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Research Article
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Erratum Notice
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Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
マントル細胞リンパ腫 (MCL) は B 細胞の障害を治療することは困難と同様に研究および治療法を開発するプライマリ MCL の異種移植マウス モデルを確立することは困難です。ここでは、その基盤となる生物学を理解するためにマウスの MCL を異種移植片の成功確立について述べる。
B リンパ球は主に家に免疫細胞の循環と彼らのキー ・ プレイヤー、リンパ器官に存在します。正常 B 細胞は、T リンパ球が刺激されるときのみ増殖、発癌性 B 細胞生き残るため、未定義のオルガンのニッチの自律的展開します。マントル細胞リンパ腫 (MCL) はそのような 1 つの B 細胞障害患者の生存率が 4-5 年。これは効果的なメカニズムが、ホーミングとこれらの細胞の生着は生存率を高めるためにブロックの必要性と患者の長寿のために呼び出します。したがって、体内ホーミング機構ブロックによる MCL 治療の有効性を検討する異種移植マウス モデルを開発するための努力は非常に重要です。ひと細胞の異種移植の初期段階の薬をテストするための受信者動物の開発は長い間、関連するマウスの前臨床モデルに欠かせない画面の新しい治療薬として追求されています。この動物モデルの開発人間の移植片拒絶反応を回避し、ひと疾患モデルの確立し、の候補薬の臨床テストを実行する別のリンパ腫型の病気の進行を研究する非常に便利なツールがあります。造血器腫瘍、MCL のよう。私たちは研究し、MCL の新規治療法を開発するための優秀な資源となる異種移植マウス モデルを確立しました。
自然にリンパ球が免疫監視に大きな役割を果たすし、抗原特異免疫1,2をマウントの重要なステップは、リンパ球が人身売買します。このプロセスには、血流に胸腺から、二次リンパ器官、リンパ節、パイエル板、脾臓など同種抗原を満たす彼らそこからナイーブ T リンパ球の移行が含まれます。B リンパ球は骨髄で分化し、二次リンパ器官3包にナイーブ細胞として移行します。これらの B 細胞の一部は受容器の抗原をバインドし、特定の T 細胞によってアクティブ化されます。これらの B 細胞の増殖と分化は、卵胞のマントル層に非活性化、ナイーブ B 細胞をプッシュします。活性化細胞が、パトロール、体や免疫グロブリン分泌形質細胞骨髄4に移行するに成熟細胞のメモリ B に分化します。
MCL は、マントル層でナイーブ B リンパ球が腫瘍に変換するときに発生します。これらのリンパ腫細胞は、リンパ器官の微小環境に存在し、特定の T リンパ球のコントロールとは独立して増殖します。ただし、密度のある特定の段階で彼らはこのニッチから脱出し、他の臓器でのニッチを求めて血流に循環させます。接着分子の複雑さとケモカインとその受容体の混乱を考えるこの細胞人身売買体内のメカニズムはよくわかっていない、したがって治療を妨げます。新しい微小に達することからリンパ腫 B 細胞を防ぐためには、この移行プロセスを効果的にブロックする手法が必要です。
MCL は、B 細胞の悪性腫瘍を治療するために最も困難の一つです。MCL の腫瘍の表現型の開発は、ユニークな生物学的特性の獲得によって特徴付けられる多段カスケードの結果です。診断時に、ほとんどの患者 (70%) 既に存在脾臓、骨髄、および/または消化管5,6舌癌の関与を示す場合の大半の播種性疾患。にもかかわらず、従来の化学療法短期7,8で高い寛解率を誘導する治療を受けた患者の耐性腫瘍によって数年以内の再発は、一般的です。MCL の普及とその基盤となる生物学の理解を助けることができる新しい疾患モデルの紹介: 我々 は患者の腫瘍細胞に由来するひと MCL 異種移植マウス モデルを確立します。我々 は、このモデルは MCL 普及に対する治療戦略を開発し、おそらく再発患者の最適な診断と治療の新しい臨床的視点を提供を助けることを望みます。
ヒトの血液サンプルは、ローカル倫理とジュネーブ大学病院の人体実験委員会によって承認された手続きに従って使用されました。
動物の手術は、機関倫理委員会動物ケアのジュネーブ、スイス連邦共和国のカントンの獣医のオフィスに従って (承認番号: GE/26/15)。
1. 主な末梢血単核球 (PBMCs) 密度勾配分離の準備
注: 3-5 mL 末梢血は白血病段階で MCL を呈する患者から得られました。診断は、染色体転座 t(11;14) の存在とサイクリン D1 の発現によってその後確認およびフローサイトメトリー (CD5 +、CD23−、CD200 +、単クローン性 B 細胞人口) の標準的な診断基準によると設立されました。すべてのケースで単クローン性 B 細胞を構成する > 合計 B 細胞の人口の 90%。残りのセルは、単球および T 細胞に主にいた。
2. B 細胞の負の淘汰による B 細胞の濃縮
3. 異種移植腫瘍モデルマウスの開発
4. 腫瘍細胞がさまざまな臓器の中にしみ込んでキメリズム解析
原稿では、MCL 細胞の生着の異種移植腫瘍モデルマウスの開発に成功のための最適化されたプロトコルについて説明します。(このケース MCL 細胞で)、純粋な細胞集団の準備は成功した MCL 異種移植片を開発する非常に重要です。図 1は、密度勾配分離法による MCL 患者の血液から単核のセル隔離のため分取の手順を表します。単核細胞は、さらに否定的な B 細胞濃縮キットを使用して、マウスへの異種移植注入のために純粋なセル人口を取得する純粋な B 細胞を取得する処理します。成功した MCL 生着するために最大純度を取得するには、注意が必要です。このメソッドを使用して得られる純度は通常 > 90%。残りのセルは、単球および T 細胞 (データは示されていない) に多かった。
図 2は、メソッドのセクションで説明したように B 細胞の浄化のプロトコルの異なるステップを表します。濃縮細胞はその純度の異なるマーカー (CD45、CD19、CD20、CD23、CD200、CD5、カッパ、ラムダ) を用いたフローサイト メーターによるさらに分析されます。MCL セルの特性により、図 3に示すように、シーケンシャル ゲート: CD45 +、cd19、cd20、CD5 +、CD23−、および CD200− を選択します。多色染色補正は各標準フローサイトメトリー設定に従って使用螢の単一の染色コントロールを使用して行った。
図 3EGは、濃縮の前後に B 細胞の典型的なドット プロットを表します。この場合、> このキットを使用して濃縮細胞の 95% は B 細胞です。セルは、前述のプロトコルで 150-200 μ L の PBS の 40-60 × 106セルの濃度で PBS で中断されます。彼らはすぐに NSG マウスに静脈を注入しました。10 週間後 > 開発した注入された動物のリンパ腫の 90% が末期症状(体重減少、波立たせられた髪、減らされた活動等)の兆候を示しています。犠牲、脾臓や肝臓が削除、機械的破壊 (図 4F); 単一細胞懸濁液を取得する処理後血液は心臓心臓穿刺によって慎重に引かれると大腿骨の両端を切断することによって骨髄が処理され、満ちて 2 mL 注射器を使用してフラッシュ RPMI 培地または PBS (図 4)。セルは、ヒト B 細胞 CD19/CD20 と CD45 のような特定のマーカーを用いたフローサイトメトリーによってさらに処理されます。我々 は、受信者マウス緊張 (NSG) B 細胞がないためここでヒト B 細胞特定のマーカーを使用しました。図 4B-Fは、犠牲の後器官のコレクションとさらに処理の手順を表します。2 人の患者から派生した MCL 細胞の生着の程度は、図 4で表されます。この手法を次の患者と異なる臓器の生着のパターンを比較できます。

図 1: 全血から PBMCs の分離します。MCL 患者からの採血は、RPMI 培地 (A) で 1:1 希釈で密度勾配媒体 (C) 血を混合せず密度勾配メディア層 (B) の上に慎重に配置。45 分の 400 × g で遠心分離のような白っぽいリング単核細胞 (矢印の単核細胞層) (D)。このレイヤーが他のレイヤーのさらなる処理 (E) クリーン チューブに混合することがなく優しく戻します。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。

図 2: B の濃縮細胞 PBMCs 。密度勾配遠心法で分離した PBMCs は PBS で 2 回洗浄しました。負を使用した B 細胞濃縮キット、製造元のプロトコルに従うことによって B 細胞の純粋な人口 (1-4) を得られます。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。

図 3: MCL 細胞の FACS 解析と B の純度細胞濃縮前後。マクロファージの MCL は CD45、CD19、CD20、CD23、CD200、CD5、カッパ、ラムダのような異なるマーカーを用いた FACS 解析によって特徴付けられます。CD23 と CD200 の CD45、CD19、CD20、CD5、負の肯定的なセルは選択 (A-F) です。Gは、濃縮E濃縮前に、に比べて負の淘汰のキットを使用してセル人口を表します。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。

図 4: MCL 細胞の生着の異種移植モデルとして NSG マウスします。MCL 患者由来 B 細胞は、NSG マウス (A) の外側尾静脈から点滴を注入しました。接が腫瘍のいくつかの日を可能にした後、マウスが犠牲になったし、骨髄 (C), (D) 脾臓, 末梢血 (E) のような別の臓器 (心臓心臓穿刺下ろし) を収集するために (B) を解剖し、肝臓 (F)。これらの器官は、さらに処理され、B 細胞の存在のためのフローサイトメトリーで分析しました。Gが MCL MCL から派生したさまざまな臓器の細胞の生着のパターンを表す NSG マウスを注入します。2 人の患者の結果が表示されます。± Sem データが表示されます n = 3。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。
著者は、彼らは競合する金銭的な利益があることを宣言します。
マントル細胞リンパ腫 (MCL) は B 細胞の障害を治療することは困難と同様に研究および治療法を開発するプライマリ MCL の異種移植マウス モデルを確立することは困難です。ここでは、その基盤となる生物学を理解するためにマウスの MCL を異種移植片の成功確立について述べる。
この作品はリーグ Genevoise contre le 癌によって支えられた財団博士デュボワ Ferriere ディヌ ・ リパッティ、OCS-02260-08-2008、2914-02-2012 KPS OCS Oncosuisse スイス国立科学財団・ グラント 31003A_156760 および 310030 153456。
| Ficoll-paque 培地 | GE Healthcare | 17-1440-02 | 単核細胞の分離用 |
| RPMI 培地 1640 | Gibco-Life technologies | 61870-010 | 血液サンプルの希釈用 |
| リン酸緩衝生理食塩水 (PBS) | Sigma-Aldrich | D8537 | 細胞の洗浄 |
| 牛血清アルブミン (BSA) | Sigma-Aldrich | A8412 | 単離中の細胞洗浄に使用される1% BSAを含むPBSの調製用 |
| CD19-APC700 | ベックマン・コールター | B49212 | ヒトpan-B細胞マーカー |
| CD20-APC | ベックマン・コールター | A21693 | ヒトpan-B細胞マーカー |
| CD20-ECD | ベックマン・コールター | IM3607 | ヒトpan-B細胞マーカー |
| CD5-PC 5.5 | ベックマン・コールターPN | A70203 | ヒトT細胞マーカー |
| CD23-PE | Pharmingen | 555711 | 細胞表面タンパク質 MCL |
| CD45 KO | Beckman Coulter | B36294 | 汎白血球マーカー |
| CD200-PE | Pharmingen | 552475 | 細胞表面タンパク質 MCL |
| NOD scid γ (NSG) マウス | には典型的には存在しないCharles River Laboratories | 5557 | この研究では |
| MCL 異種移植片の開発に使用Easy sep ヒトB細胞濃縮キット | 幹細胞技術 | 19054 | B細胞を濃縮し、マウスに注入するための純粋な細胞を得る |
| FACS | ベックマン・コールター | ・ナビオス | MCLサンプルの特性評価とMCL生着のための臓器の研究に使用 |
| 1X塩化アンモニウムカリウム緩衝液 | 赤血球溶解緩衝液(NH4Cl 8,024 mg/l;KHCO3 1,001 mg/l;EDTAです。Na2·2H2O 3.722 mg/l ) |