低コストの染料を使用して、線虫のグリコーゲン蓄積と腸の完全性を視覚化する

サマリー

生物科学を教えることは、実験を使用することで、学生にとってより刺激的なものにすることができます。この原稿は、高カロリー食、飢餓、老化に関連する仮説を立ててテストするように学生を奨励するために、教室で利用できる2つの異なる、しかし補完的なプロトコルを提示します。

要約

Caenorhabditis elegans(C.エレガンス) は、透明な非寄生性線虫で、単純な生物学を備えているため、細胞またはその分子含有量の染色を通じて生物科学を教えるのに最適なツールになります。ルゴール染料(ヨウ素-ヨウ化カリウム溶液)は、グリコーゲン貯蔵を染色するために生化学で広く使用されています。これに関連して、異なる食事や酸素レベルなどの異なる条件の影響に加えて、給餌された動物と飢餓状態の動物の違いを観察することが可能です。エリオグラウシンは、腸のバリアの喪失を示す青色の染料です。腸のバリアが損なわれていない場合、青い染料は内腔の内側に染みます。しかし、この完全性が損なわれると、染料は体腔内に漏れ出します。実体顕微鏡や顕微鏡を使用して、教師は生理学的および生化学的変化を実証したり、生徒に科学的な質問をするように促したり、これらのアッセイを使用して仮説を立てて仮説を立てたりテストしたりできます。本プロトコルは、学生が容易に実施できる C.エレガンス における2つの染色技術を記載している。

概要

高校での生物科学の教育は、絶え間ない課題です。特に、テクノロジーへのアクセスと使用は、教育学習プロセスに重要な進歩をもたらしましたが、人工知能チャットボットなどのツールは、簡単に(そして時には正しくない)応答が得られるため、合理化と証拠の検索をより困難にします¹。そのため、教室での探究型アプローチで実践的な実験を伴う科学的方法を使用することは、学生の批判的思考、創造性、および技術的スキルを開発または刺激するための重要な戦略^です2。

この文脈では、自由生活線虫 Caenorhabditis elegans は、その特定の利点のために、教育目的の^実験 で成功裏に使用されてきました3:それは寄生虫ではなく、摂食に使用される 大腸菌 はバイオセーフティレベル1であるため、生物学的危険性をほぼゼロに減らします。エレガントで定量化可能な移動運動があり、学生が観察するのは興味深いものです。また、透明であるため、臓器の観察が可能になるだけでなく、生体分子の存在や生理学的変化の発生を示すことができる色素で染色することもできます⁴。したがって、生化学や老化などの生理学的変化に関連する簡単な仮定を教室で仮定し、検証することが可能です。

グリコーゲンは、グルコシル残基によって形成されるグルコース分子の長い分岐鎖によって形成される貯蔵炭水化物であり、(1→4)-αグリコシドの線形結合と分岐点での(1→6)-αグリコシド結合により形成され、筋肉の収縮、細胞分化、および血^糖維持に特に重要です5。グリコーゲンは、酵素グリコーゲン合成酵素のインスリン活性化により、摂食後に合成されます。運動中または空腹時、エピネフリンまたはグルカゴンはそれぞれグリコーゲンホスホリラーゼを活性化し、したがって、多糖類を分解して筋肉細胞にグルコース-6-リン酸を提供するか、遊離グルコースを放出して低血糖を回避します^6,7。グリコーゲンレベルの変化は^{、がんを含む}さまざまな生理学的および病態生理学的条件下で、細胞の分化、シグナル伝達、酸化還元調節、および幹細胞性に影響を与えます8。 C.エレガンスでは、グリコーゲンは主に食道筋、皮下組織、腸、ニューロン、そして主に体壁の筋肉に見られます⁹。グリコーゲン含有量は、ヨウ素がらせん状のコイルに結合してヨウ素-グリコーゲン複合体を形成するため、ルゴールのヨウ素溶液を使用して測定でき、目に見えるシャープな青黒色または茶黒色になり、これはC.エレガンス¹⁰のグリコーゲン含有量を示すために成功裏に使用されています。高グルコース摂食によって引き起こされるグリコーゲン蓄積は、線虫の寿命を縮め、したがって老化プロセスを加速させる可能性があることが実証されています^11,12。さらに、代謝障害、他のホルモン、および生体異物への曝露もグリコーゲン代謝を変化させる可能性があります^13,14。したがって、C.エレガンスのグリコーゲン含有量に関する実験は、さまざまな要因がその代謝を乱し、運動、食事、病気、老化などの横断的なテーマに関連する基本的な生化学に関するクラス内の議論を刺激する可能性があるため、非常に興味深いものです。

老化は、細胞の損傷によって引き起こされる時間依存的な機能低下です。この損傷は、酸化ストレス、テロメアの消耗、タンパク質静止の喪失、炎症、さらには不溶性ポリグルコサン体の蓄積などに関連している可能性があります¹⁵。老化の特徴の一つは、生物の生涯に起こるいくつかの慢性疾患に関連する腸の完全性の低下である¹⁶。腸の恒常性の維持は、腸上皮の完全性に依存しており、腸上皮は、物理的障壁を形成し、隣接する上皮細胞を接続する結合タンパク質によって支えられています。この上皮に損傷があると、間質への管腔内容物の漏れが起こります¹⁷。このメカニズムに基づいて、スマーフ試験は、この青色染料エリオグラウシン二ナトリウム塩が腸膜を通過せず、内腔¹⁸に留まるため、いくつかの動物モデルにおける腸の完全性を検証するために使用されてきた。ワームが病原体に感染したり、毒物で汚染されたり、老化したりして間質の完全性が変化すると、染料はバリアを通過してワーム全体に広がり、ワーム全体が青色になります。このアッセイでは、老化の生理学についての議論や、線虫をさまざまな条件にさらすことでこのプロセスを加速または遅延させる要因についての実験が可能になります。ここでのプロトコルでは、生化学と生理学に関連する仮説を立ててテストするように学生を刺激し、刺激するためにクラスで簡単に実行できるこれら2つの染料ベースの方法について詳しく説明します。

プロトコールの最初の部分は、C.エレガンスモデル¹⁰のグリコーゲン含有量を定性的および定量的に分析するための適用性を示しています。プロトコルの第 2 部の目的は、C. elegans 腸の完全性を評価することです。この技術により、腸膜の完全性を評価することにより、C.エレガンスの老化をモニタリングすることができます。さらに、それは、物質が老化を加速または遅延させるかどうか、および任意の物質が腸バリア¹⁹に毒性の潜在性を有するかどうかを評価することを可能にする。

本研究に用いた C.エレガンス 株は、ブリストルN2野生型であった。ただし、手順は、同等の成長率を示す菌株を使用して再現することも、機器の交換の必要性に基づいて方法を調整する必要があります。それらは同じまたは類似の機能を持っていることを考慮し、または使用する菌株に応じて、特定の菌株には特定のメンテナンスおよび/または感度要件があるためです。この情報は、 Caenorhabditis Genetics Center(CGC)またはWormBaseのWebサイトから入手できます。これらの変更が分析法の再現性に影響を与えることはありません。

プロトコル

注: 大腸菌 OP50(E.coliOP50 )細菌およびブリストルN2野生型株は、米国ミネソタ大学のCGCから、または C.エレガンス 研究所からの寄付から入手できます。研究者の安全のためには、個人用保護具の使用が不可欠です。次亜塩素酸塩や水酸化ナトリウムなどの試薬の濃度は低いですが、これらの化学物質に関連する潜在的なリスクを最小限に抑えるために、原稿で強調されているように、推奨されるPPEを着用することが不可欠です。

1.グリコーゲン含有量

1. テストプレートの準備
   1. 線虫株ごとに60 mm x 15 mmのNGM寒天プレート²⁰( 補足表1に記載の線虫増殖培地寒天培地10 mL、NGM)を6枚調製し、室温で1日間乾燥させます。汚染を防ぐためにプレートを閉じたままにしてください。
   2. プレートあたり200 μLの 大腸菌 OP50液体培養液(光学濃度=0.600、波長約600 nm)を加えて、フローフード内の菌株あたり合計4枚のNGMプレートを接種します。閉じたプレートを37°Cで1日間インキュベートしてから使用してください。
      注:6つのプレート(ステップ1.1)を準備しますが、 大腸菌 OP50細菌は4つだけに接種します。残りの2つのプレートは、後でワームを飢餓状態に置くときに使用するために4°Cで予約します。この分析は重複して実行できます。
   3. 試験日には、以前に 大腸菌 OP50細菌を播種した菌株ごとに2つの(6 mm x 15 mm)NGM寒天プレートに200 μLの0.025 M D-Glucoseを加えます。プレートをフローフード内で室温で乾燥させます。
      注: 大腸菌 OP50細菌を播種したNGM寒天プレートは、フローフードを使用する代わりに、アルコールランプの近くで乾燥させることもできます。
2. 同期
   1. 同期の約3日前に、 C. elegans Bristol N2(野生型)をさまざまな段階(チャンクあたり約500匹)で培養したメンテナンスNGM寒天培地から3〜4チャンク(3 cm x 3cm)を、以前に 大腸菌 OP50細菌を播種した新しいプレート(150 mm x 90 mm)に移します。
   2. 新しいプレートをワームと一緒に20°Cの制御された環境に置き、湿度>95%を3日間維持します(72時間でほとんどのワームが妊娠した成虫の段階に達するまで待ちます)。
      注:成長温度は、使用されている C.エレガンス 株(複数可)に応じて調整する必要がある場合があります。
   3. パスツールピペットを使用して、蒸留H₂Oで調製したプレートから線虫を回収し、50 mLの遠心チューブに移します。
   4. 重力によるワームの沈降を待ち(約15分)、上清を取り除きます。このプロセスを3回繰り返して、バクテリアを排除します。最後の洗浄後、容量を5mLに減らします。
   5. 漂白液 10mL(別表1)を加え、手で約6分間激しく振る。
   6. 振とうが完了した直後に、M9バッファーをチューブの容量50mLまで満たします。
   7. 1400 x g で3分間遠心分離し、上清を5 mLまで除去し、45 mLのM9バッファーを再度加えます。このプロセスを4回繰り返します。
   8. 最後の洗浄後、容量を15 mLに減らし、制御された温度(20 °C)と湿度(>95%)で約14時間維持します。
      注:同期プロセスは、産卵を通じて卵子を得ることによって置き換えることができます:約20匹の成虫の妊娠虫を、以前に200μLの 大腸菌 OP50を播種したNGMプレート(6 mm x 15 mm)に移します。ワームが1日間卵を産むのを待ちます。その後、妊娠中のワームを取り除き、卵が孵化するのを待ちます。
3. ワームの準備
   1. 自動ピペットを使用して、10 μLの同期ワーム(ステップ1.2.8)を顕微鏡スライドに加え、ワームの数をカウントします。500-1000 worms/μLを得るためにピペッティングする必要がある容量を計算します。
   2. 500-1000 L1同期線虫(ステップ1.2.8)を、大腸菌OP50細菌を食物源として播種したNGM寒天プレート(150 mm x 90 mm、補足表1)に移し、20°Cで幼虫ステージ4(L4)に到達するまで移します。
      注:ワームは自動ピペットを使用して移すことができます。自動ピペットが利用できない場合は、ガラス製パスツールピペットを使用し、マイクロチューブラベルまたはガラス目盛りピペットを使用して容量を制御できます。
   3. 同期²⁰の48時間後:プラスチック製のパスツールピペットを使用して、M9バッファー(補足表1)を含むプレートからL4幼虫を回収し、プラスチック製のパスツールピペットを使用して清潔な円錐管50 mLにし、新鮮なM9バッファーで3回洗浄するか、残りのすべての 大腸菌 OP50細菌が完全に除去されるまで洗浄を繰り返します(室温)。
      注意: 一部のワームは手順中に飢餓を経験するため、洗浄ステップは重要です。
4. アッセイの実行
   1. 500-1000 L4 ワーム(ステップ 1.3.1)を、以前に調製した新しい NGM 寒天プレート(60 mm x 15 mm)のそれぞれから移します(ステップ 1.1.2 および 1.1.3)。試験日まで20°Cで48時間保管します。このスケジュールにより、次のような3つの実験グループが重複して作成されます(図1)。
      A-(飢餓):ワームは 、大腸菌 OP50細菌を含まない通常のNGM寒天プレートで増殖します。
      B-(レギュラー):ワームは 、大腸菌 OP50バクテリアを播種した通常のNGM寒天プレートで増殖します。
      C-(高グルコース):大 腸菌 OP50細菌を播種し、0.025 M D-グルコースを含むNGM寒天プレート上でワームが増殖します。
   2. テスト当日(48時間後):ワームを収集し、M9バッファーで3回短時間洗浄します(ステップ1.2.2および1.2.3)
      注:ここでは、D-グルコースを添加したNGM寒天プレートを調製し(ステップ1.3)、ワームを追加するまで脇に置いておきます。
      1. ヨウ素染色:新鮮なM9バッファーを使用して、5%(v / v)ルゴールのヨウ素溶液(ヨウ素/ヨウ化カリウム溶液)を調製します。
         注:ルゴールのヨウ素溶液は、地元の試薬供給業者または薬局から入手できるため、初期濃度は異なる場合があります。必要に応じて、5%(v / v)の溶液が得られるように計算します。
   3. 各グループから約100 μLの洗浄済み線虫(ステップ4.2)を、希釈したルゴール溶液(5% v / v)を含む1.5 mLマイクロチューブに移します。自動ピペットを1:5の割合で100μLのワームを400μLのルゴール溶液に移し、続いてミキサーで5分間穏やかに攪拌します。
      注意: ミキサーが利用できない場合は、手でマイクロチューブを慎重に振ることができます。
   4. この5分間の直後に、1.5 mLマイクロチューブ(線虫+ルゴール溶液)を1400 x g で3分間遠心分離します。
      注:このアッセイをL4ステージ以降の線虫に対して実施すると、遠心分離機を使用する代わりに重力沈降を達成することができます。すべてのワームがマイクロチューブの底に落ち着くまで、マイクロチューブをベンチトップのラックに10分間開いたままにします。
   5. 上清を取り除き、1.0 mLの新鮮なM9バッファーで線虫を洗います。残りのヨウ素がすべて溶液から除去されるまで(最低3回)、洗浄を繰り返します。
   6. 最後の洗浄ステップの後、約100μLの残留物を除いて上清を取り除きます。これを使用して、ワームを穏やかに再懸濁し、顕微鏡分析を行います。
   7. 再懸濁したワーム溶液約50μLを顕微鏡スライドに移し、カバースリップで覆います。実体顕微鏡(1.5倍)で明視野像を観察します。
      注意: 実体顕微鏡が利用できない場合は、通常の顕微鏡を使用でき、アダプターを使用して携帯電話のカメラ(3.4倍)で画像をキャプチャできます。光/明るさ/露出によるエラーを防ぐためには、すべての写真ですべての携帯電話のカメラ設定を一貫していることが重要です。
5. データ検査
   1. 定量データ:線虫のヨウ素染色に基づいてグリコーゲン含有量を計算します。
      1. グループごとに最低10匹の線虫を含む実体顕微鏡からの画像を.jpegファイルとして保存し、さらに処理することができます。これを行うには、無料のImageJソフトウェアをダウンロードしてください。詳細は、 補足ファイル1、補足図1、補足図2に記載されています。
      2. ImageJソフトウェア(https://imagej.nih.gov/ij/download.html から無料でダウンロード可能)を使用して.jpegイメージを開きます。[セグメント化された線 ] をクリックし、ワームの輪郭を描きます (一度に 1 つのワーム)。 「Analyze」をクリックし、「 Measure 」を選択して染色の定量化を行います。データはテーブルに平均として表示されます。平均は、寄生虫面積あたりの染色密度から計算されたデータを示します。
   2. 定性的データ:各グループの実体顕微鏡から画像を取得し、線虫の染色を視覚的に比較します。必要に応じて、染色を分析するためのスコアリングシステムを作成します:0無色;1つは軽く汚れています。2人は汚れており、3人はひどく汚れています。実体顕微鏡を使用して、ハンドカウンターでグループあたり約10匹(最小)の線虫を手動で数えます。

図1: C.エレガンスにおける全体的なグリコーゲン含量アッセイの概略図。 グリコーゲン含量アッセイを実施するためにここで行う実験の概略図です。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

2. 腸管透過性の評価

1. ワームの準備
   1. 同期(ステップ1.2.8)の約14時間後、最初の幼虫期(L1)の500〜1000匹の線虫(ステップ1.3.1および注)を、事前に準備した新しいNGM寒天プレート(60 mm x 15 mm)に移し、試験日まで20°Cに保ちます。このスケジュールにより、次のような2つの実験グループが作成されます(図2)。
      A-(若い):ワームは、細菌 大腸菌 OP50を播種したNGM寒天プレート上で、幼虫期4(L4)まで成長します。
      B-(旧):寄生虫は、成虫の^{7日目まで}、細菌大腸菌OP50を播種したNGM寒天プレートで増殖します。
      注:成体^{7日目まで} 維持された線虫は、毎日M9バッファーで洗浄し、以前に食品の補充と子孫の除去のために播種した200μLの 大腸菌 OP50細菌を含む新しいNGM寒天プレート(60 mm x 15mm)に移す必要があります。若い線虫はデカンテーション中に浮遊し、上清を取り除くことで分離できます。スマーフワームの割合は年齢とともに増加します。ただし、腸透過性の評価は、研究の目的に応じて、どの段階や年齢でも行うことができます。
2. アッセイの実行
   1. 試験日には、L4線虫(ステップ2.1.1の2日後)と7^日目 (現在は9^日目 )に成虫をM9バッファー(補足表1)で収集し、標識1.5mLマイクロチューブに移します。
   2. 1400 x g で3分間遠心分離し、上清を取り除き、M9 1.0 mLを加えて穏やかに混合します。このプロセスを3回繰り返して、バクテリアを取り除きます。最後の洗浄後、容量を500μLに減らします。
   3. 自動ピペットを使用して、10 μLのワーム沈殿物を顕微鏡スライドに加え、ワームの数をカウントします。ピペッティングする容量を計算して、100 worms/μLを取得します。
   4. スマーフ染色:蒸留水を使用して25%エリオグラウシン二ナトリウム塩(補足表1)溶液を調製します。必要に応じて、渦を使用して可溶化を改善します。
   5. これまでに同定した新しいマイクロチューブに、自動ピペットを使用して、100匹の線虫、100 μLの25%エリオグラウシン二ナトリウム塩溶液、200 μLの 大腸菌 OP50、M9バッファーを添加して最終容量500 μLにします。
      注:エリオグラウシン二ナトリウム、 大腸菌 、およびワームの数の量は固定されています。M9バッファーの容量は可変であり、最終容量を500μLにするために使用できます。
   6. 光から保護されたミキサーで攪拌しながら、室温で3時間インキュベートします。
      注意: ミキサーが利用できない場合は、15分ごとに手でマイクロチューブを慎重に振ってください。
   7. 3時間後、1.5 mLマイクロチューブを1400 x g で3分間遠心分離し、上清1.0 mLを除去し、線虫をM9バッファー1.0 mLで洗浄します。
   8. 残りのエリオグラウシン二ナトリウム塩溶液が溶液から除去されるまで、洗浄を繰り返します。.最後の洗浄ステップの後、約250 μLの残留物を除いて上清を取り除き、これを使用してワームを慎重に再懸濁し、顕微鏡分析のために処理します。
   9. 約50個のワームを再懸濁したウォーム溶液を顕微鏡スライドに移し、カバースリップで覆います。顕微鏡スライドを-20°Cの冷蔵庫で10分間インキュベートし、線虫を麻痺させます。
      注:ワームを麻痺させる別の方法は、10μLの塩酸レバミゾール溶液(10 mM ; 補足表1)そして、カバースリップでそれらを覆います。
   10. 実体顕微鏡(1.5倍)の明視野を使用して、ワームの総数と完全に染色されたワームを観察してカウントします。画像は、アダプターと組み合わせた携帯電話のカメラ(3.4倍)から取得できます。光/明るさ/露出によるエラーを防ぐためには、すべての写真ですべての携帯電話のカメラ設定を一貫していることが重要です。
3. データ検査
   1. 定性的データ:各グループ(成人期のL4および^7日目) の実体顕微鏡から画像を取得し、線虫の染色を視覚的に比較します。
   2. 実体顕微鏡を使用して、ワームの総数とスマーフワーム(青いワーム)の数を数えます。
   3. 結果をスマーフワームの割合として表し、若いワーム(対照群としてのL4)と古いワーム(成人期の^7日目) を比較します。
      A x X = 100 (%) x B
      X = 100 x B / A
      ここで、A = ワームの総数
      B= スマーフワームの数

図2: C.エレガンスにおける腸管透過性アッセイ全体の概略図。 (A) C.エレガンス の準備。(B)エリオグラウシン二ナトリウム塩による染色。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

結果

グリコーゲン含有量アッセイは、グリコーゲンの合成または分解に影響を与える可能性のあるさまざまな菌株の比較研究など、さまざまな試験条件をスクリーニングするための堅牢で迅速な方法を提供します。この研究では、L4線虫を空腹時、摂食、グルコース強化グループの3つの異なる試験条件にさらしました。アッセイは3回実施され、各条件は各アッセイで2回再現されました。代表的な画像を 図3に示します。各アッセイに続いて、ルゴールのヨウ素溶液で染色した線虫を実体顕微鏡で観察し、線虫の染色についてグループ間で定性的に比較しました。目視観察では、空腹時群(飢餓状態)の線虫は、 大腸菌 OP50を給餌した線虫(通常)や大 腸菌 OP50およびD-グルコース(高グルコース)を給餌した線虫と比較して、染色が弱かった。さらに、大腸菌OP50とD-グルコース(高グルコース)を与えられた線虫は、最も強い染色を示しました。

図3:グリコーゲン含量アッセイの代表的な画像。C. elegansのグリコーゲンレベルは、ヨウ素染色によって評価されました。顕微鏡画像は、代表的な線虫を(A)飢餓状態、(B)規則的、または(C)高グルコース条件に48時間さらした様子を示しています。ワームは、ステップ 1.4 で詳述した手順に従って、Lugol のヨウ素/M9 バッファー (1%) の溶液に 5 分間浸漬して染色しました。この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

腸管透過性の結果から、腸内が無傷の幼虫(L4)と、加齢により腸管が損傷した老齢虫(成虫^7日目)の染色に違いが見られます(図4)。C.エレガンスの腸は、消化と代謝に重要な役割を果たし、ストレス応答と老化調節のシグナル伝達センターとして機能するため、健康にとって中心的に重要な組織です²¹。若い線虫では、C.エレガンスの腸は腸内容物の漏れを防ぐ強力なバリアで構成されています。しかし、これらの線虫が老化するにつれて、腸のバリア機能は低下し、細胞や微絨毛の進行性の劣化と老化腸内の細菌の蓄積による破壊に対してより敏感になります^21,22。若いC.エレガンスが染料エリオグラウシン二ナトリウム塩を摂取すると、線虫の腸が染色されます(図4A)。一方、老化した線虫は、線虫の全身に染料の血管外漏出を示し、腸膜の損傷を示していることが観察できます(図4B)。

図4: C.エレガンス をエリオグラウシン二ナトリウム塩で染色した代表的な画像。 顕微鏡画像は、腸が無傷の 線虫 (L4期)と腸が破裂した線虫(成虫^7日目) を示しています。線虫は、ステップ2.2.4に続いて、25%エリオグラウシン二ナトリウム塩溶液に3時間浸漬して染色しました。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

補足図1:C.エレガンスの輪郭を選択するためのImageJスクリーンショット。このファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。

補足図2:平均を計算するためのImageJスクリーンショット。このファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。

補足表1:培地、バッファー、および培養レシピ。 現在のプロトコルで使用されているさまざまなメディア、バッファー、カルチャの構成。 このファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。

補足ファイル1: 線虫のグリコーゲン含有量を定量化するためのImageJソフトウェアの詳細な説明。 このファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。

ディスカッション

要約すると、このプロトコルは、Lugol染色を使用して個々の C.エレガンス 線虫のグリコーゲン含有量を定性的に評価します:簡単で堅牢で迅速なアッセイです。ルゴール染色は、ラベルフリーで非侵襲的なアプローチであり、細胞内分解能での分子データの取得を容易にし、単一の線虫¹⁰内のグリコーゲン含有量の変動のモニタリングを可能にします。さらに、このアッセイは、必要な機器が最小限に抑えられているため、費用対効果が高いという利点があります。画像をキャプチャするために必要なのは顕微鏡または実体顕微鏡のみであり、すべての画像に同じ光/明るさ/露出設定がある限り、携帯電話のカメラを使用して簡単に取得できます。さらに、特定の手続き上の調整により、このプロトコルの有効性を高めることができます。フローフードや遠心分離機などのより複雑な実験装置は、アルコールランプや重力沈殿法で代用できます。これらの代替手段により、この方法はさらに予算にやさしく、幅広い研究者が利用できるようになります。研究者だけでなく、教育者もこのアッセイを学校での教育目的で使用して、グリコーゲンの貯蔵とその生合成に関連する変化を説明することができます。

従来の酵素アッセイではグリコーゲンレベルを定量化できますが、Lugol染色は、 C.エレガンスのグリコーゲン貯蔵を評価するための高感度、正確、費用対効果の高い、ハイスループットな方法として有望視されています。私たちの研究では、データは3つの条件間で染色に顕著な違いがあることを明らかにし、摂食条件と染色の強度との間に潜在的な相関関係があることを示唆しています。言い換えれば、染色強度はグリコーゲン含有量に正比例するため、異なる摂食グループ間でグリコーゲン含有量が異なることを示しています。これらの最初の観察と証拠により、学生は、さまざまな食品、飲料、化学試薬などのさまざまな要因が線虫のグリコーゲン含有量にも影響を与える可能性があるかどうかを調査し、調査することができます。

このアプローチの欠点の1つは、手動の手順と主観的な解釈に依存していることから生じます。目視観察に基づいてスコアが割り当てられる染色評価の主観的な性質は、異なる分析者間でばらつきを生じさせ、結果の解釈に変動をもたらす可能性があります。

また、本報告では、Erioglaucine 二ナトリウム塩という色素を用いたC.エレガンスの腸内完全性の評価も示している。線虫の腸管バリア機能の喪失を評価するには、キューティクルを通して吸収されない青色の染料を線虫に与えることが可能です。このテストは、動物が漫画のスマーフ²³のように青くなるため、腸からの染料の漏れをチェックすることを可能にします。この方法論は、以前に腸の評価^24,25のための同様の方法を使用してDrosophila melanogasterとDanio rerioに適用されました。C.エレガンスでは、エリオグラウシン二ナトリウム塩と同じ原理の技術を使用し、C.エレガンスの腸の完全性を検証するためのシンプルで再現性のある技術と見なされています^19,26。

このプロトコルは、線虫の老化の誘導または遅延を評価するために使用でき、また、複雑な機器を使用することなく、C.エレガンスの腸内の物質の毒性の可能性を簡単かつ迅速に検証するために使用でき、これにより、この方法は経済的に実行可能になります^19,27。科学研究での使用に加えて、教師は、C.エレガンスの腸透過性の変化を調査するために、教育機関の教育目的でこのアッセイを使用することもできます。簡単なテストで、老化に関する仮説や、線虫の腸管バリアに対する化学試薬の影響を調査することができます。

このアッセイは、研究の目的に応じて他の 線虫 株および幼虫期を使用するように適合させることができ、代替品がメソッドの再現性を維持するために同じまたは類似の機能を果たす限りです。分析を成功させるには、プロトコルに記載されているように、老化した線虫を3時間染色することが重要です。その後、余分な染料を除去するための洗浄は、この方法の重要なステップであり、ワームが上清とともに除去されないように慎重に行う必要があります。物質を評価する場合、プロトコルに見られる制限の1つは、線虫の腸膜を溶解する容易にアクセス可能なポジティブコントロールを見つけることの難しさです。

材料

この記事で使用された材料の一覧

名前	会社	カタログ番号	コメント
1.5 mLマイクロチューブ	地元の	サプライヤー-37
度インキュベータ	ーKS4000i	97014-816
50 mLコニカルチューブ	地元の	サプライヤー-6
cmペトリプレート	地元のサプライヤー	-
寒天菌学	DinâマイカQuíマイカコンテンポラリーâネア株式会社。	9002-18-0
C. elegans Bristol N2 (野生型)	Caenorhabditis elegans Genetic Center (CGC, Minnesota, USA)	-
CaCL2	DinâマイカQuíマイカコンテンポラリーâネア株式会社。	10035-04-8
コレステロール	Sigma-Aldrich Brasil Ltda	57-88-5
D-(+)-グルコース無水	ネオン	50-99-7
蒸留H2O	地元の
二ナトリウム塩	Sigma-Aldrich Brasil Ltda	3844-45-9
Escherichia coliOP50	Caenorhabditis elegans Genetic Center(CGC、ミネソタ州、米国)	-
フローフード	Mylabor
インキュベーター	北米のパナソニックヘルスケア会社、MIR-254-PA。	-
KH2PO4	ディンâマイカQuíマイカコンテンポラリーâネア株式会社。	7778-77-0
塩酸レバミゾール	RIPERCOL L 150F	-
ルゴール溶液	Sigma-Aldrich Brasil Ltda	L6146
MgSO4	Synth	S1063-01-AH
微量遠心分離機	遠心分離機 5425R Eppendorf SE, Germany
Na2HPO4	DinâマイカQuíマイカコンテンポラリーâネア株式会社。	7558-79-4
NaCl	ディンâマイカQuíマイカコンテンポラリーâネア株式会社。	7647-14-5
Nystatin	Sigma-Aldrich Brasil Ltda	N6261
ペプトン細菌学	êxodo científica	91079-38-8
実体顕微鏡	Leica S8 Apo 実体顕微鏡 (Sãoパウロ、ブラジル)
ストレプトマイシン硫酸エス	トレプトマックス	-