ラット皮質ニューロンにおける繊維状アクチン（F-アクチン）涙点の定量化

サマリー

糸状アクチン(F-アクチン)は、スピノジェネシス、シナプス可塑性、およびシナプス安定性において重要な役割を果たします。したがって、F-アクチンpunctaの定量化は、シナプス構造の完全性を研究するための有用なツールです。このプロトコルは、低密度の初代皮質ニューロン培養物でファロイジンで標識されたF-アクチンプンクタを定量化する手順を説明しています。

要約

（F-アクチン）繊維状アクチンタンパク質はspinogenesis、シナプス可塑性、およびシナプスの安定性に大きな役割を果たしています。樹状F-アクチン豊富な構造の変化は、シナプスの完全性と接続性の変化を示唆しています。ここでは、初代ラット皮質ニューロン、F-アクチン斑点のためのファロイジン染色、およびその後の定量化手法を培養するための詳細なプロトコルを提供します。まず、E18ラット胚の前頭皮質は、その後、低密度の細胞培養物中に少なくとも12〜14日間、in vitroで増殖させた神経細胞を解離します。実験的治療に続いて、皮質ニューロンがのAlexaFluor 488ファロイジンで染色され、微小管結合タンパク質2（樹状F-アクチン斑点標識する）（MAP2を、神経細胞や樹状突起の整合性を検証するために）。最後に、特別なソフトウェアがランダムに選択された神経細胞の樹状突起を分析し、定量化するために使用されます。 F-アクチン豊富な構造は、二次樹枝状の枝に識別されます（長さの範囲25-75＆＃181; m）を連続MAP2免疫蛍光を持ちます。ここで紹介するプロトコルは、実験処理に続いて、樹状シナプス構造の変化を調査するための有用な方法となります。

概要

この研究の主な目的は、ニューロンの樹状突起ネットワークのシナプス完全性の測定（推定）の信頼性の高い方法を開発することです。ここでは、ファロイジン染色および特殊な（NIS-要素）ソフトウェアを使用して、その後の分析と樹状突起の免疫細胞化学（ICC）の検出の組み合わせを用いて、ラット初代培養神経細胞におけるF-アクチン涙点の定量化について説明します。

標識ファロトキシンは、大小両方のフィラメント（F-アクチン）に対して同様の親和性を有するが、いくつかのアクチン抗体¹とは異なり、単量体の球状アクチン（G-アクチン）に結合しません。ファロイジンの非特異的結合は、このように細胞イメージングの間に最小限の背景を提供し、ごくわずかです。ファロイジンは、典型的には、ファロイジンによるF-アクチンのはるかに強い標識化を可能にする蛍光顕微鏡用の細胞タンパク質を標識するために使用される抗体よりもはるかに小さいです。このように、神経細胞におけるF-アクチンの局在の詳細な画像をすることができます標識されたファロイジンを使用することによって得られます。

神経細胞の樹状突起のファロイジン（F-アクチン）染色は、成熟した棘、非とげシナプス²と未熟棘を含む樹枝状構造の多様性を表す離散的「ホットスポット」や明るい「斑点」を生成します。未熟棘薄い糸状仮足及びパッチの形態のいくつかの形態を含み、そしてspinogenesis ³の開始を表すことができます。未熟棘と非とげ状のパッチがPSD95 ^{4を欠いています} 。のみならず、棘におけるその後の変化だけでなく、追加の樹枝状構造へのF-アクチンの鉛の生産の変化は、このようにsynaptodendritic整合性^5-7を調査するための重要なツールファロイジンを作ります。一般的には、ファロイジン陽性（F-アクチン）涙点の数は、アクティブなシナプス（興奮性および抑制）、アクチンダイナミクスとシナプスの安定性⁸のバランスを反映しています。

特定のトンを研究することは重要であるが、シナプスのYPES（ すなわち 、興奮棘）、治療の標的が未知であるとき、最初の樹枝状構造体の種々の一般的な整合性を推定する必要があります。 F-アクチンは、抑制性シナプスを含む樹状突起棘および他の構造の主要な構成要素であるので、F-アクチン涙点の変更された数は、シナプス変性症を示すことができます。このシナプス変性症は、より具体的な変化についてさらに調査することができます。複数のシナプスのタイプ/構造を検出するための当社の定量方法は、様々な実験処置後の樹状シナプスの変化（増減）の全体​​的な推定値が得られます。

プロトコル

全ての動物プロトコルを見直し、サウスカロライナ大学の動物実験委員会（保証番号：A3049-01）によって承認されました。

1.低密度胚性神経文化

1. 初代皮質神経細胞培養のための準備
   1. ソリューション：
      1. 10 mlのホウ酸緩衝液中のポリ-L-リジン5mgを溶解することによりポリ-L-リシンストック溶液を調製します。
      2. 49ミリリットルホウ酸緩衝液中で1ミリリットルポリ-L-リジンストックを希釈して使用液を調製します。
      3. 395ミリリットルのdH ₂ Oで開始し、その後、全ての成分（ホウ砂の1.24グラムのホウ酸+ 1.9グラム）を加えることによりホウ酸緩衝液、pH 8.4を準備します。 1MのNaOHにより8.4にpHを調整します。 400ミリリットルに調整し、ボンネットの下に0.2μmのナイロン膜フィルターでろ過します。
      4. 445ミリリットルのdH ₂ Oで始まるとすべての他の成分（50ミリリットル10X HBSS証券+ 1.2グラムHEPES）を追加することで、HBSS溶液、pHが7.2を準備します。 1NのHCl、BRIにより7.2にpHを調整しますNGに500ミリリットルとは、ボンネットの下に0.2μmのナイロン膜フィルターでろ過します。
      5. 10％ウシ胎児血清を含むDMEM / F12：メッキ培地を準備します。ボンネットの下に0.2μmのナイロン膜フィルターでフィルタリングします。
      6. 完全増殖培地を準備します50ミリリットルNeurobasal培地に、サプリメントを追加する（500μlのグルタマックス（100X）+ 500μlのグルコース抗生物質 - 抗真菌溶液（100Xの+ 1ミリリットルのB-27（50X）+500μlの）+100μlの7.5％炭酸水素ナトリウムはボンネットの下に0.2μmのナイロン膜フィルターでフィルタリングします。
   2. 文化の前に二日：
      1. ポリ-L-リジンの2ミリリットルワーキング溶液でコート12 35ミリメートルのガラスボトムディッシュを、フードのO / Nの下におきます。
   3. 文化の一日前：
      1. 皿から空のコーティング剤とのddH ₂ Oですすぎ料理はフードの下で時間乾燥することができます。
      2. 10％ウシ胎児血清（全溶液の10％）でメッキ培地（DMEM / F12を準備します。ピペット2ミリリットル培地に各皿、および^37°Cの 、5％CO ₂でO / Nインキュベートします。
         注：培養する場合には、プラスチック培養皿を回避することが重要です。 （直立顕微鏡用）（倒立顕微鏡用）ガラスボトムディッシュの使用またはカバーガラスは、シャープでクリアな画像が得られます。プラスチックボトムディッシュに比べて、ガラスボトムディッシュは、蛍光顕微鏡検査の際に、不要な色合いやまぶしさを避けることができます。
2. 細胞培養プロトコル：
   1. HBSSバッファー（100〜150ミリリットル）を、冷蔵置く100ミリメートルペトリ皿、鉗子、はさみ、50ミリリットルチューブ、およびフードでUV光の下で15 mlチューブ。
   2. 培養室の外でフードの下、5％セボフルランの致死吸入で妊娠ラットを安楽死させます。
   3. 70％エタノール、10トン胎盤を露出するようにハサミを使用して腹部cavity.Openの途中で尾から子宮をカットアップしながら、鉗子を使用して、下腹部の皮膚に滅菌します。
   4. 8-10 E18の胎児を削除します。プラHBSS溶液を含むペトリ皿中のCe 8-10胎児を。
   5. 鉗子で胎児の頭の後ろを持ち、その後、身体から頭部を切断するはさみを使用しています。 HBSS 5-7ミリリットルで満たされた別のペトリ皿に入れてください。フードに皿を転送します。
   6. 冷HBSSで2つの追加の100ミリメートルのペトリ皿を埋めます。
   7. ピールさておき頭蓋骨は、そしてHBSSで満たされた新しいペトリ皿に脳をスクープ。
   8. それに冷HBSSで新しいペトリ皿に脳を転送し、脳から鋭い湾曲鉗子、別々の小脳および脳幹を使用してください。
   9. 湾曲した鉗子で半球を分離、確保するためにピンセットを使用してください。髄膜を削除します。マークされた15ミリリットルの遠心管に前頭皮質および転送の部分を分離します。
   10. 新鮮な2ミリリットルHBSSで15ミリリットルチューブを記入し、各15ミリリットルチューブに20μlのトリプシンEDTA（0.5％トリプシンおよび5.3 mMのEDTAで10倍濃縮混合物を。）を追加します。
   11. RTで10〜15分間インキュベートします。ゆっくり、数分おきにチューブを旋回セトリングことはできません。
   12. Afター10-15分は、古いHBSSを削除し、新しいHBSSで二回リンスするためにガラスピペットを使用しています。
   13. （2ミリリットルHBSS中1mg / mlの、2mgのトリプシンインヒビター）トリプシン阻害剤に浸し、よく混ぜ、それは5分放置します。新鮮なHBSSで二回洗浄します。
   14. 均質になるまで非常にゆっくりと減少し、先端径較正ピペット及び滅菌チップを用いて再度bubbles.Triturateを回避するように非常にゆっくりとゴム球、磨砕脳片で10~15回ガラスピペットを使用して。
   15. 転送は、事前に準備コーティングした培養皿（50細胞/ mm2の）に所望の密度で細胞を解離しました。 ^37°Cの 、5％CO 2でO / Nインキュベートします。
   16. 24時間後に、新たに作られた完全増殖無血清Neurobasal培地を含むDMEM / F12培地を交換してください。
   17. 実験前の少なくとも12から14日間_、5％CO 2/95％室内空気の加湿インキュベーター中ですべての回で細胞を維持します。新鮮なNeurobasal培地は、古い培地の約50％を交換しておき5-6日細胞を補います。

2.蛍光標識および免疫細胞化学

注：初代皮質細胞培養物の免疫蛍光標識を1 mlと作業容積を有するガラス底面35 mmの細胞培養皿で行いました。

1. リン酸緩衝生理食塩水のpHが7.4（PBS）で2回ガラスボトムディッシュを洗ってください。
2. RTで15分間、4％パラホルムアルデヒドで細胞を固定してください。
3. PBSで細胞を2回洗浄し、5分間、PBS中の0.1％トリトンX-100で透過性。
4. F-アクチン特異的な染色で、室温で20分間細胞を処理するため、のAlexaFluor 488ファロイジン（1時40分、1ミリリットルPBS中ファロイジン25μlの）。
5. PBSで2回細胞を洗浄し、1〜2時間、室温で10％正常ヤギ血清でブロックします。
6. 2％正常ヤギ血清を含むPBSで4 ^O℃でO / Nインキュベートする：ニワトリポリクローナル抗MAP2抗体（2,500 1）希釈
7. インキュベーション後、PBSで2回すすぎます。
8. 二次抗体（AlexaのRを希釈ED 594結合ヤギ抗ニワトリIgG抗体（1：500）2％正常ヤギ血清で、室温で2時間インキュベートします。
9. PBSですすぎ、ヘキスト染料を10μl/皿を追加します。
10. 室温で3分間インキュベートし、PBSで二回洗浄します。
    注：ステップ3（F-アクチン涙点カウント）のための標識された細胞は、準備が整いました。
11. 封入剤として退色防止試薬100μlの細胞サンプルを維持し、長期保存のため、暗所で^4°Cのでおきます。
    注：ファロイジンは退色防止封入試薬で保存することができる1週間と蛍光まで暗所で4℃でPBS中で比較的安定しています。ファロイジンを長期間にわたって保管して外に拡散を開始することができるので、最適な画像が染色後1-3日から取得されます。

3. F-アクチン斑点カウント

1. 蛍光顕微鏡をオンにして、20倍の対物レンズに切り替えます。オープン顕微鏡ソフトウェア、および1280×960ピクセルの画像サイズでプログラムを設定し、0.11倍ズームで7ミクロン/ピクセル画像の解像度。
2. 赤、緑（495nmで）/（613 nm）の蛍光チャネルの下で共同標識F-アクチン/ MAP2ニューロンの画像を取得します。
3. 5グリーン（F-アクチン）/レッド（MAP2）免疫標識/ブルー（ヘキスト）明確に定義された樹状アーバーと個々のニューロンの蛍光画像を選択してください。
4. 連続MAP2免疫蛍光と二次樹枝状のセグメント（長さの範囲25から75ミクロン）でF-アクチン豊富な構造を特定します。
5. 水平レベルに画像の選択した領域を回転させます。新しいイメージとしてコピーして貼り付けます。
6. 各皿のための一貫性の調整を使用して、画像の背景を引きます。
7. 明るい緑色のF-アクチン涙点を数え、訓練を受けた独立した観察者によって手動で選択された樹状セグメントの長さをトレースします。スプレッドシートファイルにデータをエクスポートします。
8. MAP2の長さ（L）総F-アクチン標識された涙点（N）を割ることで密度を計算する樹状突起を標識しました。 F-交流の数などのデータを表現しますデンドライトの10ミクロンあたり錫涙点
   注：涙点の樹状シャフト内染色の平均強度よりも少なくとも50％のピーク強度とF-アクチンの蛍光（サ ​​イズ≤1.5μm）をそれぞれ選択した樹状セグメントに含まれていました。

結果

私たちは、個々の神経細胞の樹状突起を識別することを可能にする35ミリメートルのガラスボトムディッシュで低密度で存在する方法で、私たち第1の培養ラット皮質ニューロン、。 図1では 、微分干渉コントラスト（DIC）画像は、日4、6、10、14、21、in vitroで 27に胎児ラット皮質ニューロンの開発における形態学的変化を示しています。樹状突起の長さと数は、培養ラット初代神経細胞の成熟に伴って増加することに注意してください。ニューロンはわずか14日間熟成した後、実験に使用されています。

樹状突起とシナプスの変化を検出するために、我々は樹状突起のMAP2抗体検出とファロイジンFアクチンの標識を兼ね備えています。 F-アクチンのファロイジン標識は（20-30分）非常に急速であるので、視覚的にICCの抗体標識（ 図2に進む前にsynaptodendriticネットワークの整...

ディスカッション

このプロトコルでは、我々は、私たちは、個々の神経細胞の樹状突起を識別することを可能にする35ミリメートルのガラスボトムディッシュで低密度で培養ラット皮質ニューロンを記述する。次に、我々は、樹状変化を検出するファロイジンとMAP2染色を使用します。その後、我々はF-アクチン斑点の変化を定量化するために特別なソフトウェアを使用していました。

F-アクチン斑点の変化を決定するために、個々の神経細胞の全体の神経回路網が明確に表示されている必要があり、これは、単一ニューロンから適切な二次樹枝状のセグメントを選択することができます。低密度めっきは、個々のニューロンを可視化するための両方、ならびにグリア細胞の存在を最小限にするために重要です。アストロサイトはまた、F-アクチンを含み、ニューロンマーカーなしで、F-アクチン陽性の涙点の分析を混乱させる可能性があります。低密度培養物およびNeurobasal培地の使用は、細胞培養物中で星状細胞の増殖を減少させるのに有用です。しかし、Fアクチンのタンパク質であることを警告与えニューロンに特異的ではない、などMAP2などの特定の神経細胞のタンパク質マー...

材料

この記事で使用された材料の一覧

名前	会社	カタログ番号	コメント
35 mm ガラス底皿 No. 1.5 カバーガラス	MatTek Corporation	P35G-1.5-20-C
DMEM/F12 medium	Life Technologies	10565-018
Trypsin-EDTA	Life Technologies	15400-054
Poly-L-Lysine	Sigma	P9155
ホウ酸	シグマ	B0252
ホウ砂	シグマ	B9876
GlutaMax	ライフテクノロジー	ズ 35050-061	100X
グルコース	VWR	101174Y
HBSS	シグマ	H4641	10X
ニューロベース ミディアム	ライフテクノロジー	ズ 21103-049
B-27 サプリメント	ライフテクノロジー	ズ 17504-044	50X
抗生物質-抗真菌薬ソリューション	Cellgro	30004CI	100X
重炭酸ナトリウム	ライフ	テクノロジー25080
ナスはさみ	ワールド精密機器	500086
アイリスはさみ	ワールド精密機器	500216
アイリス鉗子	ワールド精密機器	15914
デュモン#7鉗子	ワールド精密機器	14097
デュモン #5 鉗子	世界の精密機器	14095
ProLong Gold	Life Technologies	P36930
パラホルムアルデヒド	シグマ	P6148
カバーガラス	VWR631-0137
レクサフルーア488ファロイジン	ライフテクノロジーA12379
正常な馬の血清	ライフテクノロジー	ズ26050-070
ポリクローナル抗MAP2	アブカム	Ab92434
レクサレッド594共役ヤギ抗チキンIgG	ライフテクノロジー	ズA11042
NucBlue 生細胞染色 ReadyProbes 試薬 Hoescht 33342	Life Technologies	R37605
NIS-Elements ソフトウェアパッケージ	Nikon Instruments
Nikon Eclipse TE2000-E 倒立蛍光顕微鏡	ニコンインスツルメンツ
0.2 μm Nalgene ナイロン メンブレン フィルター	Fishersci	151-4020