異種タンパク質複合体-DNA相互作用研究のための改変酵母1ハイブリッドシステム

一般に、タンパク質-DNA相互作用を理解するために、Y1Hアッセイは実験室環境でうまく使用される好ましいシステムである¹ 。基本的なY1Hアッセイは、2つの成分を含む：a）レポータータンパク質をコードする遺伝子の上流に首尾よくクローニングされた目的のDNAを有するレポーター構築物; b）目的のTFと酵母転写活性化ドメイン（AD）との間に融合タンパク質を生成する発現構築物。目的のDNAは一般に「餌」と呼ばれ、融合タンパク質は「獲物」として知られている。過去数年間に、Y1Hアッセイの複数のバージョンが、独自の利点を備えた特定のニーズに合わせて開発されました² 。既存のY1Hアッセイは、一度に1つのタンパク質のDNAベイトとの相互作用を同定および確認するために首尾よく実施することができるが、ヘテロ二量体または多量体タンパク質-DNA相互作用を同定する能力は欠如している。

1.構築およびレポータープラスミドの調製

1. 大腸菌 （TOP10）を用いて、エントリーベクターへのさらなるクローニングのために分析される標的DNAのプロモーター領域/「フラグメント」（好ましくは約250〜500bp）をPCR増幅する。
2. 以前^{8、9、10、11に}記載^のように配列決定確認の際に、互換pGLacZi発現ベクター⁷に陽性クローンをサブクローニング。
3. ^13、12前述したように酵母レポーター株を生成するためにpGLacZiの相同組換えによって、プロモーター統合（YM4271）のための酵母株を形質転換します。培地のレシピに沿ったDNA領域を有する酵母株の形質転換および確認工程は、古典的なY1Hプロトコールと類似しているため、ここでは記載しない尻= "外部参照"> ^{9、10、11、12、13。} pEXP-AD502コントロールプラスミドは、標準化の目的で使用することができ、一方、以前に記載されているようにβ-ガラクトシダーゼ活性を定量化することができる⁸ 。
4. 目的のTFまたはタンパク質をクローニングし、続いて、相互作用するタンパク質パートナーをpDEST22およびpDEST32ΔDBD（pDEST32マイナスDNA結合ドメイン）発現ベクターにクローニングする。形質転換された酵母プロモーター断片およびTFクローンは、その後、プロトコルにおいてさらに使用される。

2.変更されたY1.5Hプロトコル

1. 1日目（午後）に、ペトリ皿またはグリセロールストックからSD-Uraの培養液5mLで開始し、30℃シェーカーで一晩インキュベートする。
   注：この培養は、新鮮なストリークプレートから、または酵母の25％または30％グリセロールストックから直接開始することができるDNA断片でクローニングする。
2. 2日目（午後）に、10mLのYPDA培地に500μLの一晩培養液を接種し、30℃の振盪器中で一晩インキュベートする。
3. 3日目（早朝と午後）：有能な細胞を準備する（早朝）。
   1. 一晩培養した2mLのYPDA培地100mLに接種し、30℃の振とう器中でインキュベートする。 OD ₆₀₀が0.4〜0.8（3〜5時間）に達するまで、この新鮮な培養物を増殖させる。
      注：一晩培養のOD ₆₀₀をチェックし、このステップの開始点OD ₆₀₀が0.1〜0.2であることを確認してください。過剰培養または未熟培養の使用は、実験を延長する可能性がある。
   2. 1000 xgおよび21℃で5分間遠心分離する。上清を捨てる。
   3. 渦を使用して10 mLの滅菌水でペレットを再構成するか、上下にピペッティングする。
   4. 1000 xgおよび21℃で5分間遠心分離する。上清を捨てる。
   5. 再構築（TE）/酢酸リチウム（LiAc）2mL中でボルテックスまたはピペッティングを用いて上下にペレットを上下に移動させる。
      注： 表1の TE / LiAcのレシピを参照してください。
   6. 1000 xgおよび21℃で5分間遠心分離する。上清を捨てる。
   7. ペレットを4 mLのTE / LiAc + 400μLのサケ精子DNA（10 mg / mL）に再懸濁し、上下にピペッティングして次のステップに進みます。
4. 同時形質転換：細胞を熱ショック（午後遅く）
   1. 1ウェルあたり20μLの細胞を96ウェルの混合プレート（U底）に分配する。
   2. ウェルにpDEST22：TFプラスミド、pDEST32ΔDBD：TFプラスミドおよびpEXP-AD502プラスpDEST32ΔDBD：TF（正規化対照）の各150ng（〜1.5μL）を加える。
      注：pDEST22：TFおよびpDEST32ΔDBD：TFプラスミドはそれぞれ〜150 ngの最適な共形質転換のために最適な結果が期待されます。したがって、構築物およびプラスミド発現によって変化し得るすべての実験で最適化する必要があります。別のコントロールpDEST22-TFとpDEST32deltaDBDもユーザーの裁量で含めることができます。
   3. 1ウェルあたり100μLのTE / LiAc /ポリエチレングリコール（PEG）を添加する（ 3回混合する ）。
      注： 表1の TE / LiAc / PEGのレシピを参照してください。
   4. プレートを通気性のあるシールで覆い、30〜30℃でインキュベートする（攪拌が必要ない）。
   5. 42℃で20分間（ 正確に ）熱ショック。
5. 細胞をプレートする。
   1. 1000 xgおよび21℃で5分間遠心分離する。マルチチャンネルピペットを用いて上清を除去する。 110μLのTEを添加し、混合する。
   2. 1000 xgおよび21℃で5分間遠心分離する。マルチチャネルピペットを用いて100μLの上清を除去する。パンチャーでペレットを再懸濁する。
   3. 細胞をSD-Trp-Leu寒天プレート上に移す。プレートをインキュベートする30℃で次の工程まで。
6. 5日目（午後）：パンチャー/マイクロプレートレプリケーターを用いて細胞を新しいプレートに移す。
   1. マルチチャンネルピペットを使用して、滅菌96ウェル混合プレート（U底）に50μLのTEを満たしてください。 TEのパンチャーをあらかじめ湿らせます。
      注：パンチャーまたはマイクロプレートリプリケーターは、この手順の前およびその後のプロトコルで滅菌する必要があります。パンチャーをエタノール（100％;分子生物学的等級ではない）に浸して炎に燃やすなどの一般的な方法を適用することができます。パンチャーピンを冷却するために1分間待ちます。
      注意：ベンチで滅菌を行う場合は、ベンチがエタノールで予備洗浄され、周囲に可燃性物質がないことを確認してください。適切な個人用保護具（PPE）を着用してください。
   2. TE充填プレートでコロニーを突き刺して再懸濁する。
      注：プレート上で滑らかな成長がある場合、コロニーを直接パンチングすることができます（複数のコロニーの場合）は、TE充填プレートに滅菌したつまようじを用いて拾い、次にパンチャーを次のステップに使用することができる。
   3. 最適な表面カバレッジのために新しいSD-Trp-Leu寒天プレート上に移します。 30℃でプレートを次のステップまでインキュベートする。
7. 7日目（午後）：β-ガラクトシダーゼ活性を測定するための培養を開始する。
   1. マルチチャンネルピペットを使用して、 SD-Trp-Leu培地50μLを含む滅菌96ウェル混合プレート（U底）を満たす。
   2. マルチチャンネルピペットを使用して、 180μLのSD-Trp-Leu培地で96穴の井戸ブロックを滅菌します。
   3. 培地中のパンチャーをあらかじめ濡らし、コロニーをプレートから培地50μLに移す。
   4. 酵母20μLをSD-Trp-Leu培地180μLに移し、通気性のシールでブロックをシールします。インキュベート30℃振盪器で36時間インキュベートした。
8. 9日目（朝）：酵素測定のための培養を開始する。
   1. 100μLの培養液を滅菌96ディープウェルブロックのYPDA培地500μLに移す。
   2. 滅菌したディープウェルプレートを通気性のシールで覆い、200 rpmで撹拌しながら（OD ₆₀₀ 0.3〜0.6まで）30℃で3〜5時間インキュベートする。
   3. 培養を再懸濁し、分光光度計プレート（OD _600を測定）上のマルチチャンネルピペットを用いて125μLを移す。
      注意：注意：OD ₆₀₀が0.3〜0.6未満である場合は、最後の液滴を泡を避けるために分注しないでください。残りの細胞を1〜2時間インキュベートしてください。このステップで使用した125μLの培養液は、廃棄するか、元のディープウェルブロックにユーザーの裁量で戻すことができます。
   4. ディープウェルブロック中の残りの細胞を3000 xgおよび21℃で10分間遠心分離する。スーパーナタールを削除tを反転させる。
   5. 200μLのZ緩衝液を加えてボルテックスする。
      注： 表1の Zバッファのレシピを参照してください。
   6. 3000 xgおよび21℃で5分間遠心分離する。反転させて上清を除去する。
   7. 20μLのZ緩衝液およびボルテックスを加える。
   8. 凍結融解サイクルに耐えることができるシーリングホイルでプレートを覆う。ヒュームフード内で液体窒素を使用して4サイクルの凍結/融解を行い、次に水浴中で42℃（それぞれ2分間）を行う。
   9. 200μLのZ-バッファー/β-メルカプトエタノール（β-ME）/オルソ - ニトロフェニル-β-ガラクトシド（ONPG）を加える（12mL、21μL、それぞれ8.4mgで20mLの溶液が得られる; 常に新鮮なものを調製する ）。
      注記：ONPGは正しく溶解するまでに時間がかかりますので、このステップに達する1時間前に溶液を調製してください。 ONPGは、β-ガラクトシダーゼ活性の測定のための基質として働く。
   10. 30°Cで17〜24時間インキュベートする（色が以前のpr次のステップに進みます）。
9. 10日目（朝）：反応を止め、測定する。
   1. 反応と記録時間を停止するために110μLの1MのNa ₂ CO _3を追加します。
   2. ボルテックスし、3000×gおよび21℃で10分間遠心分離する。
   3. マルチチャネルを用いて125μLの上清を採取し、OD ₄₂₀を測定する。
      注：気泡を避けるために、最後のドロップを分配しないでください。
   4. スプレッドシート中のβ-gal活性：1000×OD ₄₂₀ /（時間（分）×体積（mL）×OD ₆₀₀ ）を計算する。

関心対象のタンパク質を含む酵母細胞におけるDNA領域の同時形質転換のための一般的なプレートセットアップ手順（ 図2 ）。プレートのセットアップは、実験の必要性および試験されたDNA領域/フラグメントの数に従って改変することができる。プロトコールの5日後、よく増殖し陽性のプレートは図3のように見えるはずです。我々の研究では、転写開始部位の開始から2600bp上流のプロモーター領域を6つの領域または断片（FR1-6） 6にセグメント化した。代表的な図（ 図3 ）において、DNA領域1および4は、タンパク質AおよびB複合体との陽性相互作用を示す。 β-ガラクトシダーゼ活性の測定（ 補足表1 ）では、フラグメント-1のみがレポーター遺伝子活性の4倍の誘導を示し、フラグメント-4は我々のインテグを通過しなかった2倍以上の閾値。

図1：改変イースト - ワンハイブリッド（Y1.5H）アッセイの概要。レイアウトは、アッセイの段階的手順を記述する。 この図の拡大版を見るには、ここをクリックしてください。

【図2】目的のタンパク質（TF）を有する酵母細胞の共形質転換のためのプレート構成の単純化された表現。一般的な実験設定では、プレートを図のように配置することができます。コンストラクトとコントロールの組み合わせは、必要に応じて変更することができ、完全にユーザーの裁量に委ねられます。

図3：成功した同時形質転換後の複製1についての陽性プレート（SD-Trp-Leu）の代表的な画像。同様の結果がより多くの反復で観察されるべきである。フラグメント1-6はDNA領域を表す。 No Fragmentはネガティブコントロールです。

表1：プロトコルで使用されるソリューションのレシピ。この表は、アッセイに使用される主要緩衝液のストックおよび作業溶液の処方を提供する。

補足表1：β-ガラクトシダーゼ活性測定。ここに示すスプレッドシートシートは、プロトコールで与えられた式を用いてβ-ガラクトシダーゼ活性の測定のための鋳型として使用することができる。コンビネーションユーザーの裁量に応じて構成要素の変更が可能です。 このファイルをダウンロードするにはここをクリックしてください。

著者は利害の衝突を宣言しない。