取得後の皮膚のパンチ生検から得た（倫理的な報告なし：11分の96 2011年6月10日の日付）。

1.パンチ生検

  1. 患者の皮膚を消毒。皮内に0.5〜1ミリリットルメピバカイン塩酸塩を使用して生検を（優先あまり日光にさらされる領域）から採取されるの皮膚の一部を麻酔し、滅菌3ミリメートル生検パンチを使用して、皮膚生検を準備し、DPBSで生検+ 1μL/ 1ミリリットルゲンタマイシンをすすぎ、削除脂肪。完全DPBS +ゲンタマイシン、吸引DPBSで二回の生検をすすぎ、ディスパーゼII（2.4 U / ml）で生検をカバーし、16インキュベート - 4℃で18時間を。
  2. 吸引しディスパーゼは完全に、DPBSで二回洗浄し、ピンセットで表皮を取り除きます。 15mlチューブで、転送2ミリリットルのコラゲナーゼタイプ2（500 U / mlのCDU）を追加し、DPBSで二回の生検を洗浄しCollagenaを追加SE最大5 mlの全容量。 37℃、5％CO 2で45分間インキュベートします。
  3. 遠心分離機5 180×gで分、その後、上清を捨てます。 180×gで5分間、再び10ミリリットルDMEM-FCS-ゲンタマイシンメディア（10％FCS、1μL/ mlのゲンタマイシン）と遠心機でペレットを再懸濁。 1.5ミリリットルDMEM-FCS-ゲンタマイシンメディアに上清を再懸濁ペレットを捨てます。付着組織培養フラスコをT25、37℃、5％CO 2でインキュベートし移します。
  4. 3日ごとに培地を変更します。
  5. 約2週間後、細胞は、皮膚の部分の周りに、トリプシン/ EDTA（0.05％）を用いて分割細胞コンフルエントされる場合：DPBSで一度洗浄細胞を、37℃で5分間インキュベートし、5％CO 2×2 mlのトリプシン/ EDTAを添加した後（0.05％）、5分間180×gで15ミリリットルチューブと遠心分離機に転送、DMEM-FCS-ゲンタマイシンメディアの2ミリリットルを追加します。 DMEM-FCS-ゲンタマイシンメディアの適切な量の上清と再懸濁ペレットを捨てます。
  6. さらに、培地ごとに3つのRを変更することにより、細胞を拡大細胞がコンフルエントである場合に上記のようなDの昼と分裂。ゲンタマイシンの添加は、通路2の後に停止することができます。
  7. 直接変換実験のために細胞を使用する前に、標準的なアッセイによってマイコプラズマ汚染を除外するようにしてください。
  8. 細胞が拡張されていたら、直接変換を開始または10％DMSO、90％FCSを用いて細胞を下にフリーズすることがあります。細胞を、2日間-80℃に保存し、その後長期保存のために液体窒素に移すべきです。
  9. 変換の調製のために、DPBS、吸引DPBSで細胞を1回洗浄し、2.5 mlのトリプシン/ EDTA（0.05％）を追加します。 37℃、5％CO 2で5分間おいてください。 、細胞を剥離するために静かにフラスコをタップし、線維芽細胞培地（DMEM込みL-Gluの+ 10％FCS + 1％NEAA + 1％のピルビン酸ナトリウム）の2.5ミリリットルで再懸濁し、15 mlチューブに移します。 5分間、180×gで遠心分離し、上清を吸引除去します。単一細胞懸濁液を生成するために、上下に1ミリリットル線維芽細胞培地とピペットで細胞を再懸濁し。
  10. フックス-Rosenthal-またはノイバウアー細胞計数室とプレート24ウェルプレートのウェルあたり3×10 4個の細胞を用いて細胞数をカウントします。 37℃、5％CO 2でO / Nインキュベートします。

センダイウイルスや分化転換とヒト線維芽細胞の2感染

注：安全性を確保するために、ウイルスを処理する次の手順では、粘膜の露出を防止するために、特に外科用マスク、生物学的安全キャビネットと、層流フード中で、適切な個人の安全装置を用いて実施されなければなりません。

  1. 100μlの線維芽細胞培地（ステップ1.9）に細胞を切り替えます。 Oct4-、Klf4-、Sox2-およびc-MYC-センダイウイルスのアリコートを解凍し、1mlの線維芽細胞のメディアをそれぞれのウイルスを再懸濁します。細胞への3のMOI（ウイルス力価はロット毎に異なるが、各ウイルスの1つのアリコートは、一般的に24ウェルプレートの10ウェルの感染のために使用することができます）で、各ウイルスを加え、穏やかに混合。 37℃、5％CO 2でO / Nインキュベート。
  2. 24後の時間媒体を吸引し、neuroinductionメディアの500μlを添加する（1：1 DMEM / F-12：神経基礎、1×N2、1×B27、1％グルタ、10 ngの/ mlののhLIF、3μMCHIR99021、2μMSB431542）および今から39°C、5％CO 2で培養。一日おきにメディアを変更します。
  3. ラミニンコーティングした6ウェルプレートを準備し、感染後6日目：6ウェルプレート上に溶液1mlを添加し、4℃で24時間維持し、DPBS中1μg/ mlのラミニンを希釈します。
  4. 感染後7日目にDPBS / EDTAを用いて細胞を分割：その後、DPBS / EDTAの500μlを添加し、37℃、5％CO 2で10分間インキュベートし、培地を吸引し、DPBSで細胞を1回洗浄します。
  5. DMEM / F12の500μlを添加して、5分間、180×gで15ミリリットルチューブと遠心分離機でプレートからサスペンションを削除します。
  6. 上清を吸引し、neuroinductionメディア、ラミニン被覆6ウェルプレート上にプレートを1.5 ml中にペレットを再懸濁し、最終conceでROCK阻害剤Y27632を追加細胞に10μMのntration、39℃、5％CO 2で培養。
  7. 一日おきにメディアを変更します。
  8. 感染培養後14日目から37°C、5％CO 2で細胞。神経上皮コロニーは、位相差顕微鏡によって感染後17日目の周りに明らかとなります。彼らは、感染後20日目の周りを取り出すことに十分大きくなければなりません。

推定上INPCコロニーの3分離

  1. 、DPBS中1μg/ mlのラミニンを希釈プレート上の溶液300μlを添加し、4℃で24時間維持：ある日、ラミニンでコート1 48ウェルプレートを選ぶ前に。一日後吸引ラミニンプレートから、ウェルにneuroinductionメディアの200μlを添加します。
  2. DPBSで一度ピックアップするコロニーを含む6ウェルプレートを洗浄し、6ウェルプレートのウェルあたり2mLのDPBSを追加します。機械的にコロニーを選択してください：周囲の細胞を取り除くために細い針を使用して、コロニーの周りにこすり。 200を設定します1;50μlの上のLピペットマンとそれぞれのピペットチップを使用してコロニーを選択します。
  3. ラミニン被覆48ウェルプレートの1ウェルに1つのコロニーそれぞれを転送し、ダウン10回ピペッティングして機械的に単一細胞懸濁液を生成します。細胞への10μMの最終濃度で、ROCK阻害剤Y27632を追加します。
  4. 2日間、37℃、5％CO 2で48ウェルプレートに細胞を増殖させます。 90％の集密度（約3 - - 4日）細胞が80に到達するまで、一日おきにメディアを変更します。

4.拡張とiNPCsの凍結保存

  1. 継代とiNPCsの拡大
    1. 培地を吸引し、DPBSで細胞を洗浄。 DPBSを吸引し、200μlのDPBS / EDTAを添加し、37℃、5％CO 2で10分間インキュベートし、追加のDMEM / F12の200μLを、5分間180×gで、15ミリリットルチューブにプレートから遠心分離機をサスペンションを削除。
    2. 上清を吸引し、neuroi 0.5mlにペレットを再懸濁nductionメディア（2.2ステップ）、ラミニン被覆12ウェルプレートにプレートし、細胞に10μMの最終濃度で、ROCK阻害剤Y27632を追加し、37℃で培養、5％のCO 2。細胞が80に到達した後に - 90％の集密度を、彼らはいずれかをさらに拡大することができるか、次のようにダウンして凍結しました。
  2. iNPCsの凍結
    1. 培地を吸引し、DPBSで細胞を洗浄。吸引しDPBSおよび300μlのDPBS / EDTAを添加し、37℃、5％CO 2で10分間インキュベートし、DMEM / F12の300μlを添加し、5分間180×gで、15ミリリットルチューブにプレートから遠心分離機をサスペンションを削除します。
    2. 上清を吸引し、商業NSC凍結培地0.5mlにペレットを再懸濁します。凍結バイアルに移し、懸濁液を、細胞凍結容器に入れました。 2日間-80℃で保存し、長期保存のために液体窒素に移します。

iNPCs 5.分化

  1. ニューロンへの分化アル系譜
    1. ラミニン被覆プレート上の培養細胞は、上記のように。細胞が約70％であるニューロ差分メディア（DMEM / F-12、1×N2、1×B27、300 ngの/ mlのcAMPを、200μMのビタミンC、10 ngの/ mlのBDNF、10 ngの/ mlのGDNF）にメディアを変更コンフルエント。 3週間一日おきにメディアを変更します。分化中の細胞を分割しないでください。
    2. 3週間後、細胞は、神経マーカーTUJ1を表現する必要があります。より成熟した神経細胞と神経細胞のサブタイプを得るためには、3ヶ月までの分化を続けています。
  2. グリア細胞系列への分化
    1. グリア誘導培地（1にメディアを変更します。1 DMEM / F-12：神経基礎、1×N2、1×B27、10μMのβメルカプトエタノール、100μMの非必須アミノ酸、1.5mMのL-グルタミン、5μg/ mlのインスリン、 40 ng / mlでのT3）を20ng / mlのEGFは、グリア前駆細胞への分化を誘導することを含みます。メディアの半分を削除し、約2週間、一日おきに新鮮な培地により交換してください。この期間中に細胞を分割する必要があります1：100％コンフルエントで10μMROCK阻害剤Y27632の存在下での3に達したとき。
    2. 細胞は、市販のアストロサイトのメディアにほぼコンフルエント変化媒体である場合には、一日おきにメディアを変更します。2週間後、さらに星状細胞への細胞を分化します。約7日後、細胞は、星状細胞マーカー（ 例えば、GFAP）を発現し始めます。 10μMのROCK阻害剤Y27632の存在下で2比：細胞が分化プロトコルの間に100％コンフルエントを取得する場合、1でそれらを分割します。

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結果

ここでは、以下の8週間（ 図1）内に皮膚からパンチ生検により得られたヒト線維芽細胞から誘導された神経前駆細胞（iNPCs）の生成を可能にする統合されたプロセスの説明を提示します。患者specifc iNPCsはさらに、ニューロンとグリア系統に分化し、細胞置換療法および疾患モデリングのための大きな可能性を保有することができます。

Oct4-、Klf4-、Sox2-およびc-myco-の異形仙台neuroinductive培地条件22,31で23と文化をウイルスによる線維芽細胞の感染は17日、感染後の線維芽細胞の形態、コロニーのその後の出現の変化をもたらした（ 図2）。彼らはpluripotency-を発現しないのに対し、生成されたモノクローナル細胞株は、拡大し、Sox2の、SOX1、ネスチン、ビメンチン、のOtx2およびPax6のような神経幹細胞マーカーに陽性染色、ならびに増殖マーカーKi67にすることができます関連マーカーのOct4（ 図3）。

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ディスカッション

ここでは、単離および拡張可能な導入遺伝子を含まない神経前駆細胞へのヒト線維芽細胞の直接変換および細胞補充療法や薬物スクリーニング分析に適用するための推定上の基礎として、その分化した子孫を示します。 NPCの中に体細胞の直接の系譜変換は系統特異的転写の強制発現26,33,34を要因によって達成されました。それにもかかわらず、多くの場合、胎児の線維芽細胞は、分化転換実験33,34のために使用しました。この細胞源は自己由来細胞置換療法のための臨床的な使用を妨げるような生物医学的用途のために、これらの細胞の使用は不適当です。最近、研究はそのような造血細胞43,44のような、より簡単にアクセスできる組織から神経前駆細胞の生成を記載している出版されました。 tripotent神経幹細胞株の生成が成功した誘導overexprによってマウス血液由来のB細胞を示すことができ8導入遺伝子43のesion。また、Castanoのらは 、ヒトSox2-を使用して、造血細胞およびc-MYC-センダイウイルス44からの神経前駆細胞を誘導す...

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開示事項

著者らは、競合する金銭的利益はないと宣言している。

謝辞

私たちは、優れた技術サポートのために役立つ提案やマルティナゲプハルトならびに平家Arthenための幹細胞とヴュルツブルク大学の再生医療グループのすべてのメンバーに感謝したいと思います。この作品は、ドイツ学術協会DFG（ED79 / 1-2）からの助成金、教育研究BMBF（01 GN 0813）のドイツ省、バイエルン研究ネットワーク人工多能性幹細胞」forIPS」と「財団シビルAssmusによってサポートされていました" 図1は、www.servier.com Servier社から入手可能医療技術を用いて製造しました。

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
星状細胞培ScienCell1801
B27LifeTechnologies17504-044
BDNFPeprotech450-02
Biopsy Punchpfm medical48301
cAMPSigmaA6885
CHIR99021Axon medchem1386
コラゲナーゼ Type2ワージントン生化学LS004177
ディスパーゼPAN P10-032100
DMEMLifeTechnologies41966-029
DMEM F12LifeTechnologies11320-033
DMSORoth4720
DPBSLifeTechnologies14190-094
EGFLife TechnologiesPHG0313
FCSBiochrom AG50115
GDNFPeprotech450-10
GentamicinSigmaG1397
GFAP抗体DakoZ0334
GlutaMAXLifeTechnologies35050-038
hLIFPeprotech300-05
InsulinSeralabGEM-700-112-P
Ki67抗体NeoMarkersRM-9106-S
L-グルタミンLifeTechnologies25030-024
LamininSigmaL2020
N2LifeTechnologies17502-048
ネスチン抗体R&DシステムMAB1259
NeurobasalLifeTechnologies21103-049
非必須アミノ酸LifeTechnologies11140-050
NSC 凍結培地SigmaC6295
Oct4-抗体Santa Cruzsc9081
Pax6-抗体CovancePRB-278P
SB431542Invivogeninh-sb43
仙台ウイルス: CytoTune 仙台リプログラミングキット LifeTechnologiesA1378001
ビン酸ナトリウムLife Technologies11360-039
Sox1-antibodyR&DシステムズAF3369
Sox2抗体R&D SystemsMAB2018
T3Santa Cruzsc-205725
Trypsin/EDTALife Technologies15400-054
TUJ1-antibodyCovanceMMS-435P-250
Vitamin CSigmaA4544
Y27632CalbiochemCAS 146986-50-7
β-Mercaptoethanolライフテクノロジーズ 21985023
地 ピル

参考文献

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