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方法論記事

若年ランドレース豚における左心室補助装置(LVAD)の移植:小児心不全のLVAD移植モデル

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DOI:

10.3791/69151

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2026年1月16日

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Cardiac Surgery, Fuwai Hospital, National Center for Cardiovascular Diseases, Chinese Academy of Medical Sciences and Peking Union Medical College, 2Beijing Key Laboratory of Preclinical Research and Evaluation for Cardiovascular Implant Materials, Fuwai Hospital, National Center for Cardiovascular Diseases, Chinese Academy of Medical Sciences and Peking Union Medical College, 3Guangzhou First People's Hospital, The Second Affiliated Hospital of South China University of Technology, 4Department of Cardiac Surgery, Fuwai Yunnan Hospital, Chinese Academy of Medical Sciences, Affiliated Cardiovascular Hospital of Kunming Medical University, 5State Key Laboratory of Cardiovascular Disease, Fuwai Hospital, National Center for Cardiovascular Diseases, Chinese Academy of Medical Sciences and Peking Union Medical College, 6Shenzhen Key Laboratory of Cardiovascular Disease, Fuwai Hospital, Chinese Academy of Medical Sciences, 7Sanya Institute of China Agricultural University

* These authors contributed equally

この記事について

サマリー

この記事では、子豚に左心室補助装置(LVAD)を埋め込むためのプロトコルを紹介します。このモデルは、子どもにおけるLVADの埋め込みを研究し、LVAD治療における心室逆再構築のメカニズムを明らかにする強力な方法を示しています。

要約

小児左心室補助装置(LVAD)埋め込みモデルが確立され、小児LVADの支持をシミュレートし、心臓逆再構築のメカニズムを研究しました。心不全(HF)は世界的に広く見られる心血管疾患です。LVADの移植はHF治療に不可欠な方法です。しかし、既存の小児LVAD移植モデルは未発達であり、特に小児においてはLVAD治療による心室逆再構築のメカニズムは不明でしたが、標的となる可能性のある研究は多く行われています。したがって、特に子どもにおいてそのメカニズムを調べる必要があります。良いモデルは、新しい小児LVADの機能を検証し、その主要メカニズムを明らかにするための基盤となります。私たちは、小児LVADの安全性と有効性を仮定できる若年型ランドレース豚のLVAD移植モデルを確立しました。LVADを埋め込みた後、LVADポンプは1か月以上にわたり安定した途切れのない血流を維持しました。さらに、生命兆候は血行動態を含め安定しており、理想的な正常範囲内だった。このモデルは、LVAD埋め込み後の臨床患者の血行動態状態を正確に再現します。LVAD埋め込み後の連続的な変化を追跡するために使用できます。同時に、小児LVAD移植の反応性や安全性を開示するためにも利用されます。このプロトコルは、小児LVAD移植研究のための統一モデルを構築するための簡単かつ標準的な一般プロセスです。

概要

LVAD療法は心不全患者の生存率を向上させ、心臓移植への架け橋として機能します。LVADは成人で数十年にわたり使用されており、逆心筋リモデリングを促進することで心機能の回復に寄与すると考えられています。過去の研究は成人のLVAD移植患者に焦点を当てていました。2.しかし、LVAD治療における詳細な逆分子メカニズムは、子ども3において依然として明確ではありませんでした。したがって、逆再モデルをもたらすLVAD治療機構研究の良いモデルが必要です。マウスモデルは心血管疾患の薬剤評価やデバイス開発に広く使われていますが、マウスの免疫系、心筋収縮力、血行動態、代謝は人間とはかなり異なります。さらに、マウスの安静時心拍数は1分間に500〜600回に達し、これは人間の6〜10倍に相当します。心室補助装置を埋め込むには速すぎます。さらに、マウスの左心室と血管の大きさは非常に小さいです。十分に細く、柔軟で生体適合性があり、十分な流量と低い抵抗を保証できるパイプを設計・埋め込むことは非常に困難です。したがって、人間をより代表する動物モデルの開発が必要です。循環系の観点からは、豚は人間と非常によく似ており、人間の循環系疾患や器具移植研究の良いモデル動物となり得ます。また、豚のモデルは心室補助装置の前臨床的トランスレーショナル研究にも広く用いられています。当プロトコルは若いランドレース豚における新しい小児LVAD移植モデルを確立しました。

さらに、小児心不全(PHF)は10万人あたり0.87〜7.4人に影響を及ぼします。心臓移植(HT)はHF治療のゴールドスタンダードですが、すぐにドナー心臓を得られない子どももいます。そのため、HFの子どもの生命維持には小児LVADの埋め込みが必要です。小児科ではLVADの使用が増加していますが、これらの患者は複雑で、房室ブロック7の治療が必要になることもあります。さらに、HF児童に適した小児LVADは存在せず、過去の臨床結果では大出血、脳卒中率、感染、腎機能障害の発生率が成人より高かったことが示されました8。過去の短期臨床試験では、小児用LVADの使用が虚血性脳卒中や重度の不整脈などの問題を引き起こしており、これらは小児LVADのさらなる最適化が必要であることを示しています。したがって、子どものLVAD移植モデルを構築する必要があります。これは新しいLVAD試験や逆リモデリング機構の研究において重要なモデルとなり得ます。若いランドレース豚は比較的小型で、心重は約100gで、子どもとほぼ同程度です。これらは、子ども向けに特別に設計された埋め込み型心室補助装置の安全性と有効性を評価するために使用できます。したがって、若いランドレースは小児LVAD移植研究に適した株です。

本記事では、若いランドレースのLVAD移植モデルを提供しました。LVAD逆再構築機構のメカニズムを明らかにし、小児LVAD移植の安全性と有効性を評価するのに適したモデルとなり得ます。

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プロトコル

豚を対象としたすべての処置は、中国医学科学院福外病院の施設動物ケア・利用委員会(IACUC)によって承認されています(倫理承認番号:0109-1-35-ZX(X)-5)。すべての実験はARRIVEガイドラインに従って行われました。実験動物である3か月齢の雄の幼体陸性豚(30〜35kg)は、環境に適応しストレス軽減のために、事前にフワイ病院動物センターの実験施設に収容・隔離されました。動物は術前検査を行い、手術前の健康状態を確認し、異常な行動特徴、異常な症状、または兆候があれば実験から除外されました。実験動物は断食され、心臓移植および検査前の飲酒は動物実験センターの通常の手順に従って禁止されていました。

1. 実験動物の術前管理および準備

  1. 動物は12時間断食し、手術前には4時間水分を断ち切ります。
  2. 全身麻酔を誘導し、ケタミン10-20 mg/kg、筋肉内注射を行います。
  3. 耳静脈への静脈アクセスを確立します。
    1. 耳の付け根に止血帯をしっかり巻いて静脈を腫らします。
    2. 利き手でない方の手で耳を伸ばし、安定させてください。利き手でカテーテル針を鉛筆のように持ち、皮膚に対して15〜30°の角度で面取りします。
    3. 皮膚と静脈壁を一気に貫通します。
    4. チャンバー内でフラッシュバック血液を観察したら、全体をさらに1〜2mm進めます。次に、スタイレット(金属針)を安定させ、プラスチックカテーテルを完全に血管内に挿入します。
    5. カテーテルの先端の皮膚に圧迫を加えて出血を防ぎ、スタイレットを素早く抜き、鋭い容器に保管してください。すぐにヘパリンキャップまたはストップコックを接続してください。
    6. 耳の付け根から止血帯を外してください。注射器で吸引して血液の回復を確認し、血管内位置を確認します。ゆっくりと1〜2mLの生理食塩水で洗浄します。部位の周囲に腫れがないか観察し、漏出を示してください。
    7. 耳全体をゆるく包帯で巻き、耳先がしっかり露出して虚血の有無をモニターできるようにします。
  4. プロポフォール(2-4 mg/kg)を静脈投与し、気管挿管を行います。
    1. 適切なサイズの気管内チューブ、喉頭鏡(直刃)、スタイレット、注射器、潤滑剤、咬合ブロック/ロールガーゼ、固定テープ、聴診器を確認し準備してください。
    2. 豚を安定した背側横たわりの姿勢に置きます。首を伸ばし、頭を後ろに傾けます。
    3. 可能であれば、マスク で 3〜5分間100%酸素を供給してください。
    4. 喉頭鏡の刃を口の右側の関節に挿入し、舌を左に押し出しながら前方に進めます。
    5. 刃を舌の中央線に沿って進めます。喉頭蓋を特定し、刃先で優しく喉頭蓋を持ち上げて押し下げ、声門(垂直の切れ目)を露出させます。
    6. 声門が開く(吸気時)に気管内チューブ(使用時はスタイレット付き)を右の閉絡から気管内へと進めます。
    7. チューブが進んだら安定させ、慎重にスタイレットを外します。
    8. チューブ内の結露を探し、チューブの開口部で呼気が出ているかを探ってください。
    9. チューブのカフをシリンジで空気で膨らませ、チューブ周辺の漏れが塞がれるまで続けます。
    10. カプノグラフを接続し、規則的なEtCO2 波形の存在は気管の位置を確定させます。
    11. チューブをバイトブロックに結び、テープで下顎または上顎骨にしっかりと固定します。
    12. 気管内チューブを麻酔装置回路に接続してください。気管挿管後、動物を手術室に移します。
  5. 筋弛緩剤:0.5 mg/kgのアトラクリウムを点滴ボーラス後、点滴は5〜10 μg/kg/minに維持します。
  6. 維持麻酔:吸入性イソフルランを2〜3%投与し、デキスメデトミジン1 U/kg、プロポフォール1-2 mg/kg/hで維持。筋弛緩剤としてスキニルコリン2 mg/kgを使用(豚はシスベンゼンに感受性がありません)。
  7. 中心静脈圧(CVP)を監視するために前腔静脈穿刺を行います。
    1. 胸鎖乳突筋の前縁と気管の間の頸静脈溝を触診します。
    2. 下顎角と胸骨をつなぐラインの上部と中間の3分の1の接合部に3〜4cmの縦切開を入れます。
    3. 皮膚と皮下筋膜を層状に鋭く切開します。
    4. 頸動脈鞘を露出させるために、板筋を鈍的に解離します。
    5. ピーナッツ解剖器を使って頸静脈の1〜2cmの区画を動員します。
    6. 孤立した静脈節の下に2本の結紮(牽引用に近位結紮、永久結紮用に遠位結紮)を通します。
    7. 虹彩ハサミを使って結紮間の前静脈壁にV字型の切開をして静脈切開を行います。
    8. カテーテルを直接視覚化しながらベベルダウン挿入し、腔内内の挿入を確保します。
    9. カテーテルを15〜20cm頭状に進め、上大静脈(SVC)に到達します。
    10. 暗色静脈血を吸引して位置を確認します。
    11. 固定翼を3-0シルクで皮下組織に縫合します。
    12. 傷を層状に閉鎖します(筋膜:吸収性縫合、皮膚:吸収性のない断続性)。
    13. CVPモニタリングセットアップ:カテーテル、3ウェイストップコック、圧力トランスデューサー、モニターの順に接続してください。
    14. トランスデューサーを胸骨角度のレベルでゼロにし、連続CVP波形モニタリングを開始します。
  8. 3誘導心電図を接続し、検査全体で心電図を検出してください。
  9. 必要に応じて血圧測定のための大腿動脈アクセスを確立します。
    1. 大腿動脈脈拍は、前上腸骨棘と恥骨結節をつなぐ線の中央点から約2〜3cm下に位置します。
    2. 大腿動脈脈の軸に沿って4〜5cmの縦切開を入れます。
    3. 皮膚と皮下脂肪を切開し、筋膜を鈍く剥離します。
    4. 大腿動脈を露出させるために大腿骨鞘を切開し、大腿動脈の2〜3cmの区間を動員します。
    5. 近位部と遠位部に微小血管クランプを装着します。
    6. 動脈周囲の50%の横動脈切開術を作成します。
    7. カテーテルのベベルアップを30°に挿入します。
    8. カテーテルを大動脈の方へ8〜10cm進めます。
    9. 鮮やかな赤い血液の脈動性出血を確認しろ。
    10. カテーテル固定翼を5-0プロリーン縫合糸で深筋膜に縫合します。
    11. 傷を何層にも分けて閉じてください。
    12. 次の順番で接続してください:カテーテル、3ウェイストップコック、圧力トランスデューサー、モニター。
    13. トランスデューサーは右心房の高さ(第4肋間間/腋中線)に位置します。
    14. ゼロ校正を行い、連続圧力監視を開始します。

2. LVADの埋め込み

  1. 仰向け姿勢で正中開胸術を行います。心膜を吊り下げて固定し、心臓を露出させます。
  2. ヘパリン化:中心静脈カテーテル を通じて ナトリウムヘパリン注射(100 U/kg)を投与します。注射後3〜5分後に動脈血を採取し、活性凝固時間(ACT)を測定します。ACT値は心肺バイパス(CPB)設置を開始する前に>480秒に達し維持する必要があります。
  3. 心肺バイパス装置の設置
    1. 心肺バイパス(CPB)回路チューブを接続した後、準備済みのプライミング溶液(乳酸リンガーナトリウム注射:テトラスパン6%=2:1、ヘパリン添加:1 mLの総プライミング容積あたり2 - 4 IUヘパリン、炭酸水素ナトリウム:1000 mLのプライミング容積あたり5〜10 mmolなど)でシステムをプライミングします。
    2. 大動脈前壁の選定されたカニュレーション部位に、2本のパースストリング縫合を両腕縫合糸で挿入します。
    3. 財布紐の縫合糸の中心を切開してください。22°Fの大動脈カニューレを挿入します。バッグ紐の縫合糸をしっかり結び、カニューレを固定して止血を確保してください。
    4. カニューレの遠位端を心肺バイパス装置の動脈ラインに接続します。
    5. 右心房付属肢のカニュレーション部位を特定し、選択した部位に単一の注力された両腕縫合糸を挿入します。
    6. バッグ紐縫合の中心部をメスの刃で切開します。26°Fの静脈カニューレを挿入し、バッグストリングの縫合糸をカニューレの周りにしっかりと締めます。
    7. カニューレを心肺バイパス装置の静脈ラインに接続します。
  4. 背後から皮下トンネルを通してLVAD信号線を通し、コントローラーに接続して、豚が信号線に擦れて起きた後に外れないようにしてください。
    1. 信号線がピッグバックの側面に出る地点を中心線から3〜5cm離れた位置でマークします。
    2. 皮膚に切開を入れてポイントを作ります。血管鉗子を用いて、左第4肋間隙に向かう皮下組織を鈍く剥離します。
    3. 金属の先端を使って信号線を皮下トンネル内に導きます。外側の端はコントローラーに接続され、内側の端はLVADを接続するためのバックアップとして使われます。
  5. 超音波検査で僧帽弁の位置と方向を特定してください。
    1. 無菌高周波リニアアレイプローブ(7-10 MHz)を左心室頂点の非血管帯に優しく位置付けし、主要なイメージング面を取得します。
    2. 左心室長軸図では、前僧帽弁小葉(A2/A3セグメント)と後僧帽弁小葉(P2/P3セグメント)の間の共嵌帯を局在します。
    3. 修正された頂端4室ビューでは、右心室自由壁に沿ってプローブの角度を調整し、僧帽弁のアプテーションライン全体を可視化します。
    4. 像を拡張中点で固定し、前僧帽弁の葉片自由縁の中央点から提案されたLVAD流入カニューレの中心までの垂直距離(> 15 mm)を測定します。
  6. LVADが人工血管にしっかり接続されていることを事前に確認してください。生理食塩水での検査により、LVADが正常に機能し、人工血管内に漏れがないことを確認します。
  7. 無菌の外科用マーカーを使って、心臓の頂点にある尖りリングの固定位置を描いてください。
  8. トップリングは5-0の縫合糸とガスケットで頂点位置で固定します。
  9. 頭頂リング内の心筋を頂端パンチで除去し、ピンセットとハサミでトリミングして、破片が心腔内に落ちるのを防ぎます。
  10. LVADポンプの空気をすべて排出するには、LVADを生理食塩水に浸し、ゆっくりと走らせてから生理食塩水で満たします。
  11. 人工血液を遮断して空気の侵入を防ぎます。
  12. LVADポンプヘッドを上部リングに挿入し、ポンプヘッドが心腔内に入るようにしてください。ロックをしっかり締め、トップリングクランプを外してください。
  13. 人工血管(直径:8 mm)の適切な長さをLVADポンプヘッドから上行大動脈まで(15〜20 cm)決定します。
  14. 上行大動脈に前方に部分閉塞クランプを当てます。
  15. 冠動脈開口から1cm先端にメスの刃で最初の刺し切開を行います。
  16. はさみで切開部を楕円形に伸ばします。
  17. 人工血管の歪みを防ぐために、斜めの開口部(約30°)を切り取り、上行大動脈の末端を吻合します。
    1. 後壁(6時の位置):注ぎ糸を挿入します。
    2. 前壁(12時方向):簡単な中断縫合を挿入します。
    3. 残りの周囲を連続縫合で完成させ、吻合部を外科的結び目で固定します。
      注意:血管移植片に10%余裕を残し、過度な緊張を防ぎ、移植片がねじれず曲がりにくい状態を保つようにしてください。
  18. 出血がないか確認し、さらなる修復と縫合をしてください。
  19. 超音波プローブを右心房の表面に置き、LVADポンプヘッドの位置を観察してポンプの位置が正しいか(LVADの入口ポートが三尖弁に直接向いている)を確認する超音波検査を行います。
  20. LVADコントローラーを目標回転速度(rpm)と流量を達成するようにプログラムする:豚の体重と心拍出量に応じて適切な回転速度と流量を調整します。流量は1.0 L/minから徐々に増やし、血圧を安定させてください。
  21. 超音波プローブを上行大動脈に当てて血流を調べます。人工血管内の血流が滑らかで、大動脈に大きな乱流がないことを確認してください。
  22. 心臓の左右の各スペースにドレナージチューブを埋め込み、外部の負圧吸引ボトルを接続します。
  23. 胸骨を整え、胸の層を一層ずつ閉じます。
    1. 胸骨に5本の5-0ステンレス製胸骨ワイヤーを18Gの針ガイドで通し、肋間間に1本ずつ通します。ワイヤーを剣骨から頭状方向に順番かつきつくねじります。
    2. 大胸筋と筋膜を連続した3-0ビクリル縫合で近似します。
    3. 皮下組織を埋設した連続2-0モノクリル縫合糸で閉じます。
    4. 4-0ナイロンの断続垂直マットレス縫合で皮膚を再現します。
    5. 切開部を無菌技術に従ってポビドンヨード溶液で消毒します。

3. 術後ケア

  1. LVAD移植手術後は、ICUに移して経過観察を行います。毎日、血圧やLVADパラメータを含む摂取量と排出量を記録してください。豚にプロポフォールの静脈内点滴で麻酔し、ドパミン、イソプロテレノール、ノルエピネフリンなどの血管活性薬の投与を調整して術後数日間の血行動態を安定させます。
  2. 術後鎮痛治療:手術後0〜72時間、メロキシカムを皮下注射で0.4 mg/kgを24時間ごとに投与。72時間から7日間、メロキシカムを24時間ごとに経口投与します。
  3. 血管活性剤を使用し、適切なLVAD流量(正常心拍出量の1/3〜1/2)を調整して、豚の正常な血流動態を維持します。
    注意:LVADの信号線をよく観察し、豚に踏まれたり絡まったりしないように注意してください。
  4. 術後初日、三日目、七日目、二週目、そして週に一度、心臓超音波検査を実施。心臓の周りにほとんど液体がない場合は、排液管を取り外してください。
  5. 術後抗凝固治療のレジメン:静脈カテーテルから5mLの注射器を使って動脈血を採取し、ACTおよび国際正規化比率(INR)モニタリングを行います。最初の3日間は、ACTを約150〜200秒で維持するためにヘパリンを静脈内輸注します。3日目からは、豚にワルファリン(0.15〜0.2 mg/kg/d)を経口投与し、INRを1.5から2の間に保つようにしてください。INRが1.5に達したらヘパリンを中止してください。
  6. 術後の抗感染治療計画:セファゾリン(25 mg/kg、8時間ごと)を5〜7日間投与します。
  7. 術後のLVAD制御およびデータ収集:有線のLVAD制御システムを使用しているため、信号線はピッグの後部から出てモニターコンピュータに接続されます。したがって、手術後は信号線がケージの上から出て、長期的な制御とデータ収集のために緩めたままにしてください。これは、豚の動きによって信号線が外れるのを防ぐためです。

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結果

小児のLVAD移植モデルを確立するために、このプロトコルを3か月齢の若いランドレース(体重33.8kg)オスに適用し、手術後4週間で体重が2.6kg増加しました。ランドレース豚は通常、約1歳で性的成熟に達します。つまり、完全に若い豚です。図1Aが示すように、私たちはプロトコルに従ってLVADの埋め込み手術を完了しました。術前12誘導心電図(ECG)の結果が示すように、手術前の心電図は正常でした(図1B)。術前心エコー検査では、左右心室ともに正常な心機能が認められ、LVEFおよびLVFSはそれぞれ62%と26%となっています(図1C、図2A、B)。術前の血液検査および生化学的検査で豚はすべて正常であることが示されました(

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ディスカッション

若いランドレースのLVAD移植モデルは、逆再モデルをもたらすLVADの詳細なメカニズムを研究する方法を提供しました。LVAD埋め込み後の心筋の連続的な動的変化を異なる時期に明らかにするために用いられます。さらに、同じ動物の心筋変化を追跡するための心筋生検も利用可能であり、動物の使用を減らす可能性があります。さらに、生後3か月の若いランドレースは子どもと同じ年齢であり、これは子どものLVAD移植の優れたモデルです。このモデルは小児LVAD研究における重要なギャップを埋めています。このモデルは少なくとも3つの側面で使用可能です:(1) LVADの機構研究による心室逆再構築;(2) 小児の心臓反応性とLVAD移植の安全性;(3) LVAD関連治療のための新しい器具または薬剤評価。

このプロトコルにはいくつかの重要なステップがありました。まず、これは子どものLVAD移植研究のためのものなので、豚の品種と年齢が不可欠です。生後3か月の若いランドレース豚は比較的小型で、心重は約100gで、子どもとほぼ同じです。次に、サイズと出...

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開示事項

著者は利益相反を申告する必要はありません。

謝辞

本研究は中国国家自然科学基金(82125004;江平・宋氏より)の後援を受け、小児特異的植込み型心室補助装置の大型動物実験の評価および臨床的突破口の前臨床確認および小児末期心不全の診断・治療規範の確立(2023YFC2706204)の支援を受けました。中国科学技術部国家重点研究開発プログラムの前沿バイオテクノロジー重点プロジェクト(2023YFC3404300、江平宋へ)、中国科学技術部特別プロジェクト(心血管疾病国家重点研究所、扶衛病院、中国医学科学院支援、2024GZZD-03、江平宋へ)。

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
10度大動脈クロスクランプシノビューCP40431-19大動脈閉塞
10度大動脈クロスクランプシノビューCP40431-19大動脈閉塞
30度アーチ枝血管クランプシノビューCP40432-19
45度大動脈クロスクランプシノビューCP40044-18
ACT-Kカートリッジアボット03P74-25ACTモニタリング
ACT-LR試験管メドトロニック809ACTモニタリング
アフィニティ融合酸素システムメドトロニックBB841心肺バイパス
麻酔装置マインドレイA9麻酔およびその他の治療
アチカルリング(縫製カフス)コー・ハート-埋め込み部品。心臓の頂点に縫合し、心臓へのポンプ接続の支えと密閉を図っています。
動脈カニューレメドトロニック18Fr心肺バイパス
アトラクリウム恒瑞製薬-麻酔およびその他の治療
外傷性平らな鉗子SureMedGF04021-25
外傷性平らな鉗子SureMedGF04021-25
バランスハンドル型ペン式マイクロサージカルピンセットシノビューFC12010-21
幼鳥ランドレース豚中国科学院動物学研究所、北方大型動物研究施設-実験動物
血液ガス分析装置電子診断PT1000麻酔およびその他の治療
ケーブルプラーコー・ハート-外科的補助品だ。手術中に経皮的ケーブルを体から引き抜くために使用されました。
心肺バイパス回路メドトロニックB-HL-159心肺バイパス
中心静脈カテーテル百和医療-麻酔およびその他の治療
チャージャーベースコー・ハート-外部部品。バッテリーを充電します。
CoaguChek XS PTテストストリップロッシュ4015630936854 (ワン)INR監視
通信アダプターコー・ハート-オプションの外部部品で、再利用可能。モニターとコントローラー間の通信接続を可能にします。
コネクタプロテクターコー・ハート-外部部品。経皮ケーブルとコントローラーケーブルの接続を強化し、コネクターの回転や緩みを防ぐために使用されます。
コネクターシールスリーブコー・ハート-外科的補助品だ。手術中にケーブルプラーと経皮的ケーブルを接続し、シールの完全性を確保するために使用されます。
コントローラーコー・ハート-外部部品。ポンプの動作に接続・監視し、異常に対する警報機能を提供します。
コアリングナイフコー・ハート-外科的補助品だ。手術中に心臓頂点に開口部を作るために使用されました。
湾曲型鉗子SureMedGC01002-16
湾曲型鉗子SureMedGC01002-12
湾曲型鉗子SureMedGC01002-16
使い捨て血液マイクロ塞栓フィルターサンシンFAF-2心肺バイパス
使い捨て血液貯留フィルターサンシンFCR300K心肺バイパス
使い捨て心筋麻痺投与システムメドトロニックXP41心肺バイパス
ドーパミン九安製薬-麻酔およびその他の治療
気管内チューブ雅新薬YS-0000麻酔およびその他の治療
エピネフリン金耀製薬-麻酔およびその他の治療
細かい解離鉗子SureMedGC01090-20
細かい解離鉗子SureMedGC01090-20
心肺機械リヴァノヴァシーズン5心肺バイパス
ヘパリン北華製薬-麻酔およびその他の治療
アイスバケツSureMedGQ13018-00D
アイスバケツSureMedGQ13018-00D
注入ポンプシノMDTSN-C8麻酔およびその他の治療
INRatio PT/INRテストストリップヘモセンス参考文献:0100071 INR監視
静脈内カテーテルKDL16G-26G麻酔およびその他の治療
イソフルラン魯南製薬-麻酔およびその他の治療
イソプロテレノールハーベスト・ファーマシューティカル-麻酔およびその他の治療
乳酸リンガー溶液ケルン製薬-麻酔およびその他の治療
大きな盆地SureMedGQ13033-00D
大きな盆地SureMedGQ13033-00D
喉頭鏡ハンフェイルTD-C-III麻酔およびその他の治療
塩酸リドカイン注射ケルン製薬株式会社H20057816
硫酸マグネシウム注射Zdjt製薬株式会社H20051792
医療用電気胸鋸景東西集HF-X01
医療用胸骨ノコギリ、電動胸骨ノコギリ景東西集HF-X01
中型胸骨リトラクターSureMedGR04130-00
修正セントトーマスソリューション自力で成り上がった-麻酔およびその他の治療
モニター/コンピューターコー・ハート-オプションの外部部品で、再利用可能。コントローラーと心室補助ポンプに接続してセットアップと操作を行います。
マルチパラメータモニターマインドレイベノヴァリエーション N17麻酔およびその他の治療
バッグストリング縫合用のニードルパッサーSureMedGR04074-00
ノルエピネフリンハーベスト・ファーマシューティカル-麻酔およびその他の治療
流出カニューレコー・ハート-埋め込み部品。人工船に固定接続し、保護を提供します。
PCL ACTテストカートリッジ計測ラボ257
小児胸骨リトラクターSureMedGR04114-00
塩化カリウム注入ケルン製薬株式会社H42021164
電源アダプターコー・ハート-外部部品。左心室支援システムへの電源接続を提供します。
プロタミン硫酸塩ユーケア製薬-
ポースストリング縫合イントロデューサーSureMedGR04074-00
充電式リチウムバッテリーパックコー・ハート-外部部品。左心室補助システム(LVAS)に電力を供給します。
レサノ外傷性マジックピンセットシノビューFC25501-23
直角鉗子SureMedGC01110-14
直角鉗子SureMedGC01089-18
直角クランプSureMedGC01110-14
直角クランプSureMedGC01089-18
小さな盆地SureMed-
重炭酸ナトリウム注入ケルン製薬株式会社H20043739
乳酸ナトリウムリンガー注射浙江天瑞製薬H20033783
胸骨リトラクター(中サイズ)SureMedGR04130-00
ストレートピンセットSureMedGC01001-12
ストレートピンセットSureMedGC01001-16
ストレートピンセットSureMedGC01001-12
ストレートピンセットSureMedGC01001-16
縫合 5-0 プロリーン BBエティコン-
縫合 プロリーン・ブルーム 4-0 SH 36エティコン-
縫合 2-0 プロリーン・ブルー M SHエティコン-
縫合 BB 4-0 プロリーンエティコン-
温度プローブ3歳-麻酔およびその他の治療
テトラスパン 6%B. ブラウンL6511(エコバッグ)
扁桃ピンセットSureMedGC09009-20D
タングステンカーバイドリングハンドルニードルホルダーSureMedGN01013-22K
タングステンカーバイドリングハンドルニードルホルダーSureMedGN01013-22K
タングステンカーバイドリングハンドルニードルホルダーSureMedGN01010-22K
静脈カニューレメドトロニック28フラン、32フラン心肺バイパス
人工呼吸器マインドレイSV300麻酔およびその他の治療
心室補助ポンプコー・ハート-一種の磁気浮遊遠心ポンプだ。埋め込み部品。心臓に埋め込まれて血行を助ける。

参考文献

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