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Research Article
Hongkai Wang1,2, Dom D’Andrea1, Yeon Sik Choi3,4, Yasmine Bouricha1, Grace Wickerson3,4, Hak-Young Ahn3, Hexia Guo3,4, Yonggang Huang3,4,5,6, Milap S. Sandhu7, Sumanas W. Jordan8, John A. Rogers3,4,6,9,10,11,12, Colin K. Franz1,3,13
1Laboratory of Regenerative Rehabilitation, Shirley Ryan AbilityLab, Department of Physical Medicine and Rehabilitation,Northwestern University Feinberg School of Medicine, 2Northwestern University Interdepartmental Neuroscience Program, 3Center for Bio-integrated Electronics, Querrey Simpson Institute for Bioelectronics,Northwestern University, 4Department of Materials Science and Engineering,Northwestern University, 5Department of Civil and Environmental Engineering,Northwestern University, 6Department of Mechanical Engineering,Northwestern University, 7Arms and Hands Lab, Shirley Ryan AbilityLab, Department of Physical Medicine and Rehabilitation,Northwestern University Feinberg School of Medicine, 8Division of Plastic and Reconstructive Surgery, Biologics, Shirley Ryan AbilityLab,Northwestern University, 9Department of Biomedical Engineering,Northwestern University, 10Department of Neurological Surgery,Northwestern University, 11Department of Chemistry,Northwestern University, 12Department of Electrical and Computer Engineering,Northwestern University, 13The Ken and Ruth Davee Department of Neurology,Northwestern University Feinberg School of Medicine
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Erratum Notice
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Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
これは、末梢神経用のワイヤレス給電インターフェースの外科的移植と操作のためのプロトコルです。ラットの坐骨神経または横隔神経のいずれかに配置された神経刺激装置の例を使用して、このアプローチの有用性を実証します。
末梢神経界面は、実験神経科学や再生医療において、さまざまな用途で頻繁に使用されています。このようなインターフェースは、センサー、アクチュエーター、またはその両方です。従来の末梢神経インターフェースの方法では、外部システムにつなぐか、バッテリー電源に依存して動作の時間枠を制限する必要があります。ワイヤレス、バッテリー不要、完全埋め込み型の末梢神経インターフェースの最近の開発により、新しいクラスのデバイスは、有線またはバッテリー駆動の前駆体と同等またはそれ以上の機能を提供することができます。この論文では、成体ラットに(i)外科的に移植し、(ii)このシステムにワイヤレスで電力を供給し、制御する方法について説明します。坐骨神経モデルと横隔神経モデルは、このアプローチの汎用性を強調するために例として選択されました。この論文は、末梢神経インターフェースが複合筋活動電位(CMAP)を喚起し、治療用電気刺激プロトコルを提供し、末梢神経損傷の修復のための導管を組み込む方法を示しています。このようなデバイスは、単回投与または反復投与の治療刺激に対する治療の選択肢を拡大し、さまざまな神経部位に適合させることができます。
外傷性末梢神経損傷(PNI)は米国で発生し、年間約200,000人の発生率があります1。PNIに苦しむほとんどの患者は、永続的な機能障害が残ります。最悪の場合、筋肉の麻痺を引き起こし、治療抵抗性の神経障害性疼痛を引き起こす可能性があり、患者は治療2として手足の切断を進んで受けることになります。PNIの結果を改善するための最大の障害は、軸索の再生が再生しなければならない距離に比べて遅すぎることです。例えば、成人のヒト軸索は1 mm/日で成長するが、近位肢の病変の場合、1000 mm>距離にわたって再生しなければならないことがある。
現在の臨床診療では、PNIの~50%が外科的修復を必要とします3。神経再生を成功させるには、軸索が(i)病変部位を横切って成長し(すなわち、ギャップ交差)、次に(ii)神経経路を下って再生して末端臓器標的に到達する(すなわち、遠位再成長)必要があります(図1)。神経再生を促進することが証明されているFDA承認の薬はありません。PNIの臨床管理の現状は、過去数十年にわたって漸進的に変化したに過ぎず、再生軸索が移動しなければならない距離を短縮するための遠位運動神経移植術4や、近位神経が収縮し、直接縫合できない場合に備えた「既製の」合成神経導管5などの外科的方法の技術的改良に限られています.しかし、術後に神経に適用される治療的電気刺激に関する4つのランダム化臨床試験があり、これらはアルバータ大学のK.Ming Chan博士が主導した単一施設研究であり、筋肉6,7,8または皮膚9の再神経支配が有意に改善されたことが示されています。この電気刺激プロトコルの基礎研究はげっ歯類で行われ10,11、電気刺激はギャップ交差(図1)を増強することによって特異的に機能するが、遠位再成長12,13,14,15は機能しないことが示されている。
4つの電気刺激無作為化臨床試験すべてで使用された経皮的ワイヤー電極の外科的配置は、その効果が20Hzでニューロン細胞体を1時間11秒間連続的に脱分極するのに十分な電流の供給に依存するため、必要でした。臨床現場では、この電気刺激プロトコルは、痛みのために皮膚の表面刺激電極を介して必要な強度では、ほとんどの患者にとって耐えられません。術後に経皮的電極を流すことには、深部創傷感染や、手術室(OR)からの患者搬送中の神経からのワイヤーの偶発的な変位など、重要なリスクがあります。さらに、手術時間自体のコストが高いことは、急性期の術後回復中ではなく、その環境でそれを試みることに対する阻害要因です。既存の末梢神経インターフェースの欠点に対処するために、ワイヤレスでバッテリー不要の完全埋め込み型の末梢神経インターフェースの新しいクラスが登場しています。
この新しいクラスのワイヤレス埋め込み型電子システムは、電気刺激の投与の容易さと柔軟性を高め、より広範な臨床実装を妨げる障壁を打ち破る態勢を整えています。この論文では、成体ラットの坐骨神経および横隔神経モデルにおいて、(i)外科的に移植し、(ii)このシステムをワイヤレスで駆動および制御する方法について説明します。末梢神経界面がCMAPを喚起し、治療用の電気刺激プロトコルを提供し、さらには末梢神経の修復のための導管としても機能できることを示しています。ここでのプロトコルは、光遺伝学的媒介性神経調節16、制御された薬物放出17、または時間の経過とともに繰り返される電気刺激18,19のための光パルスを送達できるこの技術の他の変種に適合させることができる。
このプロトコルに記載されているすべての手順は、実験動物のケアと使用に関するNIHガイドに従って実施され、ノースウェスタン大学の施設動物ケアおよび使用委員会(IACUC)によって承認されました。このプロトコルは、ノースウェスタン大学の比較医学センターおよびIACUCの動物ケアガイドラインに従います。プロトコルを適応させる際には、IACUCに相談する必要があります。
1. ワイヤレス電子刺激装置の作製(図2)
2.移植のためのデバイスの準備
3. ラット右坐骨神経移植による電気刺激用ワイヤレス・電池不要の末梢神経インターフェースの外科的処置(図3)
注意: 無菌状態を維持してください。動物処置室の指定された手術エリア内で手術を行います。外科医は、手術中、フェイスマスク、コート、キャップ、滅菌手袋を着用します。複数回の手術を行う場合は、動物間で滅菌手袋を交換し、手術ごとに清潔で滅菌された手術器具を使用してください。手術の合間には、加熱滅菌(オートクレーブまたはガラスビーズ滅菌器)で器具を滅菌します。体重200〜250gの成体のSprague-Dawleyラットを使用します。
4. ラット左横隔神経の無線刺激装置移植手術(図5A)
注意: セクション3のように、無菌状態を維持します。体重200〜250gの成体のSprague-Dawleyラットを使用します。使用前にすべての手術器具を滅菌してください。
5. 治療用電気刺激のワイヤレス送達
6.安楽死
坐骨神経損傷モデルでは、脛骨神経枝のエンドツーエンド修復の前に、右坐骨神経の周囲にインプラントを留置します(図3、 図4A、 および図7A)。30Gの同心円状の針電極を右前脛骨筋に配置して、最大強度の電気刺激に必要な刺激パラメータを定義します。これらの実験には、反応の大きさが最大で横ばいになるまで刺激強度を上げることが含まれます。前脛骨筋は坐骨神経の腓骨枝によって神経支配されているため、脛骨神経離断損傷では免れます。したがって、前脛骨筋からの記録は、電気刺激治療の継続的なモニタリングを可能にする。
ワイヤー電極によって右坐骨神経に送達される単一刺激パルス(5 mA、0.02 ms)の場合、前脛骨筋同側に記録された5.4 mVの負のピーク振幅で最大のCMAP応答が誘発されます(図7B;黒いトレース)。ワイヤレスでバッテリ不要のインプラントによって供給される同等の刺激パルスの場合、4.6mVの負のピーク振幅で同等のCMAP応答が引き出されます(図7B、オレンジ色のトレース)。これは、無線神経刺激が有線神経刺激によるCMAPの平均88%を達成し21、臨床研究における治療効果に必要な閾値をはるかに上回るという最近の報告と一致しています6,7,8,9。示されている例では、ワイヤレス刺激装置と有線刺激装置の待ち時間が長いのは、記録された筋肉からの距離が長いためです。
横隔神経モデルでは、離断の前に右横隔神経の周囲にインプラントを配置します(図5)。最大強度の電気刺激に必要な刺激パラメータを定義するために、30Gの同心円状の針電極を右(同側)の前肋骨縁に皮下に配置して、右半隔膜から記録します。実験では、応答の大きさが最大になるまで刺激電圧を上昇させます。横隔神経は周囲の神経血管構造から分離することが困難な場合があるため、その同一性はけいれん反応を誘発することによって確認することができます(図6;オレンジ色の痕跡)。刺激の特異性は、神経電極カフから遠位の横隔神経を切断し、その後けいれん反応を消すことによってさらに検証できます(図6;黒い痕跡)。
反復的な低周波電気刺激療法は、軸索再生を促進する確立されたプロトコルを使用して、坐骨神経に1時間送達することができます(6,7,8,9,10,11;図8)。ワイヤレスインプラントのカフインターフェースを右坐骨神経に配置し、30G同心円状の針電極を右前脛骨筋に配置して治療を監視しました。図8Aは、1時間20Hzの電気刺激の開始時(0分)に記録された筋電図における4つの連続したスパイクを示しています。図8Bは、1時間の電気刺激の40分間に記録された他の4つのスパイクを示しており、ピーク振幅がわずかに減少しており、これはワイヤーベースの電気刺激療法で記録された疲労パターンと一致している15,21。
末梢神経再生の程度は、神経病変部位に遠位に適用される逆行性トレーサーを使用して評価できます。末梢軸索は複数の側副芽を生やすため、脊髄の運動ニューロン体細胞の逆行性追跡とカウントは、神経自体内の再生軸索を数えるよりも再生ニューロンの数をより正確に評価することを可能にします31。これを実証するために、坐骨神経幹は挫傷によって切除されました。回復から3週間後、坐骨神経の2つの枝、腓骨神経(緑)と脛骨神経(赤)に2種類の蛍光逆行性色素をそれぞれ投与しました(図9A)。図9B-Dは、脛骨神経(図9B)または腓骨神経(図9C)のいずれかを形成する腰髄前角の下部運動ニューロンの点灯サブグループを示しています。オーバーレイ画像は、脊髄の前角にある標識されたニューロンの2つの異なる列を示しており、空間分布と病変部位の遠位の軸索を再生した運動ニューロンの数の観点から定量化できます(図9D)。

図1:神経再生モデル。 (A)ギャップ交差は、修復後に軸索が近位神経端から遠位神経端に成長するときに、神経修復後早期に発生します。(B)遠位再成長の持続時間は、標的末端器官(皮膚、筋肉など)までの距離および軸索再成長の速度に関連している。神経修復を改善するためのほとんどの治療法は、これらのプロセスの一方または両方を対象としています。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

図2:ワイヤレス電子刺激装置製造の図。 左は、円形の無線周波数パワーハーベスタコイル、伸縮可能な延長電極、目的の神経を包む神経カフなど、デバイスの構造の詳細な層です。右は、デバイスの 3 つの部分を示す簡略化された図です。略語:PLGA =ポリ(乳酸-グリコール酸-co);b-DCPU = 生体吸収性動的共有結合ポリウレタン。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

図3:ラット坐骨神経モデルへのワイヤレスで電池不要の神経インターフェースの移植。 (A)この図は、ラットの右坐骨神経に完全に埋め込まれたシステムを示しています。(B)上面は、右脛骨神経の末端から端までの修復のすぐ近位の坐骨神経上に位置する電極界面を示しています。底面パネルは、近位端と遠位神経断端の間のギャップ修復を橋渡しする延長神経カフを有する電極界面を示す。略語:PLGA =ポリ(乳酸-co-グリコール酸)。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

図4:坐骨神経移植術 (A)皮膚、皮下結合組織、臀筋を切開してハムストリングを露出させます。(B)孤立した坐骨神経(黒矢印)。(C)神経カフ、ワイヤー(白いアスタリスク)、およびインプラントが見える(星)を備えた移植後のデバイス。(D)縫合糸による結合組織の閉鎖。(E)創傷クリップによる切開部の閉鎖。(F)皮膚の上のコイルによって生成される無線電気刺激。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

図5:横隔神経移植手術。 (A)仰臥位での頸部の腹側図。(B)胸骨舌骨筋を露出させるための皮膚および皮下結合組織を切開する。(C)舌骨筋と胸鎖乳突筋の間の潜在的な空間を解剖する。(D)横隔神経(矢印)、腕神経叢から分離。(E)横隔膜筋電図による横隔神経の確認。黒矢印、記録電極。赤い矢印、刺激装置。(f)移植。(G)深い皮膚縫合による皮膚の閉鎖。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

図6:横隔膜からの誘発された複合筋活動電位による横隔神経離断の完全損傷の確認。 横隔神経離断術(ORANGE)以前は、横隔神経の電気刺激により同側横隔膜に複合筋活動電位が誘発されていましたが、横隔神経離断術(BLACK)によって廃止されました。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

図7:無線と有線による電気刺激を比較した代表的な神経伝導研究。 (A)坐骨神経上の無線(BLACK)および有線(ORANGE)デバイスの配置の図。記録電極を前脛骨筋に配置した。(B)有線インプラント(ORANGE)とワイヤレスインプラント(BLACK)によって誘発される複合筋活動電位。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

図8:インプラントから1時間、20Hzの反復電気刺激によるTA筋からの筋電図記録。 (A)e-stimの最小1でのEMGの痕跡。(B)e-stimの最小40でのEMGの痕跡。略語:EMG =筋電図;TA =前脛骨筋;e-stim = 電気刺激;min = 分。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

図9:坐骨神経再生の代表画像。 (A)坐骨神経損傷と蛍光逆行性標識の図解。坐骨神経軸索は挫傷によって切断された。3週間の回復後、遠位枝である腓骨神経(緑)と脛骨神経(赤)に逆行性標識が付けられました。(B-D)腰椎脊髄の画像は、前角のイプシレシオナル内のニューロン体細胞を示しています。スケールバー = 30 μm。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。
著者に利益相反はありません。
これは、末梢神経用のワイヤレス給電インターフェースの外科的移植と操作のためのプロトコルです。ラットの坐骨神経または横隔神経のいずれかに配置された神経刺激装置の例を使用して、このアプローチの有用性を実証します。
この作業では、SHyNE Resource (NSF ECCS-1542205)、IIN、およびノースウェスタン大学の MRSEC プログラム (NSF DMR-1720139) の支援を受けているノースウェスタン大学 NUANCE センターの NUFAB 施設を使用しました。この研究は、ノースウェスタン大学材料研究センターの米国国立科学財団のMRSECプログラム(DMR-1720139)が支援するMatCIファシリティを利用しました。C.K.Fは、米国国立衛生研究所(NIH)のユーニス・ケネディ・シュライバー小児保健・人間発達研究所(助成金番号R03HD101090)および米国神経筋財団(開発助成金)の支援に感謝しています。Y.H.はNSFからの支援に謝辞を述べる(grant no.CMMI1635443)。この研究は、ノースウェスタン大学のQuerrey Simpson Institute for Bioelectronicsの支援を受けました。
| アンプ | エレクトロニクス&イノベーション | 201L | |
| 任意波形発生器 | RIGOL | DG1032Z | 30 MHz、2 チャネル、200 MS/秒、14 ビット分解能、8 Mpts |
| ブピバカイン | ファイザー | 655317 | マルカイン、0.5% |
| 銅/ポリイミド/銅 | Pyralux | AP8535R | 18 & マイクロ;m厚の上下の銅、75&マイクロ。m厚ポリイミド |
| EMG記録装置 | Natus | Nicolet VikingQuest | |
| EPOXY MARINE | Loctite | ||
| Isoflurane, USP | Butler Schein Animal Health | 1040603 ISOTHESIA | |
| Meloxicam | covetrus | 5mg/ml | |
| 針電極 | Technomed USA Inc. | TE/B50600- 001 | |
| PDMS (シリコーン エラストマー キット) | DOW | SYLGARD™ 184 | |
| ProtoLaser U4 | LPKF | U4 | |
| Puralube Vet 軟膏滅菌眼潤滑剤 | Puralube | 83592 | |
| 波形発生器 | Agilent Technologies | Agilent 33250A |