方法論記事

ラットにおける心筋虚血再灌流損傷モデリングのための低侵襲ダブルライブノット技術

789 閲覧数

DOI:

10.3791/68430

2025年7月25日

* These authors contributed equally

この記事について

サマリー

ここでは、左前下行冠動脈 (LAD) を標的とした二重アクティブ ノット コイル結紮によって心筋虚血再灌流損傷を誘発するスキームを提案します。

要約

心筋虚血再灌流障害 (MI/RI) モデルは、心筋梗塞の病態生理学的メカニズムを調査し、関連薬の開発を促進する上で非常に重要です。ただし、一般的に使用されるモデリング方法の中で、従来のポリエチレンチューブ支援冠動脈結紮法には重大な欠点があります。結紮糸を解くには胸を再度開く必要があり、時間がかかるだけでなく、実験動物に大きなダメージを与え、死に至りやすい。本研究の目的は、改良されたモデル作成方法を導入することです。この方法では、左前下行冠動脈 (LAD) をダブル ライブ ノット コイルを使用して結紮し、ライブ ノットを in vitro で 開いて再灌流を達成できるため、2 回目の侵襲的処置を回避できます。心電図 (ECG) モニタリング、M モード心エコー検査 (ME) 測定、エバンス ブルーおよび 2,3,5-トリフェナイト-トラゾリウムクロリド染色 (EB-TTC) などの評価方法は、この方法が安定した MI/RI を誘導できることを示しました。この改良されたMI/RIモデルスキームは、そのシンプルさとスピードが特徴で、モデリングの成功率は高い満足度を誇っています。全体として、MI/RI 研究の分野に従事する研究者に実践的で価値のあるガイダンスを提供します。

概要

世界保健機関によると、冠状動脈性心疾患は心血管疾患の世界的な負担において重要な位置を占めており、発生率が高く、死亡率が高く、合併症の発生率が高いことを特徴としています。さらに、この病気はますます若年化傾向を示しています。一部の先進国の統計によると、35〜40歳の年齢層における冠状動脈性心疾患の発生率は、過去10年間で約15%〜20%増加しています。薬物血栓溶解療法、インターベンション療法、冠動脈バイパス移植などの再灌流方法は安全で効果的であり、広く使用されています。しかし、血流の突然の回復は、虚血性心筋の構造的および機能的損傷を悪化させることが多く、一連の有害な転帰を引き起こします。これらには、心筋細胞のアポトーシスと壊死、不整脈、収縮機能障害が含まれ、最終的には心筋虚血再灌流障害(MI / RI)1,2で最高潮に達します。MI/RI 損傷の発生率は 25%-30% と高く、そのメカニズムは完全には解明されていません3.したがって、効果的な予防および治療戦略を模索することは、心臓血管分野で取り組む必要がある大きな問題となっています。

動物モデルは心血管疾患の研究において最も重要です。これらは、MI/RI の病理学的メカニズムを解明し、新しい治療戦略を開発するために不可欠なツールとして機能します4。心筋虚血再灌流損傷動物モデルの信頼性と安定性は、臨床現場での治療戦略の翻訳と応用の成功に直接影響します。左前下行冠動脈 (LAD) は、心筋虚血の影響を受ける一般的な血管です5。LAD をライゲーションすることによって構築された MI/RI モデルは、ヒト心筋虚血再灌流障害の病因および病理学的プロセスと非常に類似しています6。これらのモデルの中で、従来のポリエチレンチューブ補助冠動脈結紮法は、以前の研究で広く採用されてきました。その広範な使用は、結紮力の均一な分布や血管内皮の保護の程度などの利点に起因する可能性があります7。ただし、多くの利点があるにもかかわらず、運用の詳細は依然として多くの研究者の間で議論の焦点となっています。

従来のポリエチレンチューブ支援冠動脈結紮法では、再灌流中に結紮糸を解くために胸部を再開する必要があります。現在、主に手術法は、古典的な開胸結紮法と改良型低侵襲結紮法の2つがあります。古典的な開胸術の結紮法では、結紮のために心臓を完全に露出させるために胸部を大規模に切開する必要があります6。修正された低侵襲結紮法は、特別な器具を使用して、より小さな切開を介して結紮を完了します8。再灌流段階では、古典的な開胸結紮法では、結紮糸をほどくために胸部を再開する必要があり、時間がかかるだけでなく、実験動物に重度の外傷を与え、死に至る可能性があります。さらに、開胸術を繰り返すと、感染症などの合併症が引き起こされ、実験結果の精度が妨げられる可能性があります 7,9。また、各開胸手術の程度が完全に一線を画すことは難しいため、実験データのばらつきが大きくなります。修正された低侵襲結紮法の適用に関しては、切開が小さいにもかかわらず、この手順には重大な技術的課題が生じます。実験者は高度な技術的熟練度を持ち、実体顕微鏡などのハイエンドの精密機器に依存することが求められます。このような器具の助けを借りずに限られた空間で試みると、周囲の組織を誤って損傷するリスクが高くなります。これにより、実験結果の安定性と信頼性が損なわれる可能性があります。

したがって、これらの課題に取り組むための強化されたモデル準備アプローチが緊急に必要とされています。この研究は、MI/RI をモデル化するための改良された方法を提示します。この方法では、ダブルライブノットコイルを使用してLADを結紮し、ライブノットの in vitro 放出を可能にして再灌流を達成するため、2回目の開胸術の必要性がなくなります。この方法は、操作のシンプルさと習得の容易さを特徴としており、心筋虚血再灌流障害を一貫して誘発することができ、MI/RI 分野の研究者に貴重な参考資料とインスピレーションを提供します。

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

プロトコル

実験プロトコルは、陝西中医薬大学の実験動物の使用および施設動物の管理および使用委員会のガイドラインに従って実施されました (記録番号: SUCML20240820006)。すべての動物研究データは、ARRIVE(Animal Research: Reporting In Vivo Experiments)ガイドラインに従って文書化されています。体重250 g±20 g、生後6〜8週の雄スプレイグドーリー(SD)ラットをこの研究に利用しました。使用される動物、試薬、機器に関する詳細は 、材料表に記載されています。

1. 術前の準備

  1. 1.1.絶食を行う:ラットに水に自由にアクセスできる8時間の絶食期間にかけます
  2. 校正と計量:電子天秤(精度0.1g)を使用して体重を正確に測定し、麻酔薬の投与量を計算します。
  3. 麻酔を誘発する:滅菌2.5 mL注射器を使用して、体重100 gあたり0.4 mLの用量で腹腔内注射により20%ウレタン溶液を投与します。腹側正中線の外側に1cm注入します。
  4. 麻酔の確認:滅菌鉗子で後足をクランプします。四肢の引き抜き反射がないことは、深い麻酔を確認します。

2. 心電図 (ECG) モニタリング (図 1、ステップ 1)

  1. ラットを仰臥位で固定する:手術台に医療用粘着テープを使用して、胴体と手足を「手足を伸ばした姿勢」で固定します。
  2. 電極を接続する: 滅菌した電極針を、右前肢 (白い電極に接続)、右後肢 (黒い電極に接続)、左後肢 (赤い電極に接続) の順序で皮下挿入します。その後、これらの電極を誘導 II ECG モニターに取り付けます。安定したベースラインが確立され、QRS 群がモニターにはっきりと見えることを確認してください。
    注:手順全体を通して継続的なECGモニタリングを維持してください。波形異常を介して麻酔深度とラットの状態をリアルタイムで評価します。

3. 手術部位の脱毛と消毒 (図 1、ステップ 2)

  1. 機械脱毛:電動バリカンを使用して、首と左胸部の毛皮を取り除きます(残り長さ≤0.5mm)。
    注意: ブレードを30°の角度で持ち、毛の成長方向に逆らって動かします。
  2. 化学脱毛:脱毛クリームを露出した皮膚に均一に2分間塗布します。滅菌スクレーパーで完全に除去し、続いて37°Cの生理食塩水を入れた2.5 mLシリンジを使用してパルスフラッシングします。残留物がなくなるまで3回繰り返します。
  3. 段階的な消毒:滅菌綿球を使用して、75%エタノール-ヨードフォア混合物(1:1)で同心円状(内側から外側)で皮膚を3回消毒します。

4. 人工呼吸器パラメータの設定

  1. 術前機器チェック:人工呼吸器回路をY字型気管チューブアダプターに接続します。
  2. パラメータを調整します( 図1ステップ3):種固有のパラメータを設定します:一回換気量3.0 ml、呼吸数80呼吸/分、吸気呼気比(I:E)2:1。
  3. 回路の開存性を確認する: 人工呼吸器を作動させ、回路端を生理食塩水に浸します。リズミカルな気泡の形成を観察します。漏れがない場合は、漏れを体系的にチェックし、トラブルシューティングを行います。

5.気管挿管

  1. 切開位置:手術野を滅菌布で覆います。鋭利な鉗子で甲状腺下軟骨の皮膚を持ち上げ、まっすぐなはさみを使用して気管に沿って2.5cmの縦方向の切開を行います。
  2. 層ごとの解剖:滅菌鉗子(左手)で皮膚を引っ込め、マイクロハサミ(右手)で表面的な進行解剖を行います。
    注:最初の層を表皮と真皮に限定します。筋肉層の損傷を避けてください。
  3. 気管露出(図1ステップ4):止血鉗子を使用して広頸筋を鈍的に解剖し、ストラップ筋肉を4〜5個の気管軟骨を露出させます。鉗子で気管を動かし、その下にシリコンチューブを置き、安定させます。
    注:頸動脈と迷走神経は気管の両側に見られるため、手術中にこれらの構造を損傷しないようにしてください。
  4. 気管挿管( 図1ステップ5):マイクロハサミを使用して、3番目と4番目の気管軟骨リングの間に横方向のΩ字型切開(約1/3円周)を作成します。14 G シリコン気管内チューブを素早く挿入し、深さマーカーを切開端に合わせます。
    注: 挿管後、胸部の動きを人工呼吸器のリズムと同期させます。気道内圧と呼吸頻度に異常がないか監視します。人工呼吸器の設定を調整するか、逸脱が発生した場合はチューブの開存性を確認します。

6.肋間切開の準備

  1. 切開部位に印を付ける:滅菌手術マーカーを使用して、第3〜4肋間腔の左胸骨境界を描きます(最大心尖インパルスの点を触診することによって識別されます)。縦3.0cmの線を引きます。
  2. 層ごとの解剖: 滅菌鉗子で皮膚を持ち上げ、滅菌ハサミを使用してマークされた線に沿って切開します。止血鉗子を30°の角度で皮下に挿入し、肋間腔に平行に鈍的解剖を行い、筋肉層を分離します。
  3. 肋骨切断:マイクロハサミを使用して、第3および第4肋骨と肋間筋を横断します。注:肋間動脈出血が発生した場合は、直ちに滅菌綿棒を60秒間しっかりと圧力で適用して止血を達成します10

7. 左前下行動脈 (LAD) の局在化と結紮

  1. 結紮部位の確認(図1ステップ6):胸骨レトラクターを使用して肋間腔を4cmに拡大し、心臓を露出させます。心膜をそっと解剖します(胸腺組織を心臓の上の白い構造として識別します)。肺円錐(右耳介円錐形の突起)と左耳介(三角形の弁構造)によって形成される「V」の中点より2 mm下のLADを見つけます。
  2. 針の校正(図1ステップ7-1):マイクロ鉗子を使用して6-0ポリプロピレン縫合糸(針付き)をクランプします。心筋表面に対して 15° の角度 (深さ: 1 mm、幅: 2 mm) で、心筋を中央遠位 LAD 接合部の外側 1 mm に入り、右から左に前進します。
  3. ダブルスリップノット法(図1ステップ7-1-7-5):結紮糸を心筋に通した後、結紮糸の一端を針先で微細な鉗子でコイルに転がし、もう一方の端をコイルに通し、そっと引っ張って固定を締めます。上記の操作を繰り返して二重結び目構造を形成し、結字糸の両端が胸腔の外側で互いに平行なままになっていることを確認することにより、結字糸のもう一方の端を再び結びます。
    注: 締め付けプロセス中は、マイクロピンセットを使用して穏やかで均一な力で徐々に締め付け、心筋の色の変化を観察して虚血の程度を判断し、血管の破裂や不安定な結紮につながる過度の運動を回避しました。心電図で左心室の前壁/頂端領域の虚血性蒼白と0.2mV≥持続するSTセグメント上昇を観察することにより、モデルの確立に成功したことが確認され、結紮の成功を確認した直後に30分間の虚血タイマーを開始しました。

8.縫合糸と胸部陰圧の修復

  1. リブクロージャー:胸骨レトラクターを取り外します。肋骨 3-4 の周りの肋間筋を、4-0 吸収性縫合糸を使用して連続ロック パターン (2 mm ステッチ間隔) で閉じます。
    注:再灌流の干渉を防ぐために、結紮縫合糸と閉鎖縫合糸の間の接触を避けてください。
  2. 筋肉層の閉鎖と空気の排出:4-0縫合糸で表在性大胸筋と小胸筋を近似します。最終的な締め付けの前に、針のない 2.5 mL シリンジを最後のステッチ穴に挿入し、助手が縫合糸を固定している間に胸腔内空気を吸引します。
    注:自発呼吸の胸部運動を監視します(人工呼吸器に対する非同期リズムで示されます)。
  3. 皮膚の閉鎖と消毒:4-0縫合糸で皮膚を連続的に縫合します。プロトコル3.3のガイドラインに従って3回消毒します。

9.人工呼吸器を解除する

  1. 抜管:自発呼吸を観察しながら、気管内チューブをゆっくりと引き抜きます。
  2. 気管と筋肉の閉鎖: 気密シールを確保するために、気管軟骨リングを 4-0 縫合糸を使用して縦方向に縫合します。首の筋肉を再近似します。
  3. 皮膚の閉鎖と消毒(図1、ステップ8):4-0縫合糸で首の皮膚を閉じます。エタノールとポビドンヨードを浸した滅菌綿棒を使用して消毒します。ドレープを取り外し、ラットを38°Cの加熱パッドに移して再灌流します。
    注:自発呼吸が失敗した場合は、気管内チューブを再挿入し、抜管を再試行する前に手順8.1〜8.3を繰り返します。

10.虚血再灌流

  1. 結紮糸を緩めます(図1、ステップ9):虚血の30分後、バンディング針の一端にある結紮線を水平に引っ張って最初の結び目をほどき、次にもう一方の端の結紮線を引っ張って2番目の結び目をほどき、次に左右に水平に引っ張って、二重結び目が正常に解けたことを証明する抵抗がないことを確認します。
    注:EB-TTC二重染色が必要な場合、合字線を引き抜くことはできません。
  2. 再灌流の検証: 再灌流の成功の証拠として、ECG 上の ST セグメントの分解能を確認します12.

11. Mモード心エコー検査(ME)測定 10

  1. 処置前の準備: 再灌流後 2 時間で、麻酔の深さを評価し、必要に応じて補給します。ラットを仰臥位に固定し、2mmの37°C超音波ゲルを前胸部に塗布します。
  2. データ収集:超音波システムの電源を入れます。プリセットプロトコルを選択し、MX250プローブを18MHzに設定し、左心室運動のMモード画像を記録します。画像を適切に保存します。
  3. データ分析: システム統合ソフトウェアを使用して、左心室駆出率 (LVEF)、短縮率 (LVFS)、収縮末期直径 (LVID)、拡張末期直径 (LVIDd)、および一回拍出量 (SV) を計算します。
    注: ≥3 回連続した心周期からデータをキャプチャします。統計的厳密さの平均値を報告します。

12. エバンスブルーおよび2,3,5-トリフェナイト-トラゾリウムクロリド(EB-TTC)染色

  1. 再挿管: 首の皮膚、筋肉、気管から縫合糸を順次除去します。気管内チューブを挿入し、人工呼吸器に接続して呼吸を維持します。
  2. 再開胸術: 胸部の皮膚、筋肉、肋骨から縫合糸を除去します。胸部レトラクターを使用して肋間腔を広げ、心臓を完全に露出させます。
  3. LAD 動脈の再結紮: LAD 動脈を再結紮します。心電図で心尖の蒼白と持続的なSTセグメントの上昇を観察することにより、結紮の成功を確認します。
  4. EBを注入する:0.5 mLのインスリンシリンジを使用して、0.3 mLの1.5%エバンスブルー溶液を吸引します。次に、大動脈弓をすばやく解剖し、注射器の針を大動脈に挿入し、マイクロ止血クランプで固定します。次に、エバンスブルー溶液を注入し、心臓が均一な青色染色になるかどうかを観察します。
  5. 心臓を切除する:注射後30秒後、滅菌ハサミで心臓を切除します。すぐに生理食塩水に浸し、繰り返しすすぎ、残留血液とエバンスブルーを取り除きます。心臓を-80°Cで凍結します。
  6. 心臓を切片化する:20分間凍結した後、心臓を取り除きます。外科用ブレードを使用して、心臓の長軸に垂直な厚さ 1 mm の横スライスを 5 つ、頂点から基部まで切断します。
  7. TTCによる染色:スライスを室温まで平衡化させます。それらを1.5%TTC溶液を含む50 mLの琥珀色の遠心分離管に移します。チューブを予熱したサーモスタットシェーカーで37°Cで30分間インキュベートし、光保護条件下で30分間インキュベートします。
  8. 画像取得と分析:染色後、スライスをパラホルムアルデヒドで12時間固定します。Image J ソフトウェアを使用して、高解像度の画像をキャプチャし、梗塞面積 (IA)、リスク領域 (AAR)、および総左心室面積 (LV) を定量化します。Cai ら12 によって説明されている方法論に従って、心筋梗塞比を IA/(AAR+IA) として、虚血リスク比を (AAR+IA)/LV として計算します。

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

結果

心電図
心電図は、ラット心臓の結紮前から虚血再灌流の120分後までのプロセス全体で記録されました。心電図の変化を 図2Aに示します。虚血中、STセグメントは上向きのアーチ型の隆起を示し、T波は高くピークに達しました。再灌流後、STセグメントの挙上は徐々に低下しました。


心筋虚血再灌流障害の後、左心室拡張が一般的に起こります。対照群とMI/RIモデル群のMモード心エコー図(図2B1B2)では、LVIDdとLVIDの顕著な増加が観察できます(図2B5B6)。この拡張は、心筋収縮機能と弛緩機能の両方を損ない、それによって心室腔の...

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

ディスカッション

心筋虚血再灌流損傷モデルを確立するための古典的な方法である冠動脈結紮は、心血管疾患の研究において非常に重要です12。1980年代以降、山本らが開拓したポリエチレンチューブ補助冠動脈結紮法は、世界中の科学研究室で広く採用されています。この方法には、制御可能な結紮力、視覚化された操作、虚血時間の正確な調節など、いくつかの利点があります。これらの特性は、心筋梗塞の病理学的メカニズムの調査に強固な基盤を提供し、多くの重要な研究成果を促進してきました。それにもかかわらず、欠点がないわけではありません。この方法で必要な開胸術は、必然的に実験動物の胸腔内構造に深刻な損傷を引き起こし、術後の胸膜癒着を引き起こします。胸膜癒着は、実験動物の呼吸機能に影響を与えるだけでなく、その後の心臓および関連血管の観察も妨げます14,15。さらに、大量の実験データは、術後の感染率が 35% にも達することを示しています

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

開示事項

著者らは開示するものは何もない。

謝辞

この研究は、陝西省中医薬大学の科学技術革新的人材プログラム (No. 2024-CXTD-03)、陝西省漢方薬研究プロジェクト管理局 (No.SZY-KJCYC-2025-JC-043)、陝西省科学技術局の研究開発プログラム (No. 2024CY-JJQ-36)。

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
0.5 mLインスリン注射器 無錫玉寿医療機器有限公司https://e.tb.cn/h.6NJ9o4dBdpXt4bT?tk=YobMVflhtgI EBを吸収し、大動脈弓 から注入するために使用されます。
2,3,5-トリフェニト-トラゾリウム塩化物上海Yuanye Biotechnology Co.、Ltd.S19026心臓染色用 
2.5 mL 使い捨て滅菌シリンジRobust Ping An Medical Technology Co., Ltd.20231230腹腔内注射によりラットに麻酔薬を吸引し、麻酔するために使用します。閉胸手術中にラットの胸腔から空気を抽出するために使用されます。
4%パラホルムアルデヒド州Viggs Biotechnology Co.、Ltd.SW002後の心臓の固定に使用されます
4-0 縫合糸山東海地科医療製品有限公司肋骨、筋肉、皮膚のステッチ用 
6-0縫合糸江蘇北月神医療機器有限公司https://e.tb.cn/h.6NKQ9XNVD1J56np?tk=R8NKVfPJIUMLAD の結紮用。
鍼治療針 北京羅雅山川医療機器有限公司https://e.tb.cn/h.6NQZzrSfBLQ9OYZ?tk=yW5aVfPuXP3ラットの手足の皮膚を突き刺し、心電図の電極線を接続するために使用されます。
動物脱毛剤Jinyun New Concept Household Products Co.https://e.tb.cn/h.6NJe67IEMgxPfUt?tk=9boIVflb6mm 毛用 
脱毛クリームGuangzhou Miyanshe Brand Management Co., Ltd.https://3.cn/2fP-knZw 深部脱毛用 
エタノール麗化学試薬有限公司https://e.tb.cn/h.6NnxsK8EAvBV1Zu?tk=ja1XVflVhfM 消毒用 
エバンス ブルーシグマE2129心臓染色用 
止血鉗子 上海助手医療機器有限公司https://e.tb.cn/h.6NQkHWD25dxnsv4?tk=xA1VVflTXjWインスリン注射器を固定し、大動脈弓の血液を止めるために使用されます 。
医療用マイクロハサミNanjing Ji Xiaobao Trading Co.https://e.tb.cn/h.6NJu33PgNRJCO1L?tk=smZjVflr730気管と肋骨を切り開くために使用されます 。
医療用顕微ピンセットNanjing Ji Xiaobao Trading Co.https://e.tb.cn/h.6Nqn2dyJIUjUN6n?tk=MEMaVflGK0b6-0縫合糸をつまんで結紮するためLAD
医療メス東ボリューダ分析機器有限公司https://e.tb.cn/h.6NJyfb9CWH5Sj32?tk=HW0kVflEyOL EB-TTC染色中の心臓切断用
医療用ハサミ東ボリューダ分析機器株式会社https://e.tb.cn/h.6NJCLzckQnXXEPe?tk=CtcTVflFJQw ネズミの皮膚を切ったり縫合したりするのに使う。
医療用手術布Meideqi医療機器有限公司https://e.tb.cn/h.6NqItN9yA0xttr9?tk=cCCIVflzFjr 無菌手術領域を提供するために使用されます。
医療用テープZhejiang Aotai Medical Technology Co.https://e.tb.cn/h.6N93etxLPPlJ9ZQ?tk=DfblVflAo5drats の修正に使用されます。
医療用ピンセットJiangsu Videocon Medical Technology Co.https://e.tb.cn/h.6NreHXQv2YTJkIl?tk=S1imVfO17QVラットの麻酔の程度を判断し、皮膚、肋骨、その他の組織をクランプし、皮下の筋肉や心膜を剥がすために使用されます。
医療用超音波カップリング剤 青島海諾生物工学有限公司https://3.cn/2fPpwB-j 超音波伝送の効率を向上させるために使用されます
生理食塩水 山東七度製薬有限公司https://e.tb.cn/h.6NMCUFJIti2EsiU?tk=FXBBVfOV1iN残留脱毛クリームの洗浄に使用されます。
ポータブルカラードップラー超音波VINNO Technology Co., Ltd.ヴィンノ6 ラットのMモード心エコー検査の測定に使用されます 
ポビドンヨード東安傑ハイテク消毒技術有限公司https://e.tb.cn/h.6NqAb4WsT3xjMb9?tk=mhFxVfO4G1G消毒用 
ラット手術用プレートShandong Boryuida Analytical Instrument Co.https://e.tb.cn/h.6NQyjjGNGInF3Eu?tk=qgQwVflHilH ラットを修正するために使用 
冷凍冷蔵庫 浙江智興超低温技術有限公司DL-78心臓を凍らせるために 
シリカゲルチューブ山東成武佐野医療機器有限公司https://e.tb.cn/h.6N9L82XWNGlgDDG?tk=pWzCVfOQIgN気管をサポートするために使用されます。
小動物人工呼吸機Anhui Zhenghua Biological Equipment Co., Ltd.DW-3000H胸術後のラットの呼吸を助けるために使用されます 
滅菌綿球 青島海諾生物工学有限公司https://e.tb.cn/h.6NJbKVmD0b7QhTf?tk=wMceVfOTrBX エタノールとポビドンヨード消毒の浸漬用 
滅菌綿棒Qingdao Hainuo Biological Engineering Co., Ltd.https://e.tb.cn/h.6NMAQz1252EJHSM?tk=nyfLVfOUSBi 胸腔内の残留血液を洗浄するために使用されます。
断熱ブランケットGuangdong Zhongke Life Science &テクノロジー株式会社https://e.tb.cn/h.6N9OyBVWuSXTUDy?tk=d6OqVfOSTlIラットの術後の身体断熱用 
開胸術レトラクターGuangdong Zhongke Life Science &テクノロジー株式会社https://e.tb.cn/h.6NQra4Z9UG8dnvo?tk=6eFUVfllCFW手術視野を露出させるために使用されます 
タイプIIリード心電図モニターChengdu Taimeng Technology Co., Ltd.BL-420N心電図モニタリング用 
ウレタン山東Keyuan生化学有限公司U820333麻酔ラットに使用 
水恒温発振器Boxun Medical Biological Instrument Co., Ltd.SHZ-B心臓染色用 
広 染色脱天津天山山河南山 開Shanghai

参考文献

  1. Hausenloy, D. J., Yellon, D. M. Myocardial ischemia-reperfusion injury: a neglected therapeutic target. J Clin Invest. 123 (1), 92-100 (2013).
  2. Ibáñez, B., Heusch, G., Ovize, M., Van de Werf, F. Evolving therapies for myocardial ischemia/reperfusion injury. J Am Coll Cardiol. 65 (14), 1454-1471 (2015).
  3. Algoet, M., et al. Myocardial ischemia-reperfusion injury and the influence of inflammation. Trends Cardiovasc Med. 33 (6), 357-366 (2023).
  4. Rahman, A., et al. Large animal models of cardiac ischemia-reperfusion injury: Where are we now. Zool Res. 44 (3), 591-603 (2023).
  5. Luan, F., et al. Cardioprotective effect of cinnamaldehyde pretreatment on ischemia/ reperfusion injury via inhibiting NLRP3 inflammasome activation and gasdermin D mediated cardiomyocyte pyroptosis. Chem Biol Interact. 368, 110245(2022).
  6. Xu, Z., Alloush, J., Beck, E., Weisleder, N. A murine model of myocardial ischemia-reperfusion injury through ligation of the left anterior descending artery. J Vis Exp. (86), e51329(2014).
  7. Xu, Z., McElhanon, K. E., Beck, E. X., Weisleder, N. A murine model of myocardial ischemia-reperfusion injury. Methods Mol Biol. 1717, 145-153 (2018).
  8. Marek-Iannucci, S., Thomas, A., Gottlieb, R. A. Minimal invasive pericardial perfusion model in swine: A translational model for cardiac remodeling after ischemia/reperfusion injury. Front Physiol. 11, 346(2020).
  9. Xiong, Y., et al. Decreased MFN2 activates the cGAS-STING pathway in diabetic myocardial ischaemia-reperfusion by triggering the release of mitochondrial DNA. Cell Commun Signal. 21 (1), 192(2023).
  10. Peng, L., et al. Cardioprotective activity of ethyl acetate extract of Cinnamomi Ramulus against myocardial ischemia/reperfusion injury in rats via inhibiting NLRP3 inflammasome activation and pyroptosis. Phytomedicine. 93, 153798(2021).
  11. Xu, H., et al. Resveratrol pretreatment alleviates myocardial ischemia/reperfusion injury by inhibiting STIM1-mediated intracellular calcium accumulation. J Physiol Biochem. 75 (4), 607-618 (2019).
  12. Cai, W., et al. Alox15/15-HpETE aggravates myocardial ischemia-reperfusion injury by promoting cardiomyocyte ferroptosis. Circulation. 147 (19), 1444-1460 (2023).
  13. Zhao, G., et al. A novel anti-inflammatory strategy for myocardial ischemia-reperfusion in rats with cinnamamide derivative compound 7. Int Immunopharmacol. 136, 112370(2024).
  14. Chen, L. Q., Wang, W. S., Li, S. Q., Liu, J. H. Minocycline relieves myocardial ischemia-reperfusion injury in rats by inhibiting inflammation, oxidative stress and apoptosis. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 26 (8), 3001-3009 (2022).
  15. Liu, Z., et al. Shuangshen ningxin formula attenuates cardiac microvascular ischemia/reperfusion injury through improving mitochondrial function. J Ethnopharmacol. 323, 117690(2024).
  16. J'Undra, N., Pegues, M. M., et al. Disparities in 180-day infection rates following coronary artery bypass grafting and aortic valve replacement. J Thorac Cardiovasc Surg. S0022-5223 (25), 00017-00020 (2025).
  17. Peng, J. -F., et al. Targeted mitochondrial drugs for treatment of myocardial ischaemia-reperfusion injury. J Drug Target. 30 (8), 833-844 (2022).
  18. Sun, Q., et al. A minimally invasive approach to induce myocardial infarction in mice without thoracotomy. J Cell Mol Med. 22 (11), 5208-5219 (2018).
  19. Olatoye, O., Yasir, A. -O., Gregory, D. R. Initial experience of left atrial appendage ligation using penditure in a minimally invasive cardiac surgical approach. Innovations. 20 (1), 19-21 (2025).
  20. Wagenaar, A., Wiegerinck, R. F., Heijnen, V. V. T., Post, M. J. Percutaneous microembolization of the left coronary artery to model ischemic heart disease in rats. Lab Animal. 45 (1), 20-27 (2016).
  21. Kainuma, S., et al. Influence of coronary architecture on the variability in myocardial infarction induced by coronary ligation in rats. PLoS One. 2 (8), e0183323(2017).
  22. Chen, J., Ceholski, D. K., Liang, L., Hajjar, R. Abstract 130: The Diversity of Coronary Artery and Myocardial Infarction in Mice. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 37 (Suppl_1), A130(2021).
  23. Lysenko, A. V., Salagaev, G. I., Lednev, P. V., Belov, Y. V. The results of coronary artery bypass grafting by using of surgical microscope. Pirogov J Surg. 6, 5-10 (2019).
  24. Guo, Y., et al. Genetic background, gender, age, body temperature, and arterial blood pH have a major impact on myocardial infarct size in the mouse and need to be carefully measured and/or taken into account: results of a comprehensive analysis of determinants of infarct size in 1,074 mice. Basic Res Cardiol. 107 (5), 288(2012).

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

再版と許可

このJoVE記事のテキストまたは図の再利用許可をリクエスト

許可をリクエスト

タグ

動画は近日公開

関連記事