このコンテンツを表示するには、JoVEへの購読が必要です。 または、無料トライアルをお申し込みください。

方法論記事

神経筋解析のためのラット声帯の調製

3.7K 回視聴

⸱

DOI:

10.3791/61327

⸱

2020年5月15日

 ,  , 

この記事について

サマリー

このプロトコルは、検査用神経筋研究のためのラットの声の折り目を準備するために使用される方法を記述します。

要約

このチュートリアルの目的は、神経筋の研究のためのラットの声の折り目の準備を説明することです。このプロトコルは、ラット喉頭解剖、フラッシュ凍結、および声帯の凍結切断の手順を概説する。本研究では、縦方向および断面面の両方で声を折るクライオセクションの方法を説明する。このプロトコルの目新しさは、本質的な喉頭筋の正確な同定を保証し、組織喪失の可能性を低減する、凍結切断中の喉頭追跡である。図は、両方の平面の進行性の凍結切断を示しています。29匹のラットヘミ喉頭は、甲状腺軟骨の出現から、完全な声の折り目を含む最初のセクションの出現まで、凍結切断され、追跡された。完全なボーカルフォールドは、両方の平面のすべての動物のために視覚化されました。甲状腺軟骨の出現から両方の平面におけるフルボーカルフォールドの出現までの距離には、高いばらつきがあった。体重は喉頭のランドマークの深さと相関しておらず、個々の変動性および組織製剤に関連する他の要因が、断面化中のランドマークの出現における高い変動性を引き起たす可能性があることを示唆した。本研究は、方法論を詳述し、組織化学的神経筋の調査のためにラットの声の折り目を準備するための形態学的データを提示する。個人の変動性が高いため、喉頭のランドマークは、組織および組織の損失を切除することを防ぐために、凍結切断中に密接に追跡する必要があります。ラット喉頭内のランドマークの適切な組織準備と意識を含む一貫した方法論の使用は、研究全体で一貫した結果を支援し、喉頭神経筋メカニズムを調査するためのモデルとしてラットボーカルフォールドを使用することに興味を持つ新しい研究者を支援します。

概要

ラット喉頭は、発達、老化、疾患および薬理学的薬剤1,2,3,4,5に対する構造的および機能的な神経筋喉頭適応を調査するための確立されたモデルである。組織学的方法の一貫性は、筋肉の準備と分析に関与する複数の複雑さだけでなく、喉頭軟骨内にカプセル化された筋肉の喉頭の大きさ、形状、および地形に関連する課題があるので、この作業ラインに不可欠です1,6,7,8,9,10,11 .ラットの本来の喉頭筋のサイズが小さいため、系統的埋め込み、凍結、および凍結切断は、一貫した正確な結果を達成するために重要です。例えば、ラットの声帯をコロナ平面で切り離すとき、4つの内在性喉頭筋の神経筋接合(NJ)は、組織深度11の1.8mm未満以内に位置する。したがって、凍結切断中の喉頭筋解剖学の正確なモニタリングは、対象のセクションを正確に特定し、組織の過剰切除を防ぐことが不可欠です。ターゲット筋肉の過大な切断は、NMJs11の数と地形の不正確な識別をもたらすか、または目標筋肉がランドマークの向きの混乱のために廃棄された場合、サンプルサイズの全体的な減少をもたらす可能性があります12。喉頭筋の研究とそれぞれの適応の新しいモデルが開発される中で、結果が正確で信頼性が高く、研究全体で再現可能であることを保証するためには、標準的な手術手順が不可欠です。

本稿の目的は、最適な縦断および断面分析のためのラットの声の折り目の調製を詳述することです。当研究室で定期的に使用される詳細な方法は、凍結切断中に標的筋のランドマークを同定するために記述されています。同様の方法は複数の研究室で使用されていますが、初心者の研究者によって実装された場合に信頼性と正確なレプリケーションを確実にするために、文献よりも詳細な情報が提供されています。このチュートリアルの目的は、検査室と調査の一貫性を向上させるために、ラットの声帯の免疫組織化学(IHC)評価のための標準的な方法論を提供することです。

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

プロトコル

この研究は、ニューヨーク大学医学部の施設動物ケア・使用委員会に従って行われました。

1. ラット喉頭を解剖する

  1. 制度的に承認されたプロトコルに従ってラットを安楽死させる。組織標本の毛皮の汚染を防ぐために、下顎からマニュリウムに腹側の首を剃り、アルコールで綿棒を剃ります。
  2. 10倍の拡大率を持つ解剖スコープの下で、気管が露出するまでメスで中線の首の切開を作成することによって喉頭全体を切除する。
  3. 中線で腹側外線喉頭筋を分離し、鉗子と解剖ハサミまたはメスを使用して喉頭を露出させます。
  4. 気管尾骨を第3気管リングに切断し、舌骨に切開ロストラルを作り、切除ハサミを使って喉頭全体を切除する。
  5. 拡大縮小の下で、マイクロディスセクションツール(ピンセット、ピン、ピン、マイクロシザー)を使用して喉頭から外因性喉頭組織(食道、甲状腺、外回喉頭筋)を取り除きます。
  6. マイクロシザーでは、後部コラリテノイド筋肉の間の正中線をランドマークとして使用して、喉頭をarytenoidの間にドーセリーします。喉頭の横壁をピンで留め、声帯を露出させ、次いでマイクロシザーで声の前部のコミュシャの間の甲状腺軟骨の正中線を通って腹孔を二分する(図1)。
    注: この手順はオプションです。喉頭全体を保つためにスキップすることができます。喉頭の二角切除は、同じ喉頭の左右の側面を別々に使用することにより、複数の免疫染色技術を可能にする。
  7. 各ヘミ喉頭をリン酸緩衝溶液(PBS)で~10秒にリンスし、凍結中の氷晶形成を低減する作業ワイパーで繊細に乾燥させます。

2. 喉頭組織の固定および/またはフラッシュフリーズ

注: 固定は、すべての免疫染色プロトコルに最適とはいえない場合があります。多くの場合、喉頭組織は、解剖直後に新鮮なフラッシュ冷凍である。ステップ 2.1 をスキップして、固定せずに喉頭組織をフラッシュフリーズします。

  1. ヘミ喉頭を固定するために、PBSで4%ホルムアルデヒドを充填した遠心管に組織を配置し、70rpmで軌道シェーカー上の室温で1時間置く。ティッシュをきれいな遠心管に移し、PBSで20分間3倍洗いします。その後、クリーン遠心管に移し、4°Cで20%スクロース/5%グリセロール溶液(約18時間または組織が沈むまで)に沈水する。
    注意:ホルムアルデヒドは危険であり、適切な個人用保護具と一緒にヒュームフードで使用する必要があります。
  2. すべてのヘミ喉頭を均一な位置に配置し、最適な切削温度(OCT)化合物で満たされたクライオモールドに入れます。ヘミラNXの場合は、声帯の内側の表面がクリオマールの底に面し、声楽の縦方向の側面がクリオマール開口部の下端と平行に配置されます。喉頭全体の場合、クリオマールの底に向かって後部クリコアリテノイドと、声楽の縦方向の側面を、クリオマール開口部の下端と平行に配置します。
    注:OCTコンパウンド内の一貫した喉頭配は、ラットの声帯の凍結切断に重要です。ヘミヤNXが埋め込まれ凍結されると、その向きを変更するために解凍する必要があり、それによって、複数の融解凍結サイクルによる組織損傷のリスクを導入する。
  3. 液体窒素に囲まれたスチールビーカーで冷やされたイセペンタン(2-メチルブタン)を用いたフラッシュフリーズ組織。
    注:白い沈殿物がビーカー13の側面および底部に形成され始めると、isopentaneは組織凍結のための最適な温度に達する。イセペタンは液体窒素よりも熱伝導率が高いため使用され、急速凍結時の組織ブロックの割れを防ぐのに役立ちます。OTCにおける凍結組織のより詳細な説明については、クマールら13を参照してください。
  4. 各金型を事前にラベル付けされたホイルで包み、脱水を防ぐために個々の冷凍袋に入れ、-80°C冷凍庫に保管するために移されるまですぐにドライアイスに保管します。

3. 断面面におけるクライオセクションヘミヤクス

  1. クライオスタットのチャンバー温度を-20 °Cに設定し、メーカーのマニュアルで筋肉組織の切断に推奨される温度範囲(15-25 °C)の真ん中にあります。
  2. クライオスタットセクションの厚さを10μmの厚いセクションに設定します。
    注:筋線維断字解析では、10 μmの厚い断面が最適で、繊維タイピング解析用のラベル付き筋繊維の完全な染色と堅牢なイメージング強度を可能にします14,15,16。いくつかのプロトコルは、神経筋の標的に応じて異なるセクション厚さを必要とするかもしれない。
  3. 凍結スタットチャンバーに組織を移し、凍結スタット標本ディスク(チャック)にOCT化合物の均一な層を追加し、組み込まれた組織ブロックをOCT化合物の上に置きます。チロイルテノイド(TA)筋線維解析のために声帯の断面を得るために、腹側甲状腺軟骨がクライオスタットブレードに面し、アリテノイド軟骨が検体円盤に面するように、試料をチャックに貼り付ける。
    注: これらのランドマークは、OCT コンパウンドが凍結すると白色になり不透明になるため、この段階では表示されないことに注意してください。この視界の欠如は、フラッシュ凍結段階でヘミラリクスの向きに注意することが重要である理由です。
  4. 甲状腺軟骨の腹側部分が現れるまで、検体頭部を100μm進めることによりOCT化合物をトリムする。
  5. 次に、甲状腺軟骨の発症から、層状のプロプリア、内側TA筋肉、および横TA筋肉が露出するまでの30μmの切片をトリムして追跡します。
    注:喉頭のランドマークは、断面の角度が斜めではないことを確認するために、100 μmごとに甲状腺軟骨の発症から追跡および注意する必要があります。 図2 は、10倍の倍率で断面面の喉頭ランドマークの2つのセットを表しています。
  6. ターゲットTA筋肉に到達したら、10μmで正に帯電したスライドのセクションを収集します。
  7. 4°CでPBSにセクションを保管し、汚れる準備ができるまで水分を保持します。
    注:固定組織はIHCターゲットに応じて1週間までPBSに保存できますが、固定されていない組織は直ちに処理する必要があります。

4. 縦方向の平面におけるクライオセクションヘミナクス

  1. クライオスタットチャンバーを再び-20°Cに設定して、断面の厚さを30μmに変更します。
    注:NMJ分析では、30-60 μmの間の組織厚を使用して、神経末端またはモータエンドプレート11,12,17の断片化を伴わずに喉頭筋内の複数の完全なNmJをキャプチャすることができます。
  2. TA筋肉のNMJ分析のための縦方向の声帯セクションを得るために、喉頭蓋がクライオスタットブレードに向き、気管腔が検体ディスクに向かって下向きになるように、試料をチャックに貼り付ける。
  3. 甲状腺軟骨が現れるまで、検体頭部を100μm進めてOCT化合物をトリミングします。
  4. TA筋の層および内側の部分および内側の分裂が露出するまで、甲状腺の発症から30μmのトリムおよびトラックセクション。
    注:縦方向の平面の喉頭のランドマークの5つのセットは、ターゲットTA筋肉に向かって組織の深さの進行を追跡することをお勧めします。 図3 は、10倍の倍率で縦方向の面における喉頭のランドマークを表しています。
  5. ターゲットTA筋肉に到達したら、30μmで正に帯電したスライドのセクションを収集します。
  6. 4°CでPBSにセクションを保管し、汚れる準備ができるまで水分を保持します。

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

結果

代表的な結果は、喉頭神経筋系における声の運動の影響に関する継続的な調査の一環であった。29匹の雄フィッシャー344/褐色ノルウェーラット(生後12匹、24ヶ月齢12匹)を計量し、CO2 吸入で安楽死させ、続いて両側性乳房離脱手術を行った。

手順は、NmJと側面および内側TA筋肉の繊維サイズにラベルを付けるために概説されたプロトコルに従った。喉頭のランドマーク間の距離は、喉頭筋と周囲の軟骨を使用して縦方向および断面の両方で追跡され、凍結切断中の進行を決定した(表1)。追跡は、両方の指向性面で甲状腺軟骨の最初の出現で開始されました。図2は、TA筋肉の内側と層状に現れる甲状腺(図2a、b)との時間的順序での断面の極性の断面の目印の出現を示す(図2c,d)。

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

ディスカッション

神経筋解析のためのラットの声帯を準備すると、様々な課題を提示することができます。喉頭筋は軟骨に囲まれ小さいだけでなく、標的筋を直接抽出することが困難となり、喉頭解剖学的ランドマークの深部に動物間に高いばらつきも見られた。筋肉の断面平面プロトコルの場合、完全な声の折り目のセクションは、腹側甲状腺軟骨の最初の出現後に21-85セクション(1セクションあたり10 μm)の間に現れました。

各種類のプロトコルの組織の均一な埋め込み、配向、および断面にもかかわらず、喉頭のランドマーク間の距離に変動性が指摘された。さらに、体重の違いは、喉頭ランドマークの1セットから次のセットまでの組織深さの広い範囲の変動を考慮していなかった。喉頭のランドマーク間のこの距離の変動は、動物間の喉頭解剖学の個人差、解剖時のOCT化合物内のクリオマール内の喉頭の配向の小さな違い、または断面時に検体円盤に標本を配置した方法(すなわち、離れ取りまたは配置の差の差の前に検体に置かれたOCT化合物の量)に起因する可能性がある。

検体調製...

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

開示事項

著者らは開示するものは何もない。

謝辞

この研究は、国立国立衛生研究所の難聴やその他のコミュニケーション障害研究所のF31DC017053-01A1(LENELL、PI)およびK23DC014517(ジョンソン、PI)の助成金によって支えられた。

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
2-メチルブタン認定フィッシャーケミカル35514
アルミホイルフィッシャーブランド1213101
クライオトングSSサーモサイエンティフィック11679123
クライオスタットカバイオシステムズCM3050
オスタットブレードCLターキー D554X5022-210-045
使い捨てベースモールド15mmx15mmThermo Scientific41-741
ディスポーザブルアンダーパッドMedline23-666-062
解剖キットThermo Scientific9996969
DPBS - ダルベッコのリン酸緩衝生理食塩水Gibco14190136
冷凍切片 ミディアムフィッシャーヘルスケア23-730-571
アイスバケツベルアート
免疫染色モイスチャーチャンバーTed Pella IncNC9425474
ニードルホルダーAssiASSI.B148
不織布スポンジ、4 プライクイック メディカル9023
オービタル シェーカーTroemner02-217-987
パップ ペン
パラホルムアルデヒド、16% w/v aq. soln.、メタノールフリーアルファ エーザー50-00-0
プレミアム マイクロ遠心チューブフィッシャーブランド5408129
試料保管バッグフィッシャーブランド19240093
ステンレス鋼目盛り測定32オンス/ 100ミリリットルラーウェア114231B
スーパーフロストプラス顕微鏡スライドフィッシャーブランド12-550-15
タスクワイパーキンバリークラークプロフェッショナル&トレード; 3415506666A
タイマーフィッシャーブランド2261840
バンナスパターンはさみAssiASSI。
注:すべての消耗品について、これらは購入する機器の例です。私たちの方法を完成させるために、正確なモデルは必要ありません。
ライクライ11999054ポーSAS15RV

参考文献

  1. Connor, N. P., Suzuki, T., Lee, K., Sewall, G. K., Heisey, D. M. Neuromuscular junction changes in aged rat thyroarytenoid muscle. Annals of Otology, Rhinology and Laryngology. 111 (7), Pt 1 579-586 (2002).
  2. Suzuki, T., et al. Age-Related Alterations in Myosin Heavy Chaing Isoforms in Rat Intrinsic Laryngeal Muscles. Annals of Otology, Rhinology and Laryngology. 111 (11), 962(2002).
  3. Johnson, A. M., Grant, L. M., Schallert, T., Ciucci, M. R. Changes in Rat 50-kHz Ultrasonic Vocalizations During Dopamine Denervation and Aging: Relevance to Neurodegeneration. Current Neuropharmacology. 13 (2), 211-219 (2015).
  4. Wright, J. M., Gourdon, J. C., Clarke, P. B. Identification of multiple call categories within the rich repertoire of adult rat 50-kHz ultrasonic vocalizations: effects of amphetamine and social context. Psychopharmacology. 211 (1), 1-13 (2010).
  5. Bowers, J. M., Perez-Pouchoulen, M., Edwards, N. S., McCarthy, M. M. Foxp2 mediates sex differences in ultrasonic vocalization by rat pups and directs order of maternal retrieval. Journal of Neuroscience. 33 (8), 3276-3283 (2013).
  6. Basken, J. N., Connor, N. P., Ciucci, M. R. Effect of aging on ultrasonic vocalizations and laryngeal sensorimotor neurons in rats. Experimental Brain Research. 219 (3), 351-361 (2012).
  7. Ciucci, M. R., et al. Reduction of dopamine synaptic activity: degradation of 50-kHz ultrasonic vocalization in rats. Behavioral Neuroscience. 123 (2), 328-336 (2009).
  8. Ciucci, M. R., Vinney, L., Wahoske, E. J., Connor, N. P. A translational approach to vocalization deficits and neural recovery after behavioral treatment in Parkinson disease. Journal of Communication Disorders. 43 (4), 319-326 (2010).
  9. Nagai, H., Ota, F., Konopacki, R., Connor, N. P. Discoordination of laryngeal and respiratory movements in aged rats. American Journal of Otolaryngology. 26 (6), 377-382 (2005).
  10. Ma, S. T., Maier, E. Y., Ahrens, A. M., Schallert, T., Duvauchelle, C. L. Repeated intravenous cocaine experience: development and escalation of pre-drug anticipatory 50-kHz ultrasonic vocalizations in rats. Behavioural Brain Research. 212 (1), 109-114 (2010).
  11. Inagi, K., Schultz, E., Ford, C. N. An anatomic study of the rat larynx: establishing the rat model for neuromuscular function. Otolaryngology and Head and Neck Surgery. 118 (1), 74-81 (1998).
  12. Lenell, C., Newkirk, B., Johnson, A. M. Laryngeal Neuromuscular Response to Short- and Long-Term Vocalization Training in Young Male Rats. Journal of Speech, Language, and Hearing Research. 62 (2), 247-256 (2019).
  13. Kumar, A., Accorsi, A., Rhee, Y., Girgenrath, M. Do's and don'ts in the preparation of muscle cryosections for histological analysis. Journal of Visualized Experiments. (99), e52793(2015).
  14. McMullen, C. A., Andrade, F. H. Functional and morphological evidence of age-related denervation in rat laryngeal muscles. Journals of Gerontology. Series A: Biological Sciences and Medical Sciences. 64 (4), 435-442 (2009).
  15. McMullen, C. A., et al. Chronic stimulation-induced changes in the rodent thyroarytenoid muscle. Journal of Speech, Language, and Hearing Research. 54 (3), 845-853 (2011).
  16. Lenell, C., Johnson, A. M. Sexual dimorphism in laryngeal muscle fibers and ultrasonic vocalizations in the adult rat. Laryngoscope. 127 (8), 270-276 (2017).
  17. Johnson, A. M., Ciucci, M. R., Connor, N. P. Vocal training mitigates age-related changes within the vocal mechanism in old rats. Journals of Gerontology. Series A: Biological Sciences and Medical Sciences. 68 (12), 1458-1468 (2013).
  18. Feng, X., Zhang, T., Ralston, E., Ludlow, C. L. Differences in neuromuscular junctions of laryngeal and limb muscles in rats. Laryngoscope. 122 (5), 1093-1098 (2012).

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

再版と許可

さらに記事を探す

喉頭解剖凍結切片作成プロトコル組織標本作成組織化学的分析喉頭内筋縦断切片作成横断面分析喉頭トラッキング神経筋肉研究