この研究では、二心房技術を利用して、バマのミニチュアブタにおける前臨床同所性心臓移植モデルを提案しています。このモデルは、移植免疫学、薬物評価、および外科的技術の最適化に適用でき、臨床心臓移植アプリケーションをサポートします。
このコンテンツを表示するには、JoVEへの購読が必要です。 または、無料トライアルをお申し込みください。
この記事について
サマリー
要約
心臓移植は大きく進展していますが、移植片の保存、一次移植片機能障害、心臓同種移植片血管障害、長期免疫寛容などの問題は未解決のままです。解剖学的なサイズと免疫学的な違いにより、マウスモデルは臨床的な心臓移植手術と免疫応答を効果的に再現することができません。対照的に、ブタモデルは、心臓の解剖学的構造と免疫応答の点でヒトとより類似しており、同所性心臓移植研究に特に適しています。本研究では、バマミニブタにおける両房同所性心移植モデルを確立した。移植された心臓は、術後に迅速かつ堅牢な収縮性を示し、中心静脈圧の上昇やその他の血行動態合併症の兆候はありませんでした。短期間の集中治療室のモニタリングの後、ブタは意識を取り戻し、自発的な摂食を再開し、術後の回復が安定していることを示しました。要約すると、このモデルは、心臓移植研究の分野における新しい技術と治療アプローチを評価するための臨床的に関連性のある実験プラットフォームを提供します。
概要
1967年に最初の心臓移植が行われて以来、心臓移植は大きな進歩を遂げてきました。しかし、過去20年間で、臨床診療における大きなブレークスルーはほとんどありませんでした。移植片の機能不全、心臓同種移植片血管障害(CAV)、長期免疫寛容などの主要な問題は未解決のままです1,2,3,4。基礎研究で多くの知見が得られたにもかかわらず、これらの発見を臨床応用につなげることは困難であり、心臓移植治療の進行は停滞しています。したがって、新しい技術や治療法を効果的に評価することは重要な問題となっており、これらの課題に対処する上での動物モデル、特に適切な前臨床モデルの重要性が浮き彫りになっています。
マウスモデルは心臓移植研究で広く使用されていますが、解剖学的および生理学的にヒトとの違いにより大きな制限があり、臨床的な心臓移植手順と術後の免疫応答を完全に再現することは困難です。さらに、免疫系は比較的異なり、これは大動物モデル5,6,7で見られる複雑な免疫応答を適切に反映することができません。さらに、マウスの心臓移植はサイズが小さいため、異所性移植に限定されており、これは同所性心移植の臨床実践とは異なります8,9,10,11。したがって、適切な大型動物モデル、特にブタの使用が重要です。
ブタモデルは、心臓移植研究、特に同所性心臓移植において大きな利点を提供します。ブタの心臓は解剖学的に人間の心臓と似ており、ブタはヒトにはるかに近い免疫応答と臓器生理機能を示すため、心臓移植研究の理想的なプラットフォームとなっています。さらに、ブタモデルはより複雑で詳細な実験データを提供するため、研究者は新しい免疫抑制戦略、心臓保護方法、および移植後の長期転帰をより適切に評価できます12,13,14,15。いくつかの研究では、ブタの腹部ヘテロトピックモデルが利用されており、心肺バイパスの使用を回避し、手術の複雑さを軽減していますが、同所性心移植の臨床シナリオを完全に再現することはできません16。したがって、本研究では、バマミニブタにおける二重心房同所性心臓移植モデルを確立し、心臓移植技術を進歩させるためのより臨床的に関連性のある実験プラットフォームを提供しました。
アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。
プロトコル
本試験の動物実験プロトコルは、中国医学院福偉病院の動物実験委員会(IACUC)によって承認され、倫理承認番号0108-1-70-ZX(X)-41となっています。すべての実験は、動物福祉と倫理ガイドラインに厳密に従って実施され、関連する倫理基準の遵守が確保されました。
1. 術前準備
- 同所性心臓移植実験のために体重35〜40 kg(生後10〜12か月)の雄のバマミニチュアブタを選択し、手術の1週間前に飼育環境に順応させます。
- 血液ルーチン検査、肝臓および腎臓機能の評価、心エコー検査を実施して、動物の全体的な健康状態を評価します。
- ABO式血液型と心臓のサイズに基づいて、ドナーとレシピエントを一致させます。Choi et al.17 によって報告された方法に従って血液型を決定し、心エコー検査で心臓のサイズを評価して、適切な一致を確認します。
注:体重は心臓のサイズと線形の関係がないため、心エコー検査で測定された心臓のサイズがマッチングの基礎として使用されました。具体的には、上行大動脈の直径差は2mm未満、左室拡張末期径の差は3mm未満、収縮末期直径の差は2mm未満に抑えられました。
2. 寄付者の手続き
- 麻酔と動物の準備
- ドナー豚を12時間絶食させ、手術前に4時間水を差し控えて胃が空であることを確認し、麻酔中の嘔吐や誤嚥のリスクを減らします。
- ケタミン(10 mg / kg)とミダゾラム(1 mg / kg)を組み合わせて筋肉内注射で麻酔を誘発します。.導入後、吸入イソフルラン (2-3%) とデクスメデトミジン (1 U/kg) とプロポフォール (1-2 mg/kg/h) の注入を使用して麻酔を維持し、麻酔の深さを維持します。
- リラックスした顎のトーンと、つま先をつまむときに痛みに反応しないことを確認して、麻酔が適切かどうかを確認します。6.5-8mmの気管内チューブを使用して口腔気管挿管を行い、気流を妨げず、100%の酸素を供給します。
- 耳静脈を介した末梢静脈アクセスを確立して、静脈内輸液投与と薬物注射を容易にします。血圧モニタリングのための大腿動脈アクセスを確立し、血行動態パラメータのリアルタイムモニタリングを確保します。
- 手順全体を通して、12誘導心電図(ECG)を継続的に監視して、動物の心臓の状態を追跡します。麻酔の深さを一貫して維持し、必要に応じて薬物投与量を調整して、適切な麻酔レベルを確保します。
- ドナー心臓の収穫
- 開胸術:ブタを剃った後、手術部位をポビドンヨードで消毒し、野を覆い、高周波電気焼灼を使用して、頸部中央部から剣状突起の下まで正中線切開を行い、続いて胸骨を切開します。胸骨を焼灼し、骨ワックスを塗布して止血を達成します(図1A)。
- ヘパリン化:胸部を開いた後、全身性抗凝固療法のために300 U / kgのヘパリンを投与して、処置中の血栓症を予防します。
- 胸腺摘出術:電気焼灼を使用して胸腺を慎重に持ち上げて心膜から分離し、胸腺を切除し、出血が発生しないようにします。
- 心膜を開き、主肺動脈の前面から結合組織を取り除きます(図1B)。電気焼灼を使用して、上行大動脈と肺動脈の間の空間を解剖し、大きな血管を露出させます。次に、左半奇静脈を結紮します(図1C)。
注:ブタの左半零静脈は直接冠状静脈洞に流れ込み、心臓回収中に結紮する必要があります。 - 5-0 Prolene 縫合糸を使用して、近位上行大動脈の外膜に財布紐縫合糸を留置し、止血帯で固定します。心筋麻痺カニューレを上行大動脈に挿入し、巾着縫合糸で固定します。
- 心臓麻痺注入:大動脈クロスクランプを適用し、500 mLの改変セントトーマス溶液(500 mLの酢酸リンゲル溶液をベースに、4 mLの25%硫酸マグネシウム、1 gの塩化カリウム、40 mLの5%重炭酸ナトリウム、および10 mLの2%リドカインを添加)および500 mLのUW溶液を4°Cおよび300〜600 mL / minの流量で投与します。 80-100 mmHgの大動脈根圧を確保します。この段階で、ベントのために右心房付属器を切開します(図1D)。
注:過度の失血を防ぐために、上大静脈と下大静脈に追加のクランプを使用して、後で術後輸血で使用するための血液を採取します。. - 氷のスラッシュ(0.9%NaCl)を胸腔内と臓器の上に置いて冷却し、心臓麻痺の注入と同時に開始します(図1E)。
- 主肺動脈と上大静脈と下大静脈をできるだけ遠位に切断し、各血管が少なくとも2cmの長さを保持するようにして、移植中の張力のない吻合を容易にします(図1F)。除去後、少なくとも500mLの生理食塩水を入れた臓器バッグに心臓を入れます。.氷の上に置いて、移植するまで4°Cで保存します(図1G)。
注意: すべての血管が十分に長く保たれていることを確認してください。過度に長い血管は移植中にトリミングできますが、不十分な長さは修正できません。 - ドナー採血: 上大静脈と下大静脈の切り端から血液を採取し、レシピエントの術後輸血に使用します。
3. 受取人の手続き
- 受取人の準備
- 麻酔と気管挿管の手順については、手順2.1.1〜2.1.4に従ってください。レシピエントを仰臥位に置き、4本の手足すべてを柔らかいロープで固定して、安定性を確保し、外科手術を容易にします。
- 頸部を切開して、頸静脈と頸動脈を露出させます。中心静脈カテーテルを頸静脈に挿入して中心静脈圧(CVP)のモニタリングや薬物投与を行い、動脈カテーテルを頸動脈に挿入してリアルタイムの動脈血圧モニタリングを行います。
注:手順中に一般的に使用される血管作用薬には、ドーパミン(200 mgのドーパミンを50 mLの5%グルコースまたは生理食塩水で希釈し、4 mg / mLの濃度をもたらす)、ドブタミン(250 mgを50 mLの5%グルコースで5 mg / mLの濃度に希釈)、エピネフリン(1 mgを49 mLの生理食塩水で0.02 mg / mLに希釈)が含まれます。 イソプロテレノール(1 mgを50 mLの5%グルコースで0.02 mg / mLに希釈)、およびノルエピネフリン(4 mgを50 mLの生理食塩水で0.08 mg / mLに希釈)。.投与量は、レシピエントの血行動態の状態に基づいて調整する必要があります。. - 膀胱瘻:下腹部に小さな切開を行い、膀胱壁を露出させます。細かい縫合糸で膀胱を切開部の端に固定します。膀胱壁を切開した後、尿道カテーテルを挿入し、縫合糸で膀胱に固定します。カテーテルを採取バッグに接続して、尿の排出とモニタリングを行います。
注:雄豚の尿道は湾曲して細長いため、定期的な尿道カテーテル法は実行可能ではありません。効果的な尿排出を確保するためには、膀胱瘻が必要です。 - 大腿部を切開して大腿動脈を露出させます。下肢の血圧と酸素飽和度を監視するための動脈カテーテルを挿入します。カテーテルがしっかりと固定されていることを確認して、脱落や血管の損傷を防ぎます。
- 心肺バイパス(CPB)の確立
- 開胸術と大血管への曝露: ステップ 2.2.1-2.2.4 で説明されているように開胸術を行い、上行大動脈、上大静脈 (SVC)、および下大静脈 (IVC) を完全に露出させます。カニューレ挿入の適合性を確認するために、大きな血管を検査します。300 U/kg ヘパリンを投与して全身抗凝固を達成し、進行する前に 300 秒を超える活性化凝固時間 (ACT) を確認します。
- CPBマシンを組み立て、2 Lの乳酸リンゲル液と500 mgのメチルプレドニゾロンでプライミングします。
注:バマミニチュアブタの血液量が比較的少ないため、CPBマシンで十分なプライミング量を確保してください。過度の血液希釈が発生した場合は、必要に応じて輸血を検討することができます。 - キャバルスネアリング:上行大動脈と肺動脈の間のスペースを分離し、上行大動脈の周りにスネアを配置して左に牽引します。SVCの内側を露出させ、直角クランプを使用してSVCを後方に取り囲み、スネアリングを行います。IVCにも同じ手順を適用し、その後のカニューレ挿入のために両方を準備します。
- 動脈カニューレ挿入:遠位上行大動脈に、5-0縫合糸を使用して2つの同心円状の巾着縫合糸を配置します(全層浸透を避け、外膜のみを縫合します)。縫合糸の開口部を左右に配置し、止血鉗子でカニューレ挿入と固定のために固定します。小さな円形の刃を使用して、財布のひもの中心にある18Fr動脈カニューレの直径よりわずかに小さい切開を作成します。すぐに動脈カニューレを切開部に挿入し、止血鉗子で巾着を締め、重い縫合糸でカニューレを止血鉗子に固定します。動脈カニューレをCPB動脈回路に接続し、気泡が存在しないことを確認します。
- 静脈カニューレ挿入術:SVCとIVCの両方に巾着縫合糸を留置し、止血鉗子を接続します。財布のひもの内側に切開を行い、28 FrカニューレをSVCに挿入し、32 FrカニューレをIVCに挿入し、止血鉗子を締めて固定します。カニューレを重い縫合糸で血管壁に固定します。カニューレをCPB回路の静脈ラインに接続します。
- 心臓麻痺カニューレ挿入:5-0 Proleneを使用して近位上行大動脈の外膜に財布紐縫合糸を留置し、止血鉗子で固定します。カーディオ麻痺カニューレを財布の紐を通して上行大動脈に挿入し、所定の位置に固定します。カニューレを心臓麻痺デリバリーシステムに接続します。
- CPBの開始:すべてのカニューレと接続が正しく配置され、遮られていないことを確認します。CPBを開始し、数分間実行してから、SVCとIVCを徐々にスネアして完全なCPBを確立し、すべての静脈血をCPBマシンにリダイレクトします(図1H)。
注:手順中、平均動脈圧(MAP)を60〜90 mmHg、CVPを6〜12 cmH2Oに維持します。 - 大動脈クロスクランプ:深部体温が約30°Cに下がったら、上行大動脈スネアを持ち上げ、小児用大動脈クロスクランプを装着します。4°Cの冷改セントトーマス溶液(10-15 mL / kg)を心臓麻痺カニューレを介して大動脈根部に投与し、心臓表面にアイススラッシュを塗布して急速冷却と心臓麻痺を実現します(図1I)。
注意: クロスclを確認してくださいamp 脳の血流を損なう可能性のある腕頭幹または総頸動脈の圧迫を避けるために、正しく配置されています。
- レシピエントの心臓切除
- 右心房切除:心膜を開いた後、レシピエントの右心房を切除することから始めます。右心房の中央に沿って切開を行い、切開部を下方に下方に拡張し、上方に上大静脈の開口部まで延長し、その後の吻合のために十分な右心房壁を残します。
注:左半接合体静脈は直接冠状静脈洞に排出されるため、冠状静脈洞は保存され、左半接合体静脈からの排出は継続する必要があります。術野との干渉を避けるために、ブルドッグクランプを使用して左半接合体静脈をクランプし、ドナーの心臓が移植された後にそれを取り除きます。 - 大動脈と肺動脈を根元で横断し、その後の吻合に十分な長さであることを確認します。
- 左心房を切開し、左心房から開始し、肺静脈開口部の周囲に円形の切開を行い、十分な左心房カフを残します。最後に、レシピエントの心臓全体を切除し、すべての血管がドナーの心臓移植に適した長さであることを確認します(図1J)。
- 右心房切除:心膜を開いた後、レシピエントの右心房を切除することから始めます。右心房の中央に沿って切開を行い、切開部を下方に下方に拡張し、上方に上大静脈の開口部まで延長し、その後の吻合のために十分な右心房壁を残します。
- ドナーの心臓トリミング
- 肺動脈トリミング:必要に応じて余分な組織を取り除き、ドナーの心臓をトリミングします。まず、大動脈と肺動脈の間の結合組織を切開し、大動脈と肺動脈をトリミングして適切な長さを確保し、吻合後にねじれを引き起こす可能性のある過度の長さや、過度の張力を引き起こす可能性のある不十分な長さを避けます。
- 左心房のトリミング:左心房の場合、肺静脈を単一の左心房カフに結合し、レシピエントの左心房カフのサイズに一致するようにエッジをトリミングします。
- 右心房のトリミング:右心房の場合、上大静脈を結紮します。次に、右心房付属器から下大静脈まで右心房を切断し、右心房カフを形成し、レシピエントの右心房カフに一致するように端を切り取ります(図1K、L)。
注:洞房結節は、上大静脈と右心房の接合部に位置しています。ドナーの心臓の洞房結節を損傷しないように細心の注意を払う必要があります、これは術後にペースメーカーに依存する結果となるからです。
- レシピエントへのドナー心臓吻合
- 吻合シーケンス:左心房-右心房-大動脈-肺動脈
- 左心房吻合: ダブルニードルスライド縫合技術を使用して、レシピエントの左心房カフを左上部肺静脈レベルで吻合し、ドナーの左心房カフを左心耳の基部近くに吻合します。ドナー心臓の移植を開始します(図1M)。
- ドナーの心臓をレシピエントの縦隔に留置し、心臓が氷のスラッシュで冷却されて、隣接する胸部組織への熱伝達を防ぎます。心房中隔の中央下部まで縫合を続けます。反対側では、左心房の上部に沿って中隔まで縫合を続けます。ドナーとレシピエントの左心房のサイズ差を常に評価し、余分な組織を適切に折りたたんで吻合を完了します。左心房の空気を抜いた後、縫合糸の端をしっかりと結びます。
注:術後の出血を防ぐためには、左心房の後壁を慎重に縫合することが不可欠です。心臓が再起動した後、この領域の出血を検出して制御するのが難しい場合があります。
- ドナーの心臓をレシピエントの縦隔に留置し、心臓が氷のスラッシュで冷却されて、隣接する胸部組織への熱伝達を防ぎます。心房中隔の中央下部まで縫合を続けます。反対側では、左心房の上部に沿って中隔まで縫合を続けます。ドナーとレシピエントの左心房のサイズ差を常に評価し、余分な組織を適切に折りたたんで吻合を完了します。左心房の空気を抜いた後、縫合糸の端をしっかりと結びます。
- 右心房吻合:ドナーの心臓を、右心房中隔の下端から始めて、ほぼ正常な解剖学的位置に調整します。1本の縫合線を中隔に沿って反時計回りに上向きに通し、次にそれを右心房側壁に通します。もう一方の縫合線が、下大静脈の開口部から右心房壁に沿って縫合糸とともに下向きになっていることを確認します。2本の縫合線を右心房の側壁の中央で交わる場所で結びます(図1N)。
- 大動脈吻合:スライディング技術を使用して、血管の後壁から開始し、ドナーからレシピエントの肺動脈への吻合を完了するためのエンドツーエンドの吻合を行います。最後に、縫合糸を前壁でしっかりと結びます。
- 肺動脈吻合:肺動脈吻合には、大動脈について説明したのと同じ技術を使用し、通常は肺動脈吻合を行う前に再加温を開始します(図1O)。
- 心臓蘇生法とその後の手順
- 心臓蘇生法:肺動脈吻合が完了したら、上行大動脈の根元に通気針を挿入して、ドナー心臓から残留空気を取り除き、大動脈クロスクランプを取り外します。麻酔科医に肺の膨張を補助してもらいます。
- 補助循環:心臓が再起動した後、しばらくの間、体外循環に助けを求めます(図1P)。
注:援助の期間は、虚血時間と心機能の回復によって決まります。 - 止血と閉鎖:出血がないかすべての吻合を注意深くチェックし、止血を確認します。.一時的なペースメーカーを装着し、体外循環を取り除き、カニューレを抜出します。一時的な心外膜ペースメーカーワイヤーを右心房と右心室の表面に置き、縦隔と胸腔にドレナージチューブを配置します。.最後に、標準的な手法を使用して正中線の切開を閉じます。
注:ブタの血管組織は、特に右心房と肺動脈で壊れやすく、裂けやすいです。施術中は細心の注意を払う必要があります。
4. 術後ケア
- 手術後、すぐに動物を専用のICUに移し、綿密なモニタリングを行います。CVP、動脈血圧、心拍数、酸素飽和度などの血行動態パラメータを継続的に監視します。リアルタイムのモニタリング結果に基づき、血管作用薬や支持療法を迅速に調整し、安定した血圧と心拍出量を維持します。
- 心機能モニタリング: 術後、心電図を継続的に監視して、不整脈や心筋虚血の兆候を観察します。不整脈が発生した場合は、電気的除細動または薬理学的治療を行ってください。.
注:術後早期の不整脈は、心臓の再開によって引き起こされることが多く、注意深く監視する必要があります。抗不整脈薬は、心電図の変化に基づいて必要に応じて投与する必要があります。.術後の洞性頻脈は、移植された心臓に迷走神経抑制がないために一般的です。イバブラジンは洞調律を制御するために推奨され、ベータ遮断薬はブタの心臓が非常に敏感で低血圧を引き起こす可能性があるため、避けるべきです。. - 呼吸管理:術後早期に人工呼吸器を使用して呼吸補助を行い、安定した呼吸を確保します。心機能と肺機能が徐々に回復したら、鎮静薬を減らし、動物が自発呼吸を再開したら、気管内チューブを取り外してください。
注:気管内チューブの早期除去と自発呼吸の回復は非常に重要です。挿管が長引くと、呼吸不全を引き起こし、術後の回復に影響を与える可能性があります。 - 術後疼痛管理:動物の痛みの徴候(非ステロイド性抗炎症薬(NSAID)やオピオイドなどの一般的な鎮痛薬)に基づいて痛みを和らげます。
- 腎機能モニタリング:手術後の尿量と腎機能指標(クレアチニンや尿素窒素など)を定期的に監視します。尿量の減少やクレアチニンの上昇が発生した場合は、利尿薬を投与します。.
注:腎機能の回復は、電解質バランスと酸塩基バランスを維持するために重要です。 - 術後合併症の予防:感染症や出血などの術後合併症がないか動物を注意深く観察します。合併症を予防および治療するために、適切な抗生物質、止血薬、輸血を投与します。
アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。
結果
図1は、正中線胸骨切開術、心膜を開いて主要な血管を露出させる、心筋麻痺液の大動脈注入、アイススラッシュによる心臓の冷却、ドナー心臓の保存など、ブタにおける同所性心臓移植の主要な手順を示しています。強調されている重要な側面は、移植手順の重要なステップである左奇静脈の管理です。ドナーの心臓の場合、心膜腔への過剰な血流を防ぐために、左アジゴス静脈を結紮する必要があります。ただし、レシピエントにとって、左奇静脈のドレナージを維持することは、CVPの上昇などの術後合併症を防ぐために不可欠です。この図は、これらの手順を細心の注意を払って詳細に説明し、移植プロセスの再現性と標準化を確保しています。
図 2 は、術後 12 時間と 48 時間の ICU モニタリング結果を、バイカバル技術とバイアトリアル技術で比較したものです。その結果、バイカバル法ではCVPの有意な上昇と顕著な血行動態異常が生じるのに対し、バイアトリアル法ではCVPなどのモニタリングパラメータを術後の同じ時点で正...
アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。
ディスカッション
ブタ心臓同所性移植モデルは、臨床心臓移植をシミュレートする効果的な実験プラットフォームです15。ブタの心臓は、人間の心臓と多くの解剖学的および生理学的類似点を共有しています12。したがって、このモデルは、心臓移植のさまざまな側面、特に心臓保護、外科的処置、および移植免疫学の研究において大きな応用価値があります。しかし、これらの利点にもかかわらず、体外循環下で同所性移植手術を行うことは、依然として大きな課題を提示しています18。
心臓移植手術の課題と解決策にはいくつかの側面があり、両房技術と二房技術の選択が主要な懸念事項の1つです。初期の実験では、最初はバイカバル法を採用しました。しかし、ブタでは胸壁(肋間静脈と内胸静脈を含む)、食道、気管支、腹部の一部から静脈血を排出する左半零型静脈を結紮した後、CVPの有意な増加が観察され、腹液の蓄積と肝脾腫が観察されました。私たちの観察...
アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。
開示事項
著者は、宣言する利益相反を持っていません。
謝辞
この研究は、中国の著名な若手研究者のための国家自然科学基金(82125004;江平宋へ)、中国科学技術省の国家重点研究開発プログラムのフロンティアバイオテクノロジー主要プロジェクト(2023YFC3404300;江平宋へ)、中国科学技術省の特別プロジェクト、国家心血管疾患重点研究所の支援を受けて、 福外病院、中国医学院(2024GZZD-03、江平宋へ)、中国国家自然科学基金会(82300464、元昌へ)
アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。
材料
| 名前 | 会社 | カタログ番号 | コメント |
|---|---|---|---|
| 10度大動脈クロスクランプ | シノビュー | CP40431-19 | ドナー手術 |
| 10度大動脈クロスクランプ | シノビュー | CP40431-19 | レシピエント手術 |
| 30度アーチブランチ血管クランプ | シノビュー | CP40432-19 | ドナー手術 |
| 45度大動脈クロスクランプ | シノビュー | CP40044-18 | ドナー手術 |
| 45度大動脈クロスクランプ | シノビュー | CP40044-18 | レシピエント手術 |
| アフィニティー融合酸素化システム | メドトロニック | BB841 | 心肺バイパス |
| 麻酔器 | ミンドレイ | 答え9 | 麻酔など |
| 動脈カニューレ | メドトロニック | 18階 | 心肺バイパス |
| アトラクリウム | 恒瑞製薬 | - | 麻酔など |
| 非外傷性フラット鉗子 | シュアメッド | GF04021-25 | ドナー手術 |
| 非外傷性フラット鉗子 | シュアメッド | GF04021-25 | レシピエント手術 |
| 非外傷性フラット鉗子 | シュアメッド | GF04016-25 | レシピエント手術 |
| バランスハンドルペン式顕微鉗子 | シノビュー | FC12010-21 | ドナー手術 |
| バランスハンドルペン式顕微鉗子 | シノビュー | FC12010-21 | レシピエント手術 |
| バマミニブタ | 中国科学院動物研究所 北方大型動物研究施設 | - | 実験動物 |
| ベルザー UW 冷蔵ソリューション | ブリッジ・トゥ・ライフ株式会社 | 1000ml/袋 | ドナー手術 |
| 黒柄の超鋭利なハサミ | シノビュー | SC35101-23UC | ドナー手術 |
| 黒柄の超鋭利なハサミ | シノビュー | SC35101-23UC | レシピエント手術 |
| 血液ガス分析器 | 電子診断 | PT1000 | 麻酔など |
| 心肺バイパス回路 | メドトロニック | B-HL-159 | 心肺バイパス |
| 中心静脈カテーテル | バイヘメディカル | - | 麻酔など |
| 湾曲鉗子 | シュアメッド | GC01002-16 | ドナー手術 |
| 湾曲鉗子 | シュアメッド | GC01002-12 | レシピエント手術 |
| 湾曲鉗子 | シュアメッド | GC01002-16 | レシピエント手術 |
| 使い捨て血液微小塞栓フィルター | サンシン | FAF-2 | 心肺バイパス |
| 使い捨て血液貯蔵庫フィルター | サンシン | FCR300K | 心肺バイパス |
| 使い捨て心停止送達システム | メドトロニック | XP41 | 心肺バイパス |
| ドーパミン | 九安製薬 | - | 麻酔など |
| 気管内チューブ | ヤシン薬 | YS-0000 | 麻酔など |
| エピネフリン | 金耀製薬 | - | 麻酔など |
| 微細解剖鉗子 | シュアメッド | GC01090-20 | ドナー手術 |
| 微細解剖鉗子 | シュアメッド | GC01090-20 | レシピエント手術 |
| ゴールドハンドルの超鋭利なハサミ | シノビュー | SC35001-23SC | ドナー手術 |
| ゴールドハンドルの超鋭利なハサミ | シノビュー | SC35001-23SC | レシピエント手術 |
| 人工心肺装置 | リバノバ | S5 | 心肺バイパス |
| ヘパリン | 華北製薬 | - | 麻酔など |
| アイスバケツ | シュアメッド | GQ13018-00D | ドナー手術 |
| アイスバケツ | シュアメッド | GQ13018-00D | レシピエント手術 |
| 輸液ポンプ | シノMDT | SN-C8 | 麻酔など |
| 静脈内カテーテル | KDLの | 16G-26G | 麻酔など |
| イソフルラン | ルナン製薬 | - | 麻酔など |
| イソプロテレノール | ハーベスト・ファーマシューティカル | - | 麻酔など |
| 乳酸リンゲル液 | ケルン製薬 | - | 麻酔など |
| 大きな洗面器 | シュアメッド | GQ13033-00D | ドナー手術 |
| 大きな洗面器 | シュアメッド | GQ13033-00D | レシピエント手術 |
| 喉頭 鏡 | ハンフェイル | TD-C-III型 | 麻酔など |
| 塩酸リドカイン注射 | Kelun Pharmaceutical co.,Ltd | H20057816 | ドナー手術 |
| 注射用硫酸マグネシウム | Zdjt製薬株式会社 | H20051792 | ドナー手術 |
| 医療用電動胸骨鋸 | 京東西集 | HF-X01 | ドナー手術 |
| 医療用胸骨のこぎり、電動胸骨のこぎり | 京東西集 | HF-X01 | レシピエント手術 |
| ミディアムベイスン | シュアメッド | - | ドナー手術 |
| 中型胸骨レトラクター | シュアメッド | GR04130-00 | レシピエント手術 |
| 修正セントトーマス溶液 | 自力 | - | 麻酔など |
| マルチパラメータモニター | ミンドレイ | ベノバージョン N17 | 麻酔など |
| 巾着縫合糸用ニードルパサー | シュアメッド | GR04074-00 | レシピエント手術 |
| 神経および脊索レトラクター | シュアメッド | - | ドナー手術 |
| 神経レトラクタ | シュアメッド | - | ドナー手術 |
| ノルエピネフリン | ハーベスト・ファーマシューティカル | - | 麻酔など |
| 子供用胸骨レトラクター | シュアメッド | GR04114-00 | レシピエント手術 |
| ペン式顕微手術用ニードルホルダー | シノビュー | NH11300-21 | ドナー手術 |
| ペン式顕微手術用ニードルホルダー | シノビュー | NH11300-21 | レシピエント手術 |
| 塩化カリウム注射 | Kelun Pharmaceutical co.,Ltd | H42021164 | ドナー手術 |
| 硫酸プロタミン | ユーケア製薬 | - | 麻酔など |
| 巾着縫合糸イントロデューサー | シュアメッド | GR04074-00 | ドナー手術 |
| レサーノ非外傷性マジック鉗子 | シノビュー | FC25501-23S | ドナー手術 |
| 直角鉗子 | シュアメッド | GC01110-14 | ドナー手術 |
| 直角鉗子 | シュアメッド | GC01089-18 | ドナー手術 |
| 直角クランプ | シュアメッド | GC01110-14 | レシピエント手術 |
| 直角クランプ | シュアメッド | GC01089-18 | レシピエント手術 |
| 小さな洗面器 | シュアメッド | - | ドナー手術 |
| 酢酸ナトリウムリンゲル注射液 | デュオルイ製薬株式会社 | H20163331 | ドナー手術 |
| 重炭酸ナトリウム注入 | Kelun Pharmaceutical co.,Ltd | H20043739 | ドナー手術 |
| 胸骨レトラクター(中型) | シュアメッド | GR04130-00 | ドナー手術 |
| ストレート鉗子 | シュアメッド | GC01001-12 | ドナー手術 |
| ストレート鉗子 | シュアメッド | GC01001-16 | ドナー手術 |
| ストレート鉗子 | シュアメッド | GC01001-12 | レシピエント手術 |
| ストレート鉗子 | シュアメッド | GC01001-16 | レシピエント手術 |
| 縫合糸 5-0 プロレン BB | エチコン | - | レシピエント手術 |
| 縫合糸 Prolene Blum 4-0 SH 36 | エチコン | - | レシピエント手術 |
| 縫合糸 2-0 プロレン ブルー M SH | エチコン | - | レシピエント手術 |
| 縫合糸 BB 4-0 Prolene | エチコン | - | レシピエント手術 |
| 温度プローブ | 3メートル | - | 麻酔など |
| 扁桃腺鉗子 | シュアメッド | GC09009-20D | ドナー手術 |
| タングステンカーバイドリングハンドルニードルホルダー | シュアメッド | GN01013-22K | ドナー手術 |
| タングステンカーバイドリングハンドルニードルホルダー | シュアメッド | GN01013-22K | レシピエント手術 |
| タングステンカーバイドリングハンドルニードルホルダー | シュアメッド | GN01010-22K | レシピエント手術 |
| UWソリューション | ベルザー | - | 麻酔など |
| 静脈カニューレ | メドトロニック | 28階、32階 | 心肺バイパス |
| 人工呼吸器 | ミンドレイ | SV300 | 麻酔など |
| 加重ペン式ニードルホルダー | シノビュー | NH10400-23 | レシピエント手術 |
参考文献
- Hayward, C. Cardiac allograft injuries: A review of approaches to a common dilemma, with emphasis on emerging techniques. Int J Heart Fail. 4 (3), 123-135 (2022).
- Hsich, E., et al. The International thoracic organ transplant registry of the international society for heart and lung transplantation: Thirty-ninth adult heart transplantation report-2022; focus on transplant for restrictive heart disease. J Heart Lung Transplant. 41 (10), 1366-1375 (2022).
- Ortega-Legaspi, J. M., Bravo, P. E. Diagnosis and management of cardiac allograft vasculopathy. Heart. 108 (8), 586-592 (2022).
- Al-Adhami, A., et al. Primary graft dysfunction after heart transplantation - Unravelling the enigma. Curr Probl Cardiol. 47 (8), 100941(2022).
- Mestas, J., Hughes, C. C. Of mice and not men: differences between mouse and human immunology. J Immunol. 172 (5), 2731-2738 (2004).
- Pane, A. A., et al. MicroRNAs affecting the susceptibility of melanoma cells to CD8(+) T cell-mediated cytolysis. Clin Transl Med. 13 (2), e1186(2023).
- Palliyaguru, D. L., et al. Fasting blood glucose as a predictor of mortality: Lost in translation. Cell Metab. 33 (11), 2189-2200.e3 (2021).
- Yang, C., et al. Targeting the class IA PI3K isoforms p110α/δ attenuates heart allograft rejection in mice by suppressing the CD4(+) T lymphocyte response. Am J Transl Res. 10 (5), 1387-1399 (2018).
- Zhu, Y., et al. Cirbp suppression compromises DHODH-mediated ferroptosis defense and attenuates hypothermic cardioprotection in an aged donor transplantation model. J Clin Invest. 134 (9), e175645(2024).
- Pan, H. Z., et al. Cold-inducible RNA binding protein agonist enhances the cardioprotective effect of UW solution during extended heart preservation. Artif Organs. 44 (10), e406-e418 (2020).
- Wang, W. J., et al. Unloading the infarcted heart affect MMPs-TIMPs axis in a rat cardiac heterotopic transplantation model. Mol Biol Rep. 39 (1), 277-283 (2020).
- Jia, H., Chang, Y., Song, J. The pig as an optimal animal model for cardiovascular research. Lab Anim (NY). 53 (6), 136-147 (2024).
- Golbus, A. L., et al. Immunosuppressive regimens in porcine transplantation models. Transplant Rev (Orlando). 36 (4), 100725(2022).
- Lelovas, P. P., Kostomitsopoulos, N. G., Xanthos, T. T. A comparative anatomic and physiologic overview of the porcine heart. J Am Assoc Lab Anim Sci. 53 (5), 432-438 (2014).
- Ribeiro, R. V. P., et al. A pre-clinical porcine model of orthotopic heart transplantation. J Vis Exp. (146), e59197(2019).
- Madariaga, M. L., et al. Kidney-induced cardiac allograft tolerance in miniature swine is dependent on MHC-matching of donor cardiac and renal parenchyma. Am J Transplant. 15 (6), 1580-1590 (2015).
- Choi, M. K., et al. Determination of complete sequence information of the human ABO blood group orthologous gene in pigs and breed difference in blood type frequencies. Gene. 640, 1-5 (2018).
- Mendiola Pla, M., et al. A porcine heterotopic heart transplantation protocol for delivery of therapeutics to a cardiac allograft. J Vis Exp. (180), e63114(2022).
アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。
再版と許可
