高分解能血清モノクローナルタンパク質検出における毛細管電気泳動の高度な応用

サマリー

ここでは、毛細管電気泳動を用いた高解像度血清タンパク質解析のプロトコルを紹介します。高電圧電場下では、血清タンパク質は電荷と電気泳動の移動度に基づいて毛細管を通過します。その結果、電気フェログラムによりモノクローナルタンパク質ピークの検出、局在、定量が可能になります。

要約

モノクローナル免疫グロブリンは、Mタンパク質またはパラプロテインとも呼ばれ、形質細胞またはBリンパ球のクローナル増殖によって産生され、モノクローナルガンモパチーの重要なバイオマーカーとして機能します。血清Mタンパク質の正確な検出と定量は、早期疾患診断、臨床分類、治療モニタリングに不可欠です。このプロトコルは、血清タンパク質の高解像度分離のための毛細管電気泳動(CE)を用いた方法を説明しています。タンパク質は高電圧電気泳動のアルカリ緩衝材内で分離され、紫外線吸収によって検出され、異常なモノクローナルタンパク質ピークの明確な可視化と定量を可能にする電気光泳を生成します。従来の手法と比べて、CEはベータ領域の解像度を向上させ、最小限のサンプル取り扱いで自動化かつ迅速な解析を可能にします。5つの代表的なエレクトロフェログラムでは、β1、β2、γ領域におけるMタンパク質の移動が示され、Mタンパク質レベルは0、44.1%(45.8 g/L)、10.5%(8.6 g/L)、35.5%(28.4 g/L)、そして41.3%(46.0 g/L)と12.4%(13.8 g/L)の二重ピークを示しました。700件の臨床血清サンプルを用いた後ろ向き研究では、CEは51.86%の陽性検出率を達成し、免疫固定電気泳動(IFE)では52.86%を上回っています。IFEを基準法として用いるCEは感度92.70%、特異度93.94%を示しました。これらの発見により、CEは臨床実験室における血清Mタンパク質のスクリーニングおよび定量において迅速かつ自動化されたアプローチであることが確認されました。

概要

Mタンパク質関連疾患は、血清および/または尿中にモノクローナル免疫グロブリン(Mタンパク質)が存在することが特徴です。これらのタンパク質は通常、クローン形質細胞またはBリンパ球によって分泌され、主に悪性形質細胞異常症や良性モノクローナルガンモパチーと関連しています^1,2。これらの疾患の臨床スペクトルには、意義不明のモノクローナルガンモパチーシス(MGUS)、単性形質細胞腫(SPC)、くすぶり多発性骨髄腫(SMM)、多発性骨髄腫(MM)、形質細胞白血病(PCL)、ヴァルデンストロームマクログロブリン血症(WM)、全身性ライトチェーンアミロイドーシス(AL)、B細胞非ホジキンリンパ腫(B-NHL)、およびその他のB細胞リンパ増殖障害(LPD)が含まれます³.スペインで行われた回顧的研究によると、これらの疾患の中でMGUSが最も多く、54.1%を占め、次いでMM(31.3%)、その他の悪性ギャモパチー(14.6%)が続きます^4。また、Mタンパク質はネフロート症候群5のような非腫瘍性疾患に対しても産生される^{可能性があることに注意}が必要です。

Mタンパク質検査は、Mタンパク質関連疾患の診断とモニタリングにおいて重要な役割を果たし^ます。しかし、早期診断は依然として臨床的な課題であり、MM患者は初期段階で無症状であることが多く、比較的進行期に診断が遅れることがあります。MGUS患者の約1%が毎年悪性疾患に進行し、最も一般的にはMM、WM、またはSPC⁷に進みます。ほとんどのMM症例はMGUSから進化すると考えられていますが、過去にMGUSと診断された経歴があるMM患者は10%未満です。したがって、血清および/または尿中のMタンパク質を適時に特定することは、これらの疾患の早期診断に貴重な手がかりを提供し、患者の生存率と予後の向上に不可欠です。研究によると、積極的スクリーニングで特定されたMGUS患者は、偶然に診断された患者よりも合併症が少ないことが示されています⁸。治療モニタリング中、Mタンパク質のアイソタイプおよび電気泳動移動パターンに関する情報は、元のモノクローナルタンパク質の再発とオリゴクローナルバンドまたは二次反応性Mタンパク質の出現を区別するために^{不可欠です。}新規Mタンパク質の出現は、自己幹細胞移植後によく観察されるもので、ほとんどの患者にとって良好な予後指標と見なされています¹⁰。この観察と一致して、比較生存率データでは、二次Mタンパク質を発症した患者の中央値全生存期間は115.3か月、¹¹か月でない患者の31.0ヶ月と対照的です。

タンパク質電気泳動は非常に高度な分析技術です。血清Mタンパク質検出には、血清タンパク質電気泳動(SPE)、IFE、毛細血管電気泳動免疫型(IT)、遊離光鎖(FLC)アッセイ、重鎖および軽鎖(HLC)検出、質量分析法(MS)など多様な方法が利用可能です。それぞれのアプローチは独自の利点を持ちながらも、固有の制約に直面しています。SPEはさらにアガロースゲル電気泳動(AGE)とCEに細分化されます。AGEはアガロースベースの培地を使用し、迅速な分離と分析に適したシンプルでコスト効率の高い方法です。しかし、比較的低い感度と典型的な検出限界は0.3〜0.5 g/L¹²であるため、小容量または低濃度のMタンパク質の検出に失敗する可能性があります。さらに、この技術はバンドの曲げや変形に弱く、再現性が損なわれます。

IFEはMタンパク質型のゴールドスタンダードとして広く認められています。初期電気泳動の後、特異的抗体(抗IgG、抗IgA、抗IgM、κ、λ)を適用して免疫沈殿バンドを形成し、免疫グロブリン型およびライトチェーンサブタイプを同定します。IFEは0.05〜0.15 g/Lの低濃度でもMタンパク質を検出でき、SPEの10倍以上の感度を提供します。この利点にもかかわらず、Mタンパク質ポリマーを含む特定のサンプルでは、βメルカプトエタノールとの解離を確保するために専門的な前処理が必要です。不適切な治療が誤った結果をもたらす可能性があります。さらに、新規の併用療法(例:ダラツムマブ、ボルテゾミブ、デキサメタゾン、サリドマイド/レナリドマイドを含むレジメン)を受ける患者では、偽陽性IFE所見が得られる可能性があります¹³。IFEの主な制約は、Mタンパク質レベルを定量化できず、治療効果のモニタリングに適さないため、定性的な結果しか提供できないことです。¹⁴。治療を受けた患者では、成功した治療中にMタンパク質濃度が低下してもIFEの結果が陽性のままである場合があります。

これに対し、ITはキャピラリーバッファーを分離媒体として用い、従来のIFEよりも高い解像度を提供します。それにもかかわらず、このプロセスには抗血清混合などの骨の折れるサンプル前処理工程が必要であり、全体の検出ワークフローが長引いています。FLCは重鎖に結合しない免疫グロブリン軽鎖(κおよびλ)であり、血清内で「隠れた領域」エピトープを標的とした抗体を用いて直接定量され、検出限界が10〜30 mg/Lと低く、軽鎖関連疾患の検出に高い感度を提供します。MMでは、血清FLCの上昇は腫瘍負荷と相関し、免疫グロブリンよりも半減期が短いため治療反応の早期評価を可能にします¹⁵。しかし、臨床的応用は電気泳動など他の診断方法と組み合わせて、他の疾患を除外し包括的な評価を行うべきです。例えば、腎機能障害はライトチェーンレベルが誤って上昇することがあります。HLCアッセイは、免疫グロブリンの定鎖および軽鎖の両方のエピトープを標的とする抗体を用いたもう一つの定量的アプローチです。この設計により、アイソタイプ特異的免疫グロブリンペアリング(例:IgGκおよびIgGλ)の個別定量が可能となり、導出されたHLC比率はクローン性の感度指標として機能します。しかし、結果は背景のポリクローナル免疫グロブリンレベルに影響される可能性があり、複雑なMタンパク質変異を解析する際には信頼性が低い場合があります。MSは卓越した感度を持ち、Mタンパク質の詳細なプロテオーム的特徴解析を可能にします。しかし、その応用は高い機器コスト、長時間の分析手順、データ解釈に必要な専門的な知識によって制約を受けています。

CEは、弾性融融シリカ毛細管を分離チャネルとして用い、高電圧の直接電場を駆動力として用いる強力な解析分離技術です。標的分析物の電気泳動移動度や分配挙動の違いを活用し、高解像度の分離を実現します。この技術は、単一キャピラリー構成から高スループットキャピラリーアレイや小型マイクロ流体デバイスへと進化してきました。現在、その応用は医薬品分析、生体医学および臨床診断、食品安全試験、生物治療^{特性評価など}多様な分野に及び^ます。CEはMタンパク質のスクリーニングおよび定量解析において重要なツールとしてますます認識されています。これは総タンパク質に対するMタンパク質の割合を算出し、それに総タンパク質濃度を掛けて絶対Mタンパク質レベルを算出します。特に、最小限のサンプル数が特徴的で、貴重なまたは体積制限のある試料の分析に特に適しています。

CEは3つの主要な技術的利点を提供します。第一に、高い分析感度(0.1–0.5 g/L)により低濃度Mタンパク質の検出が可能となり、MGUSやライトチェーン疾患などの誤診リスクを低減します。第二に、完全自動化されたワークフローにより、従来のゲル染色法に内在する主観的な解釈誤差が排除されます。最後に、アッセイ時間は15〜20分に大幅に短縮され、従来の電気泳動で求められる60〜90分より著しく短くなります。ゾーン電気泳動と液体クロマトグラフィーの間の重要な解析技術として、CEは自由溶液中で電気泳動分離を行います。加用電場下では、タンパク質分子は主に特定のpHのアルカリバッファー内で電気浸透圧流によって分離されます。専用バッファーで希釈した後、サンプルは高電圧でキャピラリーアノードに注入され、迅速かつ効率的なタンパク質分離を開始し、その後200nmのカソードで検出されます。各分析サイクル終了後、毛細管は自動洗浄とバッファー補充を受け、次のサンプルを処理します。タンパク質分離は以下の順で行われます:ガンマグロブリン、β-2-グロブリン、β-1-グロブリン、α-2-グロブリン、α-1-グロブリン、アルブミンで、1つ以上の血清タンパク質分画の異常を特定できます。特にCEはベータ領域の解像度を高め、β-1およびβ-2のグロブリン成分に明確に分けることで、より詳細な臨床情報を提供します¹⁸。人工知能の統合と多パラメータ検出の継続的な進歩により、CEはMタンパク質検出の第一選択スクリーニングモダリティへと進化する準備が整っています。したがって、本プロトコルは、臨床サンプル中の血清モノクローナルタンパク質の迅速な検出、局在、定量解析のために毛細血管電気泳動を用いることを説明しています。

プロトコル

研究プロトコルは広東省人民病院倫理審査委員会(承認番号:KY2025-176-01)によって審査・承認されました。すべての参加者はサンプル採取前に書面によるインフォームドコンセントを提供しました。

1. 材料の準備

注意:試薬キットは2〜30°Cで保存し、保存期間は最大3年です。

1. ランニングバッファーは2〜8°Cで保存し、使用前に室温まで待ってください。一度開封すると、溶液は最大3ヶ月間安定しています。この溶液を毛細管電気泳動における血清タンパク質分離のランニングバッファーとして使用します。
   注:ランニングバッファはpH9.9±0.5で使用準備完了です。試薬キットには、血清タンパク質分離のランニングバッファーとして使用される700mLのアルカリ緩衝液が3本含まれています。
2. 使用前に75 mLの濃縮洗浄液を脱イオン水で750 mLに希釈します。希釈したすすぎ液は室温で保存してください。一度開封すると、溶液は最大3ヶ月間安定しています。この溶液を使って電気泳動後の毛細管を洗浄してください。
   注意:洗浄液には水酸化ナトリウムが含まれており、毛細血管洗浄に使用されます。
   注意:洗浄液には水酸化ナトリウムが含まれており、これは重度の火傷を引き起こす腐食性物質です。目が合った場合はすぐに十分な水ですすいで、医療機関を受診してください。皮膚や衣服が汚染された場合は、すぐに汚染された衣服を脱ぎ捨ててください。必ず適切な防護服を着用し、目や顔の保護具を着用してください。
3. 試薬カップは、元の密封パックのまま2〜30°Cの温度で清潔で乾燥した場所で保管します。試薬カップは完全自動化機器の試料希釈に使います。
4. 密閉されたフィルターは、室温(15〜30°C)の乾燥した場所で保管してください。使い捨てフィルターを使って緩衝液や脱イオン水をろ過してください。
5. 毛細管洗浄液( 材料表参照)は2〜8°Cで保存し、降水を避けてください。
   注意:毛細血管洗浄液濃縮液(1本あたり25mL)には、プロテオリシス酵素、界面活性剤、その他の添加物が含まれています。添加剤は適用濃度において無害であり、最適な性能を得るために必要です。この溶液は毛細血管の詰まりを防ぎ、最適な性能を維持します。
6. 濾過された脱イオン水を使用し、孔径≤0.45μm、導電率3μS/cm未満、抵抗率が0.33MΩを超えるものを用います。微生物の汚染を防ぐために毎日水を交換してください。この水を使って電気泳動分析装置の毛細管を洗浄します。
7. 利用可能な塩素2〜3%を含む次亜塩素酸ナトリウム溶液を準備します。この溶液はサンプルプローブ洗浄に使用し、吸着タンパク質を除去します。作動する塩素溶液は密閉容器で室温で保存します。この溶液は最大3ヶ月間安定しています。日光、熱、発火源、酸、アンモニアの近くで保存しないでください。

2. サンプル採取

1. 採血前に最低8〜12時間の断食を必ず行ってください。
2. 患者には10〜15分間、座ったか仰向けで休んでもらい、血行動態を安定させます。
3. 以下の備品を用意してください:使い捨て静脈輸血針、真空採血チューブ(血清チューブ)、止血帯、滅菌綿棒、75%アルコールまたはヨードフォー消毒液、医療用接着剤包帯、バイオハザード廃棄物容器。
   注:肘窩の正中肘窩静脈が最適な穿刺部位です。
4. 刺し傷の3〜5cm上に止血帯を当てて静脈を十分に膨らませます。
5. 皮膚を75%アルコールまたはヨードフォルで、中心から外側へ遠心螺旋状に塗り、直径≥5 cmの範囲を覆い、消毒液を自然乾燥させて再度その部位に触れないようにします。
6. ベベルを上に向けた針を皮膚に対して15〜30°の角度で持ち、皮膚と静脈壁を滑らかに刺します。
7. 血液の逆流を確認したら、針を固定し、真空管を接続します。血液を手動圧圧なしで負圧で受動的にチューブに満たし、溶血を防ぎます。
8. 採取後、まず止血帯を外し、針を優しく抜き、すぐに無菌綿棒で刺し穴を3〜5分間圧迫して止血を確保します。
9. 採取したサンプルを室温で立てて置き、血液が自然に凝固するのを待ちます。

3. サンプル品質評価

1. 遠心分離機血清は2,095 x g で室温で10分間サンプルを取る。
2. 血清サンプルを、十分な自然光の下で白地の背景のもとで厳格な視覚品質評価を受けました。
3. 溶血は上清液の色と透明度を調べて評価します。上清液が透明で黄色く見える場合、ピンクや赤色の変色は軽度から重度の溶血を示している場合、サンプルは溶血していないと評価されます。
   注意:溶血により二重α-2ゾーンが生じる可能性があります。ベータ2分率は、経年劣化や不適切に保存された血清サンプルで減少する可能性があります。
4. フィブリノーゲン干渉を検査するために、上清液内の目に見えるフィブリン鎖、血栓、ゼラチン状ネットワーク、相分離の不完全、濁り、または分析信号の不一致を確認。
   注:線維原はβ2側(肩のあたり、またはβ2側に重なって移動し、この割合が増加する場合があります)。一部のサンプル(血漿、完全に除颤されていない血清、抗凝固治療中の患者)では、フィブリノーゲンが分析を妨げ、単クローナルバンドの疑いやβ2割率の増加などの誤った解釈につながることがあります。
5. 解析で検出された溶血、線維素原干渉、その他の事前分析異常を示すサンプルは除外します。
6. 標準化された採血および処理プロトコルに従い、適切な凝固時間と標準化された遠心分離パラメータを確保し、新しい血液検体を採取します。後続検査には、透明で溶血、フィブリン、リピ血症、汚染がない状態のサンプルのみを使用してください。
7. 分離した血清サンプルはできるだけ早く室温で検査してください。即時検査ができない場合は、サンプルを2〜8°Cで最大10日間、-20°Cで最大30日間保存してください。サンプルを繰り返し冷凍・解凍しないでください。
   注意:血漿サンプルは避けてください。経年後の血漿サンプルを分析する際(推奨されません)、C3補体のような不安定な成分は時間とともに劣化するため、β2ゾーンは本質的にフィブリノーゲンに対応します。
8. 検査前に、サンプルを室温に戻し、十分に混合してください。使用前に凍結サンプルを完全に解凍していることを確認しましょう。
   注意:希釈されていない血清タンパク質サンプルを使用してください。特にクリオグロブリンやクライオゲルを含む一部の冷蔵血清は粘性や濁った状態になることがあります。追加の前処理なしでポリ免疫グロブリンを含むサンプルを直接使用してください。

4. 運用手順

1. 自動毛細管電気泳動分析装置( 材料表参照)と接続されたコンピュータシステムに電源を入れます。機器が完全に初期化されるまで待ちましょう。
   注:毛細管の長さと内径はそれぞれ17.5cmと25μmです。分離電圧は8,000〜10,000Vの範囲です。電気運動注入が用いられ、分離温度は約25°Cに維持されます。 サンプルあたりの総稼働時間は約10分です。
2. データ処理のためにコンピュータにインストールされたPHORESISソフトウェア(材料 表参照)を起動します。
3. ソフトウェアインターフェースから PROTEIN (E) 6 プログラムを選択し、ランニングバッファーボトルを機器に挿入します。
   注意:このプログラムは、血清タンパク質分画のために特別に設計された工場で校正されたプリセットプロトコルです。すべてのパラメータは機器のPHORESISソフトウェアで事前設定されており、手動で修正する必要はありません。
4. 必要に応じて、再溶解洗浄液入り試薬ボトルを機器内に置いてください。
5. 新しい試薬カップを毛細管電気泳動分析装置の自動ローディングプラットフォームに取り付けます。
6. 使用済み試薬カップのキャピラリー電気泳動分析装置の標準廃棄物処理位置に新しい廃棄物ボックスを設置します。
7. サンプルラックを右側の開口部からアナライザーに積み込みます(最大容量:15ラック)。
   注:各ラックは最大8本のサンプルチューブを収容可能です。各試験管のバーコードはラックの開口部から見える必要があります。
8. コントロールセラムはサンプルラックNo.0を使ってください。20のテストデータポイントから計算された累積平均と変動係数に基づく第三者の品質管理を利用しましょう。
9. 完成したサンプルラックを左側のアンロードトレイから外します。使用済み試薬カップが入った廃棄箱は必要に応じて取り出して捨ててください。
   注意:使用済み試薬カップには生物学的サンプルが含まれている可能性があるため、慎重に取り扱ってください。
10. 二次試薬チャンバーのS2位置にキャピラリークリーニング液を置きます。計器画面で 「メンテナンスと清掃」をクリックし、次に 「Capicleanを開始する」を選択してください。
11. 二次試薬チャンバー(T1位置)に2〜3%の次亜塩素酸ナトリウム溶液を置きます。計器画面で 「メンテナンスと清掃」をクリックし、「 除染開始」を選択してください。
    注意:毛細血管洗浄のプロセス全体は自動的に45分間行われます。
12. 掃除の手順は週に少なくとも一度は始めてください。

5. 結果分析

1. 各解析実行が終わった後、機器から生データをソフトウェアに送信して処理します。このソフトウェアは電気球状図を生成し、コンピュータ画面に表示されます。
2. 電気泳法を解析し、200nm波長の各タンパク質バンドの相対的な吸収強度をソフトウェアで定量化します。
   注:完全自動生化学分析装置で測定された総タンパク質濃度に基づき、ソフトウェアは各タンパク質バンドの濃度を計算します。
3. 生成された電気球状図を用いて視覚的評価と異常バンドの識別を行います。
   注:デフォルトでは、システムは再描画モードで電気光陰図を表示します。
4. 必要に応じて、標準モードで生データから導き出された初期電気光陰図を提示してください。
   注:毛細血管電気泳動分析装置の基準範囲は、正常なトリグリセリド値を持つ246名の健康な成人参加者(男女問わず)の統計解析によって決定されました(表1)。各研究所が独自の基準を確立することが推奨されます。

6. 機器停止

1. 各分析シーケンスの終了時に、キャピラリー電気泳動分析装置のシャットダウン手順を開始し、理想的な条件下でキャピラリーを保持します。
   1. シャットダウン手順を開始するには、メインメニューから「シャットダウン」を選択するか、アナライザー付属のシャットダウンラックを使用します。
   2. メインメニューで「シャットダウン」を押してください。画面に表示されるウィンドウで を押して手順を開始します。継続的な分析プログラムの完了と同時に自動的にシャットダウンプロセスが開始されます。
   3. シャットダウンラックには「EXTINCTION/SHUTDOWN CAPILLARYS 3 & MC」とラベルが貼られています。このラックをサンプルラックキューの最後に入れると、機器は自動的にシャットダウン手順を開始します。
      注意:シャットダウン手順が完了すると、計器は電源が切れ、画面も消えます。
2. 機器背面の物理的な電源スイッチを使ってアナライザーを電源から切り離します。
3. 2つの試薬チャンバーからすべての試薬瓶を取り出し、推奨される保管条件で保管してください。完全自動電気泳動分析装置の一般的な故障、可能な原因、解決策は 補足表1に示されています。

7. 性能パラメータ

1. 毛細血管電気泳動手順の分析感度を決定するために、ガンマ線ゾーンに異常タンパク質を含む血清サンプルの連続希釈を1.198 g/dLで準備・解析します。異常が確認できる最も高い希釈は、異常タンパク質の濃度が19 mg/dLに相当します。
   注:異常タンパク質やポリクローナル背景のガンマゾーンの位置によって検出限界は異なる場合があります。
2. 精度評価 – 内部相関
   1. サンプルの完全性を確保するために、すべての血清サンプル(正常サンプル18個、病理サンプル100個を含む)を同一方法で処理し、同じガイドラインに従って取り扱ってください。
   2. 各タンパク質分画のレベルは、分析装置の毛細管電気泳動手法で得られる電気泳動分離と、市販の他の毛細管電気泳動技術によるタンパク質解析の両方で測定します。
   3. 両方の手法から測定された値を線形回帰統計手法で解析します。得られた結果は、両手技間に完全な相関があることを示しました。

結果

各タンパク質バンドの移動位置、ピーク特性、相対的な割合は、血清タンパク質の吸収を検出することで定量的に解析されました。その後、電気泳動図で観察された異常バンドの存在とパターンに基づいて臨床解釈が行われました。血清タンパク質分数の正常移動パターンを示す代表的な毛細血管電気泳動写真は 図1に示されています。ピーク移動時間の変動は主に、患者間の生理学的差異に起因し、それが血液マトリックスの特性に影響を与えます。具体的には、血液マトリックスのイオン強度の違い、干渉成分の存在、タンパク質の翻訳後修飾がピーク移動時間の変動に寄与しています。

サンプルAでは、すべてのタンパク質バンド比が正常であり、すべての領域で異常なピークは認められませんでした。検査結果は陰性とされ、Mタンパク質関連疾患の証拠は認められませんでした(図2)。サンプルBでは、総タンパク質レベルが103.8 g/L、アルブミンは34.5 g/Lに上昇しました。β1ゾーンの割合は52.2%に増加しました。β1ゾーン...

ディスカッション

SPEは臨床実験室における基本的な診断技術であり、血清タンパク質の等電点、分子量、立体構造の違いに基づいて分離^します。本研究は、CEを用いた血清Mタンパク質の迅速な検出および定量のためのプロトコルを体系的に示します。このプロトコルは、高感度、高スループット、そして完全な自動化²⁰という中核的な利点を特徴とする、優れた解析性能を強調しています。モノクローナルであるため、Mタンパク質は通常、明確で局所的な移動パターンを示し、エレクトロフェログラムでは特徴的で鋭い均一なピークを示します。高分解能電気泳動は、β1(トランスフェリン)とβ2(C3)のグロブリン²¹を明確に分離できる能力が特徴であり、これはCEに代表される能力です。CEと従来のAGEの主な違いは、高濃度のMタンパク質がゲル上に存在した場合のタンパク質結合染料の飽和効果にあります。AGEのサンプルは、正確な定量を確保するためにより高い希釈比が必要です。

材料

この記事で使用された材料の一覧

名前	会社	カタログ番号	コメント
CAPI 3タンパク質(E)6バッファー	セビア	2503	毛細血管電気泳動における血清タンパク質分離に用いられるランニングバッファー(原稿内でランニングバッファーと呼ばれる)。
デラバージュウォッシュ溶液	セビア	2062	電気泳動後の毛細管洗浄に使われる希釈洗浄液。
試薬カップ	セビア	2582	完全自動機器のサンプル希釈用です。
フィルターキャピラリー	セビア		毛細管洗浄中にバッファー溶液や脱イオン水をろ過するために使われる使い捨てフィルター。
カピクリーン	セビア	2060	CAPILLARYS 3 OCTA機器の毛細管洗浄(原稿では毛細管洗浄液と呼ばれる)の洗浄用
次亜塩素酸ナトリウム溶液	広州化学試薬工場	1703079	サンプルプローブの洗浄用です。
脱イオン水	ワトソンズ	/	自動毛細管電気泳動分析装置での毛細管洗浄に使用されます。
ランドックス品質管理	ランドックス	HN1530	品質管理のためです。
完全自動毛細管電気泳動分析装置	セビア	毛細血管 3 八角および	高分解能かつ高スループットの血清タンパク質解析に使用される装置。
PHORESIS 9.30ソフトウェア	セビア	/	電気泳動パターンの自動取得および解析に使用されるソフトウェア。