このコンテンツを表示するには、JoVEへの購読が必要です。 または、無料トライアルをお申し込みください。

方法論記事

オルガ鼻記小脳スライス培養におけるプルキンジェ細胞生存

8.1K 回視聴

⸱

DOI:

10.3791/60353

⸱

2019年12月18日

 , 
1Department of Physiology, Northwestern University, Feinberg School of Medicine

この記事について

サマリー

オルガノイトスライス培養は、神経発達または変性/再生プロセスを研究するための強力なツールです。ここでは、マウス小脳スライス培養におけるプルキンエ細胞の神経発達死をモデル化するプロトコルについて説明する。この方法は、神経保護創薬の研究に役立つ可能性があります。.

要約

オルガノチピックスライス培養は、解肉された一次細胞培養よりも近い生体内条件で模倣する強力なインビトロモデルである。出生後の初期の発達では、小脳プルキンジェ細胞は脆弱な期間を経て、その間にプログラムされた細胞死を受けることが知られている。ここでは、この重要な時期にマウスのオルガトイピック小脳スライス培養を実行するための詳細なプロトコルを提供します。スライスはさらにプルキンエ細胞の生存および神経保護処置の有効性を評価するために標識される。この方法は、新しい神経活性分子をスクリーニングするために非常に貴重なことができます。

概要

インビトロモデリングは、生物医学研究に不可欠なツールです。これにより、研究者は、制限された細胞型、または隔離されたシステム/器官内の特定のメカニズムを研究し、厳密に制御することができます。オルガノイトスライス培養は、特に神経科学1の分野で、インビトロ技術で広く使用されている。この方法は、ローラーチューブ技術2を用いて脳スライスを培養したゲーウィラーによって最初に確立され、後に山本らによって改変され、皮質スライス培養を行うために微多孔膜の使用を導入した3。一次細胞培養と比較して、組織皮症スライス培養物は、組織の細胞建築、ならびに組織セクションの平面における天然細胞間接続を維持するという利点を提示する。

組織図スライスは、海馬4、皮質5、線条体6、小脳4、7、および脊髄8、9などの中枢神経系の多くの部分から培養されている。彼らは創薬研究10の強力なツールであることが証明されています。神経活性分子の効果は、免疫染色および生化学アッセイを用いた生存および神経変性、神経回路形成、または電気生理学とライブイメージングを用いた破壊など、多くの方法で評価することができる。

この研究の目的は、小脳の発達をインビトロで模倣する関連モデルであることが知られている組織性小脳スライス培養を行う簡単な方法を記述することです。特に、プルキンエ細胞発達死の研究に着目した。生体内では、プルキンエ細胞は、出生後の最初の週にアポトーシスを受け、出生後3日目(P3)11でピークに達する。小脳スライス培養においても同じパターンが観察され、P1とP8の間の動物からセレベラを採取するとプルキンエニューロンがアポトーシスによって死亡し、ピークはP34、12である。組織性小脳スライス培養物の使用は、いくつかの神経保護分子7、13を同定することを可能にし、ならびにこのプログラムされた細胞死14、15、16に関与するメカニズムの一部を理解することを可能にした。ここでは、海馬におけるStoppiniらの研究に基づくプロトコルを記述し、Dusartら4による小脳に適応した出生後セレベラの急速な解剖および切り刻みが含まれる。神経保護治療の有無にかかわらず、微多孔膜を含む細胞培養インサートに培養をスライスする。および免疫蛍光染色は、神経細胞の生存を評価する。

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

プロトコル

動物を含むすべての実験は、ノースウェスタン大学動物研究委員会に従って行われた。

1. 組織性小脳スライス培養前の準備

  1. 70%エタノールを事前に噴霧した細胞培養フードで、滅菌ボトルレシーバーに取り付けられた250mLボトルトップ真空フィルターで200mLの培養培地を調製します。基底ミディアムイーグル(BME)、ハンクスのバランス塩溶液(HBSS)の50 mL、熱不活性化馬血清の50 mL、200 mM L-グルタミン(最終濃度1mM)の1mL、200g/Lグルコース(最終濃度5mg/mL)の5mLを加えます。培養培地を真空フィルターし、+4°Cで1ヶ月まで保持します。
  2. 殺菌されたバイオセーフティキャビネットで、パッケージから6ウェル培養プレートを取り出します。培養培地1mLで各ウェルを充填します。治療がテストされた場合は、薬理学的薬剤を適切に処理し、コントロールウェル用の同じ量の車両溶液を追加します。本研究では、処理井戸に滅菌3M KCl溶液を1μL、無菌水を1μLをコントロールウェルに添加した。
  3. 親水性ポリテトラフルオロエチレン(PTFE)膜(細孔サイズ=0.4μm)で個々に包まれた細胞培養物の必要数を細胞培養フードの中に持ち込みます。慎重にそれらをラップ解除し、無菌鉗子で細胞培養挿入物を取り出します。インサート膜と細胞培養培地との界面で気泡を避け、6ウェルプレートのウェルに1つずつドロップします。培地中のインサートを37°C、5%CO2インキュベーターで少なくとも2時間培養前に平衡化させる。
    メモ:組織チョッパーは、永久に細胞培養フードに存在する。
  4. 200 mL ビーカー 2 つ、1 つは 150 mL の無菌水で満たされ、もう 1 つは 150 mL 70% エタノールで満たされます。70%エタノール浴に外科用具を浸し、使用する前に水に浸します。
    メモ:エタノールと接触した直後に手術用具を使用しないでください。
  5. 70%エタノールビーカーの両刃を消毒する。滅菌鉗子を使用してブレードホルダーに置き、ブレードクランプレンチを使用して所定の位置に保持します。使用するまで乾燥させてください。
  6. 70%エタノールビーカーにティッシュチョッパーを備えたプラスチックディスクを消毒する。ディスクを置く前に、70%エタノールで切断テーブルをスプレーします。使用するまで乾燥させてください。

2. 解剖と小脳の乱視スライス文化

  1. マウスの子犬を細胞培養フードの中に入れて解剖を行います。
  2. まっすぐな操作はさみを使用して子犬を素早く切り捨てなさい(図1A)。
  3. まっすぐなドレッシング鉗子で鼻で子犬の頭を保持しながら、まっすぐな目のはさみで頭皮を切り開き、後端から始めて、横から中線に向かいます。
  4. 頭蓋骨について同じように進みます。
    メモ:解剖中に小脳に損傷を与えないように、はさみの先端を外側に向けてください。
  5. 脳を取り出し、冷たいHBSS + 5 mg /mLグルコースで満たされた60ミリメートルの皿に転送します。
  6. 滅菌ストレートファイン鉗子を用いて小脳を慎重に解剖する(図1B)。滅菌曲線細かい鉗子を使用して、組織チョッパーの切断テーブルに置かれたプラスチックディスクに移します。
  7. 切断テーブルを回転させて組織の向きを変え、準円部切片を行う。
  8. テーブルリリースノブを右に引っ張って切断テーブルを動かして、ブレードが組織の端に配置されるようにします。
  9. スライスの厚さを350μmに、ブレードの速度を中程度に調整します。
  10. チョッパーを起動します。小脳全体をスライスしたら(図1C)、チョッパーをオフにします。
  11. 滅菌鉗子でプラスチックディスクを取り外します。
  12. プラスチックディスクをHBSS + 5 mg/mLのブドウ糖を含む60mm皿に慎重に近づけます。ピペット冷たいHBSS + 5 mg /mLグルコースは、無菌転写ピペットを使用して組織上にグルコースを、緩衝液で満たされた皿の小脳スライスの収穫を可能にする。
  13. マイクロプローブを使用して小脳スライスを互いに分離します。転写ピペットで良質のセクションを取り出し(真ん中に近い組織切片を使用することをお勧めします)、予備平衡細胞培養挿入物でそれらをドロップします(図1D)。
  14. マイクロプローブを使用して細胞培養インサートに小脳スライスを配置し、転写ピペットで余分なHBSS + 5 mg/mLグルコース溶液を慎重に除去します。
    メモ:この段階では、組織は非常に圧痛があり、物理的な損傷を受けやすいです。細胞培養挿入物当たりの小脳スライスの最大数は、ドナー動物の年齢に依存する。6 ~8 個のスライスは、P0~P4 齢の動物の場合は培養でき、P5 より古い動物の場合は 4 ~ 6 個のスライスを培養できます。
  15. 培養器に培養皿を入れ、2~3日ごとに培地を完全に交換します。
  16. プルキンエ細胞の生存を評価するために、スライスはインビトロで5日早く収集することができる。その他の目的のために、それらは数週間培養中に維持することができる(図1F)。
    注:プルキンエ細胞生存実験の場合、細胞培養培地を変える際に薬理学的治療を更新する必要はない(図1F)。

3. 免疫蛍光

  1. インキュベーターから6ウェルプレートを取り出します。細胞培養培地を除去し、細胞培養インサートを1x PBSで洗浄し、冷たい4%パラホルムアルデヒド溶液を1時間固定し、細胞培養インサートの下に1mL、細胞培養インサートの上に500μLを加えた。
  2. インサートを1x PBSで4x 10分洗い、インサートの上に1mL、インサートの上に500°Lを、軌道シェーカーで洗浄します。
  3. ブラシを使用して、1細胞培養インサートから14ウェルプリフィルド1ウェルの1ウェルに小脳スライスを移し、1x PBS、0.25%トリトンX-100、および3%BSA(PBS-TB)、500 μL/ウェルをあらかじめ入力します。
  4. 室温で1時間PBS-TBでインキュベーションしてスライスを透過・ブロックします。
  5. PBS-TB溶液中で希釈した一次抗体を用いてインキュベートし、+4°で一晩、軌道シェーカー上で、200μL/ウェル。
  6. 翌日は、軌道シェーカー500μL/ウェルで1x PBSで10分の4回のワッシュを行います。
  7. PBS-TB溶液中で希釈された二次抗体を用いてインキュベートし、室温で2時間、軌道シェーカー上で、光から保護し、200μL/ウェル。
  8. 軌道シェーカー、500 μL/ウェルで1x PBSで10分の4回のワッシュを行います。
  9. Hoechst 33342を使用してスライスを反染色し、1x PBS(2μg/mL)で希釈し、室温で10分間、光から保護し、500 μL/ウェル。
  10. 小脳スライスを転写ピペットで顕微鏡スライドに取り付けます。光から保護された空気を完全に乾燥させます。1x PBSで再加湿し、取り付け媒体(約80°L)の数滴で覆われたカバースリップを適用します。泡を作ることは避けてください。
  11. 取り付け媒体が治ったら、小脳のセクションはイメージする準備ができている。

4. 細胞生存のイメージングと定量

  1. 製造元やイメージングコア施設の指示に従って、顕微鏡やレーザーの電源を入れます。
  2. 取得ソフトウェアを起動します。
  3. 10X の目的を使用して、9 ~ 10 個の小葉 (通常は真皮に近い小脳セクション) を存在する未変更の小脳スライスを見つけます。
  4. Z スタック取得をアクティブにします。小脳スライスに存在するすべてのプルキンエ細胞を含むように Z スタックの範囲を定義します。2μmのステップサイズを設定し、取得を開始します。取得した画像を取得ソフトウェアの製造元の形式で保存し、関連するメタデータを保持します。
  5. バイオフォーマットプラグイン18を使用してImageJで取得したファイルを開きます。
  6. [イメージ] > [スタック] > [Z プロジェクト... (図 2A) ] に移動します。
  7. [投影タイプ]ドロップダウン メニューで[最大強度]を選択し、[OK](図 2B)をクリックします。
  8. フラット化された 2-D イメージが生成されます。[マルチポイント]ツールをダブルクリックして、[ポイントツール]ウィンドウを表示します。[ラベルポイント] オプションをオフにすると、カウントされたセルの視覚化が容易になります。次に、プルキンェ細胞のソーマを直接クリックしてカウントを開始します(図1E)。カウントされたセルの総数は、[ポイント ツール] ウィンドウの下部に表示されます (図 3)。
    メモ:通常、細胞培養挿入物あたり9~10個の小葉を含む少なくとも3つの損傷のないセクションを定量化することができます。薬理学的薬剤の神経保護効果を評価するために、少なくとも3つの独立した実験を行う必要があります。

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

結果

図4に示すように、このプロトコルは、プルキンエ細胞生存を免疫蛍光および画像取得ステップに従って評価することができる組織図小脳スライス培養物を生成する。プルキンジェ細胞を抗カルビンジンD-28K(希釈1/200)およびAlexa594抗マウス(希釈1/300)抗体の組み合わせで標識した。画像ステッチは、顕微鏡取得ソフトウェア(NIS-Elements)によって自動的に行われ、小脳スライス全体の画像を得た。スライスあたりのPurkinjeセル番号は、チャートを生成し、統計分析を実行するためにPrism 8ソフトウェアに入力されました。P6では、プルキンエ細胞の生存率はコントロールが低く、既知の脆弱性ウィンドウ4(図4A,E)と一致していました。ドナー動物が年を取り、この重要な期間を終了するにつれて生存率が増加しました (図 4C,E)。小脳スライスを...

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

ディスカッション

小脳スライス培養は、出生後の発達中にプログラムされたプルキンエ細胞死を研究するための強力なツールです。この技術は、その神経保護電位の候補分子を迅速にスクリーニングするために使用することができる。主な利点は、セットアップがシンプルで非常に費用対効果が高く、機器への適度な投資を必要とすること(ビブラートームはティッシュチョッパーの3倍以上のコストがかかる)ということです。さらに、1匹のマウスの子犬から10~15個の健康なスライスを生成できるため、1匹の動物のみを用いて異なるアッセイを並行して行うことができます。

一貫した再現性の高い結果を得るためには、できるだけ効率的に培養を行い、培養する健康な小脳切片を選択することが重要です。この方法は、長期培養(数ヶ月まで)にも適しています。だから, 汚染や抗生物質で培養を補う必要性を避けるために解剖とチョッピングプロセス中に良好な無菌技術を使用することが不可欠です.

小脳スライス培養モデルは、組織切片の平面および培養領域における既存の細胞間相互作用を保持する。これには注意が必要です: カルチ...

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

開示事項

著者たちは何も開示する必要はない。

謝辞

イメージング作業は、ロバートHルーリー総合がんセンターに授与されたNCI CCSG P30 CA060553によって寛大にサポートされているノースウェスタン大学先端顕微鏡センターで行われました。ショーン・マクダーモットの技術支援とサポートに感謝し、図1に示す手描きのイラストに対するマヤ・エプスタインに感謝します。

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
Alexa Fluor 594 ロバ抗マウスIgG二次抗体サーモフィッシャー科学A21203
基礎中型イーグル (BME)サーモフィッシャー科学21010046
バイオセーフティキャビネット クラスII、タイプA2NuAireNU-540-400
ウシ血清アルブミンミリポアシグマA2153
ブラシ
抗カルビンジンD-28K抗体(CB-955)アブカムab82812
CO2インキュベーターNuAireNU-5700
Corning Costar フラットボトム6ウェル細胞培養プレートフィッシャーサイエンティフィック07-200-83
カバースリップ、22 x 50 mmフィッシャーサイエンティフィック12-545-E
ドレッシング鉗子、ストレートハーバード装置72-8949
両刃フィッシャー・サイエンティフィ50949411
エタノール 200プルーフデコン・ラボ2701
アイハサミ、ストレートハーバード・デバイス72-8428
ファイン鉗子フィッシャー・サイエンティフィック16-100-127
L-グルタミン 100Xサーモフィッシャー・サイエンティフィック・サイエンティフィック 25030149
グルコース溶液ThermoFisher scientificA2494001
Hanks'平衡塩溶液ThermoFisher scientific14025092
Hoechst 33342, Trihydrochloride, TrihydrateFisher ScientificH21492
Horse Serum, heat inactivated, New Zealand originThermoFisher scientific26050088
ImageJ
McIlwain Tissue ChopperFisher ScientificNC9914528
MicroprobesFisher Scientific08-850
ミリセル細胞培養インサートミリポア SigmaPICM0RG50
Nalgene Rapid-Flow 滅菌ディスポーザブルフィルターユニット PESメンブレン、250 mLThermoFisher scientific168-0045
Nikon A1R 共焦点レーザー顕微鏡システムNikon
NIS-Elements イメージングソフトウェアニコン
パラホルムアルデヒドアクロス オーガニックス41678-0010
パスツールピペットフィッシャー サイエンティフィ13-678-20D
塩化カリウムフィッシャー サイエンティフィBP366-500
プロロング ゴールド 退色防止 封入剤サーモフィッシャー サイエンティフィP10144
操作ハサミ、ストレートハーバード装置72-8403
オービタルシェーカー ベリーダンサーIBI サイエンティフィックBDRLS0003
プリズム 8GraphPad
スーパーフロストプラス 顕微鏡スライドフィッシャーサイエンティフィック12-550-15
組織培養皿、60 mm グリップリング付きフィッシャーサイエンティフィックFB012921
組織培養プレート、24 ウェルファルコン/コーニング
トランスファーピペット、滅菌済みThermoFisher scientific13-711-21
Triton X-100ThermoFisher scientificBP151-500
ック ック ック ック 353047

参考文献

  1. Humpel, C. Organotypic brain slice cultures: A review. Neuroscience. 305, 86-98 (2015).
  2. Gahwiler, B. H. Organotypic monolayer cultures of nervous tissue. Journal of Neuroscience Methods. 4 (4), 329-342 (1981).
  3. Yamamoto, N., Kurotani, T., Toyama, K. Neural connections between the lateral geniculate nucleus and visual cortex in vitro. Science. 245 (4914), 192-194 (1989).
  4. Dusart, I., Airaksinen, M. S., Sotelo, C. Purkinje cell survival and axonal regeneration are age dependent: an in vitro study. Journal of Neuroscience. 17 (10), 3710-3726 (1997).
  5. Wiegreffe, C., Feldmann, S., Gaessler, S., Britsch, S. Time-lapse Confocal Imaging of Migrating Neurons in Organotypic Slice Culture of Embryonic Mouse Brain Using In Utero Electroporation. Journal of Visualized Experiments. (125), e55886(2017).
  6. Daviaud, N., et al. Modeling nigrostriatal degeneration in organotypic cultures, a new ex vivo model of Parkinson's disease. Neuroscience. 256, 10-22 (2014).
  7. Ghoumari, A. M., et al. Mifepristone (RU486) protects Purkinje cells from cell death in organotypic slice cultures of postnatal rat and mouse cerebellum. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100 (13), 7953-7958 (2003).
  8. Labombarda, F., et al. Neuroprotection by steroids after neurotrauma in organotypic spinal cord cultures: a key role for progesterone receptors and steroidal modulators of GABA(A) receptors. Neuropharmacology. 71, 46-55 (2013).
  9. Gao, P., et al. P2X7 receptor-sensitivity of astrocytes and neurons in the substantia gelatinosa of organotypic spinal cord slices of the mouse depends on the length of the culture period. Neuroscience. , 195-207 (2017).
  10. Sundstrom, L., Morrison, B., Bradley, M., Pringle, A. Organotypic cultures as tools for functional screening in the CNS. Drug Discovery Today. 10 (14), 993-1000 (2005).
  11. Jankowski, J., Miething, A., Schilling, K., Baader, S. L. Physiological purkinje cell death is spatiotemporally organized in the developing mouse cerebellum. Cerebellum. 8 (3), 277-290 (2009).
  12. Ghoumari, A. M., Wehrle, R., Bernard, O., Sotelo, C., Dusart, I. Implication of Bcl-2 and Caspase-3 in age-related Purkinje cell death in murine organotypic culture: an in vitro model to study apoptosis. European Journal of Neuroscience. 12 (8), 2935-2949 (2000).
  13. Ghoumari, A. M., Wehrle, R., De Zeeuw, C. I., Sotelo, C., Dusart, I. Inhibition of protein kinase C prevents Purkinje cell death but does not affect axonal regeneration. Journal of Neuroscience. 22 (9), 3531-3542 (2002).
  14. Ghoumari, A. M., et al. Neuroprotective effect of mifepristone involves neuron depolarization. FASEB Journal. 20 (9), 1377-1386 (2006).
  15. Repici, M., Wehrle, R., Antoniou, X., Borsello, T., Dusart, I. c-Jun N-terminal kinase (JNK) and p38 play different roles in age-related Purkinje cell death in murine organotypic culture. Cerebellum. 10 (2), 281-290 (2011).
  16. Rakotomamonjy, J., Ghoumari, A. M. Brain-Derived Neurotrophic Factor Is Required for the Neuroprotective Effect of Mifepristone on Immature Purkinje Cells in Cerebellar Slice Culture. International Journal of Molecular Sciences. 20 (2), (2019).
  17. Stoppini, L., Buchs, P. A., Muller, D. A simple method for organotypic cultures of nervous tissue. Journal of Neuroscience Methods. 37 (2), 173-182 (1991).
  18. Linkert, M., et al. Metadata matters: access to image data in the real world. Journal of Cell Biology. 189 (5), 777-782 (2010).
  19. Uesaka, N., et al. Organotypic coculture preparation for the study of developmental synapse elimination in mammalian brain. Journal of Neuroscience. 32 (34), 11657-11670 (2012).
  20. Falsig, J., et al. Prion pathogenesis is faithfully reproduced in cerebellar organotypic slice cultures. PLoS Pathogens. 8 (11), 1002985(2012).
  21. Bouslama-Oueghlani, L., Wehrle, R., Sotelo, C., Dusart, I. The developmental loss of the ability of Purkinje cells to regenerate their axons occurs in the absence of myelin: an in vitro model to prevent myelination. Journal of Neuroscience. 23 (23), 8318-8329 (2003).
  22. Apuschkin, M., Ougaard, M., Rekling, J. C. Spontaneous calcium waves in granule cells in cerebellar slice cultures. Neuroscience Letters. 553, 78-83 (2013).
  23. Audinat, E., Knopfel, T., Gahwiler, B. H. Responses to excitatory amino acids of Purkinje cells' and neurones of the deep nuclei in cerebellar slice cultures. Journal of Physiology. 430, 297-313 (1990).

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

再版と許可

さらに記事を探す

器官培養スライス法小脳スライス調製免疫蛍光染色神経保護治療スクリーニング組織切片作成セルカルチャーインサートパラホルムアルデヒド固定蛍光標識抗体電気生理学的モニタリング
オルガ鼻記小脳スライス培養におけるプルキンジェ細胞生存
お問い合わせ
図書館に推薦する

プライバシー

利用規約

ポリシー

著作権 © 2026 MyJoVE Corporation. 無断転載を禁じます。