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方法論記事

中性コメットアッセイによる分裂中のヒト細胞におけるDNA切断の検出

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DOI:

10.3791/67110

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2024年8月23日

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この記事について

サマリー

このプロトコルは、DNA複製中に発生するDNA損傷の程度を調査するように設計されています。中立条件下では、DNA切断の誘導を短時間で容易に評価できます。さらに、このプロトコルは、他の細胞タイプやさまざまな複製ストレス試薬にも適応可能です。

要約

DNA複製は、DNAを損傷する可能性のあるさまざまな内因性および外因性のストレッサーによって常に挑戦されています。ゲノム重複中に遭遇するこのような病変は、レプリソームを失速させ、複製フォークを二本鎖切断に変換する可能性があります。修復せずに放置すると、これらの有毒なDNA切断が染色体再配列を引き起こし、ゲノムの不安定性を高め、細胞形質転換の可能性を高める可能性があります。さらに、がん細胞は持続的な複製ストレスを示すため、腫瘍細胞の複製フォークの脆弱性を標的とすることは、化学療法の魅力的な戦略となっています。複製中のDNA切断を研究するための非常に汎用性が高く強力な手法は、コメットアッセイです。このゲル電気泳動技術は、シングルセルレベルでのDNA切断の誘導と修復を確実に検出します。ここでは、研究者が複数の細胞タイプにわたるフォークストール剤を使用してヒト細胞を有糸分裂する際のDNA損傷の程度を測定できるようにするプロトコルが概説されています。これを自動コメットスコアリングと組み合わせることで、迅速な分析が容易になり、DNA切断の誘導研究の信頼性が向上します。

概要

コメットアッセイは、シングルセルレベルでDNA切断を検出するために使用されるゲル電気泳動法です。これは、オープンエンドのDNA切断が電気泳動条件下で移動する一方で、無傷のDNAはほとんど静止したままであるという原理に依存しています。壊れたDNAが移動するのは、切断がスーパーコイル状のDNAの弛緩をもたらし、電気泳動チャンバー内のアノードに向かって徐々に空間的に再配置するためであり、その結果、免疫蛍光法によって観察される彗星のような外観になります1,2。次に、DNA損傷の程度は、コンパクトなDNAに対して移動した壊れたDNAの量を定量化することによって測定されます。

最も一般的に使用される2つのコメットアッセイ法は、アルカリコメット(AC)アッセイとニュートラルコメット(NC)アッセイです。ACアッセイは高アルカリ性pH溶液を使用して変性条件下で実施され、NCアッセイは中性pHの溶液で実施されます。NCアッセイとACアッセイはどちらも、核内で発生するDNA切断を確実に検出できます。しかし、アルカリ性バージョンは、アルカリに不安定なサイト3の検出にも有利である。どちらのアッセイ形式でも、電気泳動の前にDNAにタンパク質が含まれていないことを確認するために溶解条件を使用する必要があります。

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プロトコル

このプロトコル(図1)は、主に接着性U2OSがん細胞株を利用しますが、組織培養で増殖したさまざまな接着細胞および浮遊細胞に適応できます。この試験で使用した溶液とバッファーを 表1に示します。使用した試薬や機器は 、材料表に記載されています。

1. 資料の準備

  1. 実験の日の前に、付属のボトルに低融点アガロース(PBS中の1%低融点アガロース)を入れたボトルを温水浴に5〜10分間入れて、アガロースが完全に溶けたことを確認します。
    注意: 電子レンジでボトルを加熱しないでください。
  2. 溶かしたら、必要に応じて100 μLのアガロースを1.5 mLの遠心チューブにすばやく分注し、チューブを4°Cで保存します。 固化したアガロースは、4°Cで最大1年間保存できます。
  3. 実験当日は、必要な数の遠心分離チューブを4°Cの貯蔵庫から取り出します。チューブを42°Cのヒートブロックまたはウォーターバスに入れて、アガロースを溶かします。
    注:細胞を回収する前にチューブを42°Cに置き、アガロースが完全に溶けて再懸濁することを確認します(ステップ3.7)。
  4. 実験当日に新鮮な溶解バッファーとTAEバッファーを調製し、使用する準備ができるまでそれぞれ室温と4°Cで保存してください。さ....

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結果

レプリケーションストレス試薬によるブレークインダクションの解析
U2OS細胞をDMSO、4のmMヒドロキシ尿素(HU)、または100nMのCPTで4時間処理し、NCアッセイによりブレーク蓄積について分析しました(図6A)。CPTはトポイソメラーゼ-1を阻害することによりS期に切断を誘導するが13、HUによって誘発されるヌクレオチドプールの枯渇は、徐々にDSBに変換される複製フォークを失速させる28。データは、HUまたはCPTへの曝露がS期のブレーク誘導を引き起こすことを示しており、これはNCアッセイによって検出可能です。

異なる温度での溶解を比較したブレークインダクションの解析
未処理のU2OS細胞を、ブレークインダクションの分析に先立って、室温(RT)または4°Cで溶解バッファー中でインキュベートしました(.......

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ディスカッション

このプロトコルは、活発な複製を受けているヒト細胞のDNA切断を評価するためのNCアッセイの概要を示しています。このプロトコールは比較的簡単に実施でき、研究者はアルカリ性分析のための高pH条件に容易に適応させることができます8。これには、ステップ 3.7 と 4.5 で説明されている 2 つの重要なステップが含まれています。ステップ3.7では、分析中に彗星が重ならないように、溶融したアガロースを細胞とともにウェル全体に均一に広げることが不可欠です。細胞をアガロースに再懸濁する前に、細胞凝集体が溶解していることを確認してください。アガロースを広げながらピペットチップが放出されるのを防ぐと、気泡の導入を最小限に抑えるのに役立ちます。電気泳動の条件は、イメージングと分析のための適切な彗星尾の移動を達成するために重要です。研究者は、尾部の移動の程度と彗星の尾を示す細胞の割合が細胞タイプによって異なるため、分析に使用する細胞株の性質を考慮する必要があります(図9)。したがって、実験の前に電気泳動の実行時間を経験的に決定することをお勧めします。.......

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開示事項

著者は、競合する利益を宣言しません。

謝辞

Dungrawala研究室のメンバーの意見とフィードバックに感謝します。この研究は、NIH の HD 助成金R35GM137800によって資金提供されました。

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
1 x DPBSGibco14190144
CamptothecinSelleckchemS1288
Comet LMAgarose (LMA)R&Dシステム4250-050-02
CometAssay 電気泳動システム IIR&Dシステム4250-050-ES電気泳動タンク、安全蓋、ケーブル、2/20ウェルスライドトレイ、スライドトレイオーバーレイを含む
CometScoreソフトウェアTriTekオープンソース
CometSlideR&Dシステム4250-050-03
DMEM、高グルコースGibco11965092
DMEM / F12Gibco11320033
DMSO FisherSciD128-4
射蛍光顕微鏡KeyenceBZ-X810
ウシ胎児血清 - プレミアムBio-TechneS11150
Gibco トリプシン-EDTA (0.05%)、フェノールレッドGibco25300054
GraphPad Prism 10.0GraphPad
HEK293T細胞ATCCCRL-11268
hTERT-RPE-1細胞ATCCCRL-4000
ヒドロキシ尿素ミリポア SigmaH8627
PARP阻害剤 オラパリブSelleckchemS8096
PowerPac FisherSciFB300Q
表面処理滅菌組織培養プレートFisherSciFB012927
SYBR Green I Nucleic Acid Gel Stain (10,000x)FisherSciS7567
U2OS cellsATCCHTB-96
UVP HB-1000ハイブリダイゼーションインキュベーターFisherSciUVP95003001
落

参考文献

  1. Olive, P. L. Cell proliferation as a requirement for development of the contact effect in Chinese hamster v79 spheroids. Radiat Res. 117 (1), 79-92 (1989).
  2. Olive, P. L., Banath, J. P., Durand, R. E.

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再版と許可

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