Method Article

微小重力下で増殖させたヒト腸粘膜の多細胞三次元器官型モデルの開発

DOI:

10.3791/54148

July 25th, 2016

In This Article

Summary

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三次元(3-D)環境中で増殖する細胞は、2-D環境( 例えば 、フラスコまたはディッシュ)で細胞培養上顕著な改善を示します。ここでは、回転-壁容器(RWV)バイオリアクターが提供する微小重力下で培養ヒト腸粘膜の多細胞3次元器官モデルの開発について説明します。

Abstract

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三次元(3-D)環境中で増殖する細胞は、多数の2次元環境における細胞培養の隙間( 例えば 、フラスコまたはディッシュ)をブリッジする可能性があるからです。実際には、広くフラスコまたはディッシュで増殖した細胞は、脱分化し、それらが由来する組織の特殊な機能を失う傾向があることが認識されます。 (a)は、静的モデルとバイオリアクターを用いて(b)のモデル:現在、天然の細胞外マトリックス(ECM)を模倣する細胞が足場に播種される3-D培養系の2種類が主に存在します。最初のブレークスルーは、静的な3次元モデルでした。このような回転-壁容器(RWV)バイオリアクターなどのバイオリアクターを用いた3次元モデルは、より最近開発されています。 RWVバイオリアクターのオリジナルのコンセプトは、1990年代初頭にNASAのジョンソン宇宙センターで開発された、そのような低酸素性、壊死性コアの開発のような静的なモデルの限界を克服すると考えられています。 RWVバイオリアクターは、番目のを回避する可能性があります栄養と酸素の効率的な拡散を可能にする流体力学を提供することによって、問題です。これらのバイオリアクターは、彼らの曝気源の種類によって異なる培養容器の二つの異なるフォーマットをサポートし、回転させるのに役立つローテータベースで構成されています。中心部に同軸人工肺で(1)スローターニング横船舶(STLVsを)、または(2フラット、シリコーンゴムガス転写膜を介して酸素との)高アスペクト比の船舶(HARVs)。バブル形成とその結果としての乱流を回避しながら、これらの血管は、効率的なガス移動を可能にします。これらの条件は、モデルは、培養容器内部の重力(重力)を低減し、層流と最小限のせん断力が生じます。ここでは、RWVバイオリアクターが提供する腸上皮細胞株および一次ヒトリンパ球、微小重力下で培養内皮細胞および線維芽細胞から成るヒト腸粘膜の多細胞3次元器官モデルの開発について説明します。</ P>

Introduction

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改善するために、最初の3-Dモデルを構築する画期的な科学者は、足場の異なるタイプの調査を開始したときに、1980年代の初頭に報告された( 例えば 、ラミニン、コラーゲンタイプI、コラーゲンIV、およびフィブロネクチン)および成長因子のカクテル「静的」3次元モデル1-7の細胞と細胞とECMの相互作用。それ以来、これらのモデルの主な問題点は、媒体および組織の構築8栄養と酸素の転送の制限となっています。血管のネットワークを周囲から栄養と酸素の定常流を受ける生体内環境での細胞とは対照的に、これらのモデルの静的な性質は、細胞へのそれらの効果的な分散を妨げます。例えば、 インビトロで生成された細胞凝集体のサイズは数ミリを超える静的モデルは常に低酸素性、壊死性コア9を開発ます。 RWVバイオリアクターは、この問題を回避する可能性があります栄養素および酸素10〜12の効率的な拡散を可能にする流体力学を提供することによって。しかし、今日まで、RWVバイオリアクターを使用して作業は、1つまたは2つの細胞型13〜17を含むことに限定されています。また、代わりにネイティブの組織に似た空間的配向の、それらの細胞は、細胞凝集体を形成しました。これらの制限の主な理由は、一元的に細胞を組み込むことができる足場の欠如となっています。現在までにRWVバイオ....

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Protocol

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倫理の声明:すべての血液標本は、プロトコル番号HP-00040025から1に参加したボランティアから採取しました。メリーランド大学施設内倫理委員会は、このプロトコルを承認し、この原稿に含まれた研​​究のための健康なボランティアからの血液標本のコレクションを承認しました。本研究の目的は、ボランティアに説明した、そしてすべてのボランティアが知らさ与えた、採血前に同意書に署名しました。

注:培地補充の準備については、 表1を参照てください。 3-D培養培地の調製のための表2を参照されたいです。

培養容器の調製

  1. 例えば 、RPMI)50ミリリットル、容器の充填ポートのキャップを外し、無菌培養培地50mlで埋めます。層流フード内で無菌状態の下ですべての手順を実行します。
  2. キャップを交換し、70%エタノールで任意の表面上の任意のこぼれたメディアを拭きます。
  3. 容器はincubを許可します室温でO / Nに少なくとも15分間食べました。
  4. 培地を廃棄し、3次元培養液の30ミリリットルを追加するために充填ポートを使用します。
  5. 70%エタノールで任意の表面上の任意のこぼれた培地を拭いてください。

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Results

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これまで我々は、腸上皮細胞株および一次ヒトリンパ球、微小重力条件24( 図1)で培養内皮細胞および線維芽細胞からなるヒトの腸粘膜の多細胞3次元器官モデルを設計してきました。線維芽細胞および内皮細胞は、追加の腸基底膜タンパク質45( すなわち 、ラミニン、コラーゲンIV、フィブロネクチン及びヘパリン硫酸プロテオグリカン)で富化Iは、マトリックスコラーゲン中に包埋し、バイオリアクターのRWVに添加しました。 10後 - 15日、組織染色分析は、構築物中の絨毛様構造の存在を実証しました。約60 -これらの上皮細胞の80%が、十分に分化した細胞( 図2)の主要な機能であるECM、近い基礎位置にそれらの核と偏細胞の単層として組織されました。

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Discussion

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本稿では、一次ヒトリンパ球、線維芽細胞、および内皮細胞、ならびに腸上皮細胞株24を含む倍数細胞型から成る、ヒト腸粘膜の生物工学モデルの開発を記載します。この3次元モデルでは、細胞は、微小重力条件下24の下で、コラーゲンが豊富な細胞外マトリックス内で培養されます。

前述したように、このモデルの主な特徴は次の通りである:(i)上皮組織の単層組織を模倣する能力、(ii)の上皮細胞、タイトジャンクション、デスモソームと微絨毛の適切な極性の誘導を、(iii)の長期用語の初代細胞( すなわち 、線維芽細胞および内皮細胞)の高い生存率を用いた培養(20日まで)、(iv)の発現ビリン、サイトケラチン、E-カドヘリンおよびμを含む組織様分化マーカー抗原刺激の際にかなりのサイトカインの量( 例えば 、IL-8)およびアルカリホスファターゼを生産するCIN、(V)

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Disclosures

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著者らは、米国特許商標庁に米国非仮特許出願が提出されたことを宣言する(番号:13/360,539)。

Acknowledgements

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この作業は、MBSに対するNIAID、NIH、DHHS、DHHS連邦研究助成金R01 AI036525およびU19 AI082655(CCHI)によって、またAFに対するNIH助成金DK048373によって部分的に支援されました。内容は著者の責任であり、必ずしも国立アレルギー感染症研究所または国立衛生研究所の公式見解を表すものではありません。

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
クワッドローテーター/独立回転壁容器(RWV)バイオリアクター SyntheconRCCs-4DQ最大4隻まで対応。多かれ少なかれ容器を持つモデルも利用可能です。
使い捨て50ml血管SyntheconD-405ボックス、4血管
HCT-8上皮細胞付き ATCCCCL-244
CCD-18Co 線維芽細胞 ATCCCRL-1459
ヒト臍帯静脈内皮細胞ATCCCRL-1730HUVEC
線維芽細胞成長因子-基本 SigmaF0291bFGF
幹細胞因子 SigmaS7901SCF
肝細胞増殖因子 SigmaH1404HGF
Endothelin 3SigmaE9137
LamininSigmaL2020マウスから分離されたEngelbreth-Holm-Swarm腫瘍
内皮成長因子 SigmaV7259VEGF
白血病抑制因子 サンタクルスsc-4377(LIF
アデニンシグマA2786
インスリンシグマI-6634
3,3',5-トリヨード-L-チロニン ΣT-6397T3
コレラ毒素Σ C-8052
フィブロネクチンBD354008ヒト血漿から単離
アポトランスフェリンΣT-1147
ヘパリンΣH3149
ヘパラン硫酸  プロテオグリカンΣH4777マウスの基底膜から単離 Engelbreth-Holm-Swarm腫瘍
コラーゲンIVシグマC5533胎盤から分離された
熱不活化ウシ胎児血清 Invitrogen10437-028
D-MEM、粉末Invitrogen12800-017
10% ホルマリン–PBSの フィッシャーサイエンティフィックSF100-4
ウシI型コラーゲン InvitrogenA1064401
トリプシン-EDTA フィッシャーサイエンティフィックMT25-052-CI
ピルビン酸ナトリウムInvitrogen11360-070
ゲンタマイシン Invitrogen15750-060
ペニシリン/ストレプトミンシン Invitrogen15140-122
L-GlutamineInvitrogen25030-081
HepesInvitrogen15630-080
Ham's F-12Invitrogen11765-054
Basal Medium EagleInvitrogen21010-046BME
RPMI-1640Invitrogen11875-093
内皮基礎培地ロンザCC-3156EBM-2
内皮細胞増殖サプリメントミリポア02-102ECGS
血管ヒト

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Aumailley, M., Timpl, R. Attachment of cells to basement membrane collagen type IV. J Cell Biol. 103, 1569-1575 (1986).
  2. Buset, M., Winawer, S., Friedman, E. Defining conditions to promote the attachment of adult human colonic epithelial cells. In Vitro Cell ....

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