水生生物の生態系の栄養素

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Nutrients in Aquatic Ecosystems

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10:48 min
April 30, 2023

Overview

マーガレット職人とキンバリー ・ フライ – デュポール大学のソース: 研究所

窒素とリンは、水生生物の生態系に必要な植物栄養素と過剰の原因になるので重要な水の品質の問題、両方は水質検査の一環として監視されます。

水中の窒素は、水に溶解させる藻類などによって容易に吸収される、共通のフォーム硝酸 (3) として表されます。リン測定の一般的な形式は、リン酸塩 (PO43 –) は強く堆積物の粒子に魅了し同様に水に溶解します。両方の栄養素過剰量の下、富栄養化と低酸素症 (水に低溶存酸素) につながる水の光・温度・酸素のレベルを乱すことができる水生植物の成長 (藻類ブルーム、図 1) の増加を引き起こす可能性がない生物学的活性の「デッドゾーン」を形成。硝酸塩、リンのソースには、廃水処理プラント、受精芝生と農地、不良敗血症性システム、動物肥料の流出、産業廃棄物の排出からの流出が含まれます。

Figure 1
図 1。藻類ブルーム
2011 年にこの図のように緑のスカム、エリー湖は数十年で経験している最悪の藻類ブルームでした。記録的豪雨春の雨は、ミクロシスチン シアノ バクテリアの花の生産の成長を促進、湖に肥料を洗浄しました。活気に満ちた緑のフィラメントは、北岸から延長します。

Principles

栄養分の濃度の増加を示す色強度の増加と特定の栄養素の存在下で色を変更するサンプルを引き起こす既知の化学試薬を用いる水中の硝酸態窒素とリン酸濃度を測定できます。水堆積物結合しているリン酸分子のリリースを確保するためリンのサンプルとサンプルの合計リン酸イオンの測定のためのリン酸結合を解放する熱化学的に消化されています。

試薬によって生成される色の明るさを定量化する特定の栄養素は、試薬 (硝酸塩琥珀; リン酸塩青) によって引き起こされるそれぞれの色に対応する光の波長を測定する分光光度計を使用します。分光光度計は、各サンプル色 (吸光度) によって吸収される光の量を測定する光のビームを送信します。暗い色、吸光度が高い。分光光度計、濃度既知の試金に基づく表示栄養濃度 (mg/L) に吸光度を変換します。

Procedure

1. 測定窒素サンプル

  1. 分光光度計、(ユーザー マニュアルまたは楽器メニュー) を用いた硝酸イオン プログラムを見つけるし、プログラム ・ ナンバーを入力します。
  2. サンプル チューブの 1 つに試料水を 10 mL のピペットします。サンプル チューブの 1 つにこれを注ぐ。
  3. 2 番目のサンプル チューブに繰り返します。
  4. 1 つのサンプル チューブに 1 つ硝酸試薬粉枕の内容を追加します。
  5. 両方のサンプル チューブをキャップします。
  6. 分光光度計、タイマーを押しし、試薬の反応期間を開始するを入力します。反応時間が終わるまで精力的にサンプルとタイマー ビープ音を振る。サンプルが回りだす琥珀。
  7. Enter キーを押します。第二に 5 分反応期間が開始されます。
  8. タイマー 2 回のビープ音後、糸くずペーパー タオルで 2 つのサンプル チューブの外側を拭き取る。
  9. 分光光度計に (空白) 試薬なしサンプル チューブを配置します。
  10. しっかりと周囲の光がブロックされていることを確認する計測器キャップ付けセルをカバーします。
  11. ゼロ 0.0 mg/L の読み取り用分光光度計のない3
  12. 空白セルを削除し、電池ホルダーに試薬とサンプル セルを配置します。楽器キャップ付きサンプルセルをしっかりとカバーします。
  13. 出版物を読みます。カーソルは、mg/l3N は表示されませんし、結果、右側に移動します。

2. 測定サンプルのリン

  1. 5.0 mL のピペットを使用して水のサンプルを測定します。
  2. サンプル チューブに水を注ぐ。
  3. サンプル チューブに 1 つカリウムの過硫酸塩パウダー枕ホスホン酸の内容を追加します。
  4. しっかりとチューブをキャップし、溶解するために振る。
  5. チューブ キャップの上部にラベルを付けるし、COD (化学的フード) で原子炉と 30 分の熱でチューブを配置します。
  6. 試験管ラックに配置し、部屋の温度に冷却すること。
  7. 卒業シリンダーを使用すると、2 mL 1.54 N 水酸化ナトリウムを測定します。
  8. これをサンプル管に注ぐ。キャップし、ミックスします。
  9. 分光光度計、(ユーザー マニュアルまたは楽器メニュー) とリン酸のプログラム番号を確認し、プログラム ・ ナンバーを入力します。
  10. リント フリー ペーパー タオル サンプル チューブの外側をきれいに。
  11. テスト チューブを置き、それは楽器の前面に直面して。
  12. テスト チューブのカバーを置きます。
  13. テスト チューブを取り出して、アスコルビン酸法の試薬を購入した粉末枕の内容を追加します。
  14. しっかりとキャップし、10-15 s 振る。
  15. タイマーを押すし、入力します。2 分の待機期間が開始されます。
  16. タイマーのビープ音後、糸くずペーパー タオルで試験管の外側はきれい。
  17. 楽器に楽器を正面のロゴと試験管を配置します。
  18. 試験管の上カバーを置きます。
  19. 出版物を読みます。Mg/L で結果が表示されます。

窒素とリンが必要な植物栄養素を発見した、水生生態系のただし、余分な量、彼らは重要な水品質問題を引き起こすことができます。窒素と水にリン通常それぞれ硝酸態窒素とリン酸塩の形態であります。両方の栄養分が水に溶けるし、させる藻類などによって容易に吸収されます。

硝酸塩やリン酸塩は、廃水処理プラント、受精芝生と農地、不良敗血症性システムでは、産業廃棄物排出から淡水雨水を通して水システムを入力します。余分な量の両方の栄養素は水生植物の成長と富栄養化と呼ばれる藻類の増加を引き起こす可能性が。これらの藻類は、酸素と日光に簡単にアクセスするために水の表面に住んでいます。

結果として、富栄養化は、日光と空気中の酸素にアクセスから低水位を防ぎます。藻類が死ぬとき彼らは水位低下に陥るし、分解、低酸素症、または低酸素のレベルを引き起こしているより深い水中で酸素を消費です。酸素の不足し、補給から切り離されて、深層水はデッド ゾーンになります。その結果、魚や他の生物は膨大な数で死にます。デッド ゾーンは、世界の海と湖、主に人口密度の高い都市部で普及。

このビデオは硝酸の測定と表面水のリン酸濃度の方法論を紹介し、実験室で測定のデモンストレーションします。

水中の窒素は「として-窒素」に関して報告します。フレーズ「硝酸性窒素として」は、硝酸態窒素の形で窒素の量を指します。したがって、硝酸態窒素と硝酸態窒素の分子量の比を用いて濃度硝酸性窒素として濃度を変換できます。

カドミウム除去法を用いた硝酸イオン濃度を測定します。カドミウム金属を亜硝酸塩、硝酸塩が減少し、中間のジアゾニウム塩を形成するためスルファニル酸と亜硝酸イオンが反応します。ジアゾニウム塩、ゲンチジン酸とのカップルし、琥珀色の化合物を形成します。暗いの琥珀色、サンプル中の硝酸濃度が高い。

水試料中のリンの濃度はリン酸の形でリンの量の点で同様に、報告されます。リン酸塩濃度とリン酸塩としてリン濃度の間の変換は、分子量を使用して簡単に完了できます。多くの異なる立体構造で水にリン酸塩があります。すべてリン酸塩は、酸やカリウムの過硫酸塩のサンプルを加熱することによって加水分解オルソリン酸塩にまず変換する必要があります。

アスコルビン酸/モリブデン酸メソッドを使用して、オルトリン酸濃度を計算します。オルソリン酸塩は、リン酸/モリブデン複合を生成する酸性条件でモリブデン酸ナトリウムと反応します。アスコルビン酸は、複雑な青い色の製品の生産を減らすために使用されます。光の量を測定する測色計を使用両方の実験の試薬によって生成される色の明るさを定量化する色の種によって吸収されます。吸光度が濃度に変換されます。

次の実験デモンストレーションを硝酸態窒素の分析とを用いる水試料中のリン酸濃度予混合試薬パケットこの比色法を実行します。

窒素計測を開始、硝酸塩、測色計のためのプログラムを見つけると適切なプログラム番号を入力または 420 で測定する測色計を設定 nm。10 mL のサンプル管にピペットで移しなさい水サンプルの測定し、管にラベルを付けます。2 番目の同じ管を準備し、空白としてラベルを付けます。

サンプル チューブに 1 つ予カドミウム低減法試薬パケットの内容を追加します。両方のサンプル チューブをキャップします。試薬 1 分反応期間のタイミングを開始します。チューブ積極的に振る手で反応時間が完了するまで。

ダウン チューブをセットし、窒素を減らすためにカドミウムを許容する 2 番目の 5 分反応期間を開始します。反応期間が終わると、糸くずペーパー タオルで両方のチューブを拭いてください。

測色計で、空白のラベルなしの試薬とサンプル チューブを配置します。光パスにラベルが干渉しないように。しっかりとすべての周囲の光が試料室からブロックされていることを確認する計測器キャップ付きセルをカバーします。

窒素として 0.0 mg/l の読書のための空白と測色計を調整します。空チューブを削除およびサンプル ホルダーにサンプル チューブを置き、計測器のキャップを交換します。サンプルの吸光度を測定し、試料中の窒素と硝酸態窒素の濃度を表示します。

水試料中のリンの測定は、窒素の測定に似ています。まず、メジャー 5 mL ピペットで移し、水のサンプルのサンプルにはチューブします。サンプル チューブに 1 つ予混合カリウムの過硫酸塩パウダー枕ホスホン酸の内容を追加します。

しっかりとチューブをキャップし、粉末を溶解するために振る。キャップの上部にラベルを付けます。フード、および 150 ° C で 30 分間熱で原子炉に管を入します。加熱した後、原子炉からチューブを削除、管ラックに配置し、室温に冷却します。

次に、サンプル チューブに 1.54 M 水酸化ナトリウムの 2 mL を追加して pH を調整します。チューブをキャップし、ミックスします。測色計、リン酸のプログラム番号を確認し、プログラム番号を入力または 880 で吸光度を測定する分光光度計を設定 nm。

糸くずのワイプでサンプル チューブを洗浄し、測色計に試験管を読み込みます。ラベル、楽器に光路を妨げるかどうかを確認します。、計測器カバーを置き、未反応のサンプルを空白として使用を調整します。

、計測器からチューブを外し、テスト チューブに予アスコルビン酸法の試薬のパケットの内容を追加します。チューブをしっかりと、キャップし、ミックスする管を振る。ラックにチューブを置き、タイマーを使用して 2 分反応期間を開始します。

反応期間が終わるとソリューションの色がブルーになるはずです。リント フリー ペーパー タオルの管の外側を清掃します。光のパスからすべてのラベルを持つ楽器に試験管を配置します。

読み取りボタンを押すし、サンプル室カバーを閉じます。結果を mg/L で表示されます。880 でサンプルの吸光度を分光光度計を使用して測定する場合 nm。

首都圏の川支流で硝酸塩とリン酸の濃度は、この実験では 5 つの異なるサンプル サイトで比較しました。

きれいな川の水では 1 0 mg/L 硝酸態窒素、リン酸態リンの 0 に 0.03 mg/L 通常含まれています。3 を 5 mg/L 硝酸態窒素、リン酸態リンの 0.03、0.1 mg/L の濃度が高いと考えとこれらの範囲上富。

5 サンプリング場所の 3 では、硝酸態窒素とリン酸レベルが高かった。同様に、平均硝酸塩とリン酸濃度の比較上流と下流の水処理プラント。上流の測定は未処理水を表し、下流の計測は、下水処理場から流出を表します。

リン酸塩処理の過程で有機物質の除去のためには、下流の計測が低かった。しかし、平均硝酸塩濃度は高かった下流、芝生肥料からおそらく放電領域に近い可能な硝酸入力を示します。

流出水の栄養成分とその結果に及ぼす海洋植物の生活を理解することは、私たちの自然な生態系の保全に極めて重要です。

次の例では、サンゴ礁などのリモート環境で海洋微生物を調べた。これらの結果は、硝酸態窒素濃度と結果アオコ原因微生物集団を変更を解明を助けることができます。

水を採取した、閉鎖容器に汚染を防ぐために外部環境に。微生物は、0.22 μ m フィルターで収集されました。ろ過された水は、無機不純物を調べる解析しました。メタゲノム解析は、微生物の遺伝物質の伝達は硝酸態窒素濃度と正の相関を発見しました。

富栄養化を防止するために、土砂の流出、運命および土壌中の汚染物質の輸送を理解することが重要です。次の例では、降雨がシミュレートされ、および土壌中の汚染物質の運命を研究します。土壌ボックスは窒素肥料の一般的な形式の関心は、このケースの尿素の汚染物質を含む土壌が詰まっていた。リンを含む分子は、同じ手順で学ぶことができます。降雨量は、異なる条件でシミュレーションしたと流出収集・分析します。

最後の例と同様に、流出も履修可能屋外自然環境。ここでは、流出の研究施設は、市街地に建設されました。擁壁は、他の地域への汚染の流出を防ぐために、制御された水の収集を有効に建設されました。プロット領域は、横方向の水の動きを防ぐために同様に、分かれていた。水の流出の研究は、灌漑システムを使用して実施されました。流出水を採取し、化学分析は、水の汚染物質を決定するため完成品します。

ゼウスの水の表面水の栄養分析入門を見てきただけ。今流出水と富栄養化や水中の栄養素含有量を測定する方法に関連する課題を理解する必要があります。見てくれてありがとう!

Results

Figure 2
図 2。異なる土地利用タイプ (未開発、農業、および都市) 間硝酸塩を比較したグラフ。

水処理プラント (図 3) から上流と下流を比較して平均硝酸濃度。下流の測定は、治療から放電を表します。

Figure 3
図 3。水処理プラントから上流と下流を比較して硝酸濃度を平均します。下流の測定は、治療から放電を表します。

Figure 4
図 4。シカゴ川沿いの別の場所にリンのグラフ。

水処理プラント (図 5) から上流と下流を比較してリン酸濃度の平均値します。下流の測定は、治療から放電を表しています。

Figure 5
図 5。水処理プラントから上流と下流を比べるとリン酸濃度を平均します。下流の測定は、治療から放電を表しています。

Applications and Summary

高濃度の硝酸塩とリンは、溶存酸素、温度、およびその他の指標を含む他の水の品質要因が悪影響藻類ブルームを引き起こすことによって水の富栄養化状況を刺激できます。硝酸塩は、モバイル以外の種の大量死とモバイルの種は、他の海域に離れて移動「デッド ゾーン、」を作成する好気性の生命を維持することできるもはや貧酸素水 (溶存酸素の低水準) につながります。デッド ・ ゾーンは世界的に大量高栄養の流出や排水の収束、水生生物はほとんど沿岸地域で発生している高濃度 (図 6)。最大のデッド ゾーンの 2 つは 17,353 km2で測定されたデッド ゾーンと、49,000 km2の水の平均は未満 2 mg/L、溶存酸素の含まれる緩んだとメキシコ湾北部にいます。

Figure 6
図 6。世界的な海洋デッドゾーン
赤丸は、場所と多くのデッド ゾーンのサイズを示します。黒いドットは、未知のサイズのデッド ・ ゾーンを表示します。この画像で暗いブルースは、粒子状有機物、デッドゾーンで絶頂に達することができる過度に肥沃な水の指標の高濃度を示します。サイズと海洋デッドゾーンの数-深層水がで非常に低い領域分解海の生き物が生き残ることができない酸素 — 半世紀過去に爆発的成長しています。それは偶然でダウンリバーの人間の人口密度が高い場所、デッドゾーンが発生する (暗いブラウン)。

Transcript

Nitrogen and phosphorus are essential plant nutrients found in aquatic ecosystems, however, in excess amounts, they can cause significant water quality problems. Nitrogen and phosphorous in water are typically found in the forms of nitrate and phosphate, respectively. Both nutrients are dissolved in water and are readily absorbed by photosynthesizers such as algae.

Nitrates and phosphates enter the water systems through freshwater runoff from wastewater treatment plants, fertilized lawns and agricultural lands, faulty septic systems, and industrial waste discharge. In excess amounts, both nutrients can cause an increase in aquatic plant growth and algae blooms, called eutrophication. These algae blooms live at the water surface, in order to easily access oxygen and sunlight.

As a result, eutrophication prevents lower water levels from access to sunlight and oxygen in the air. When the algae die, they sink into the lower water levels and decompose, consuming oxygen in the deeper water causing hypoxia, or low dissolved oxygen levels. Starved of oxygen, and cut off from resupply, the deep water becomes a dead zone. As a result, fish and other organisms die in massive numbers. Dead zones are widespread in the world’s oceans and lakes, predominantly in highly populated urban areas.

This video will introduce the methodology for measuring nitrate and phosphate concentrations in surface water, and demonstrate the measurements in the laboratory.

Nitrogen in water is reported in terms of “nitrate-as-nitrogen.” The phrase “nitrate-as-nitrogen” refers to the amount of nitrogen in nitrate form. Therefore, the nitrate-as-nitrogen concentration can be converted to nitrate concentration using the ratios of the molecular weights of nitrogen and nitrate.

The nitrate concentration is measured using the cadmium reduction method. The cadmium metal reduces the nitrates to nitrites, then the nitrite ions react with sulfanilic acid to form an intermediate diazonium salt. The diazonium salt then couples with gentisic acid, and forms an amber-colored compound. The darker the amber color, the higher the concentration of nitrate in the sample.

The concentration of phosphorus in water samples is reported similarly, in terms of the amount of phosphorus in phosphate form. The conversion between phosphate concentration and phosphate-as-phosphorus concentration can be easily completed using molecular weight. Phosphates are present in water in many different conformations. All phosphates must first be converted to orthophosphates through hydrolysis by heating samples with acid and potassium persulfate.

The ascorbic acid/molybdate method is used to calculate orthophosphate concentration. Orthophosphates react with sodium molybdate in acidic conditions to produce a phosphate/molybdate complex. Ascorbic acid is then used to reduce the complex, producing a blue colored product. To quantify the color intensity produced by the reagent in both experiments, a colorimeter is used to measure the amount of light absorbed by the colored species. The absorbance is then converted to concentration.

The following experiment will demonstrate the analysis of nitrate and phosphate concentrations in water samples using pre-mixed reagent packets to perform this colorimetric technique.

To begin the nitrogen measurement, find the program for nitrate on the colorimeter, and input the appropriate program number or set the colorimeter to measure at 420 nm. Measure 10 mL of the water sample, pipet into a sample tube, and label the tube. Prepare a second identical tube, and label it as the blank.

Add the contents of one premixed cadmium reduction method reagent packets to the sample tube. Cap both sample tubes. Begin timing the 1-min reaction period for the reagent. Shake the tube vigorously by hand until the reaction time is complete.

Set the tube down, and begin a second 5-min reaction period to allow for the cadmium to reduce nitrogen. When the reaction period is over, wipe both tubes clean with a lint-free paper towel.

Place the sample tube with no reagent, labeled the blank, in the colorimeter. Ensure that no labels interfere with the light path. Tightly cover the cell with the instrument cap to ensure that all ambient light is blocked from the sample chamber.

Calibrate the colorimeter with the blank for a reading of 0.0 mg/L nitrate as nitrogen. Remove the blank tube and place the sample tube in the sample holder, and replace the instrument cap. Measure the sample absorbance, and display the concentration of nitrate as nitrogen in the sample.

The measurement of phosphorus in a water sample is similar to the measurement of nitrogen. First, measure 5 mL of the water sample and pipet it into a sample tube. Add the contents of one pre-mixed potassium persulfate powder pillow for phosphonate to the sample tube.

Cap the tube tightly and shake to dissolve the powder. Label the top of the cap. Place the tube in the reactor in a hood, and heat for 30 min at 150 °C. After heating, remove the tube from the reactor, place it in a tube rack, and allow it to cool to room temperature.

Next, adjust the pH by adding 2 mL of 1.54 M sodium hydroxide to the sample tube. Cap the tube and mix. On the colorimeter, locate the program number for phosphate and enter the program number, or set the spectrophotometer to measure absorbance at 880 nm.

Clean the sample tube with a lint-free wipe, and load the test tube into the colorimeter. Make sure that no labels interfere with the light path in the instrument. Place the cover on the instrument, and calibrate using the unreacted sample as the blank.

Remove the tube from the instrument, and add the contents of a premixed ascorbic acid method reagent packet to the test tube. Cap the tube tightly, and shake the tube to mix. Place the tube in a rack, and initiate a 2-min reaction period using a timer.

After the reaction period is over the solution color should be blue. Clean the outside of the tube with a lint free paper towel. Place the test tube into the instrument with all labels out of the light path.

Close the sample chamber cover and push the READ button. The results will be shown in mg/L. If using a spectrophotometer, measure the sample absorbance at 880 nm.

The concentrations of nitrate and phosphate in a metropolitan river branch were compared at 5 different sample sites in this experiment.

Clean river water typically contains 0 to 1 mg/L of nitrate-nitrogen and 0 to 0.03 mg/L of phosphate-phosphorus. Concentrations between 3 to 5 mg/L of nitrate-nitrogen and 0.03 to 0.1 mg/L of phosphate-phosphorus is considered high, and above these ranges considered eutrophic.

The nitrate and phosphate levels were high in 3 of the 5 sampling locations. Similarly, average nitrate and phosphate concentrations were compared upstream and downstream of a water treatment plant. The upstream measurement represents untreated water, while the downstream measurement represents runoff from the treatment plant.

The downstream measurement was low in phosphates due to the removal of organic material during the treatment process. However, average nitrate concentrations were higher downstream, indicating possible nitrate inputs near the discharge area, possibly from lawn fertilizer.

Understanding the nutrient content of water runoff, and its resulting effect on marine plant life is extremely important to preserving our natural ecosystems.

In the following example, marine microorganisms were studied in remote environments such as reefs. These results can help elucidate changing microbial populations due to nitrate concentrations and the resulting algal blooms.

Water samples were collected in containers that are closed off to the external environment to prevent contamination. Microbes were collected on a 0.22-μm filter. The filtered water was analyzed to examine inorganic impurities. Metagenomic analysis found that the transfer of microbial genetic material was positively correlated with nitrate concentration.

In order to combat eutrophication, it is important to understand soil runoff and the fate and transport of contaminants in soil. In the following example, rainfall was simulated, and the fate of contaminants in soil studied. Soil boxes were packed with soil containing contaminants of interest, in this case urea, a common form of nitrogen fertilizer. Phosphorous-containing molecules can be studied with the same procedure. Rainfall was simulated under different conditions, and the runoff collected and analyzed.

Similar to the last example, runoff can also be studied outdoors in natural environments. Here, a runoff research facility was constructed in an urban area. A retaining wall was constructed to prevent runoff contamination to other areas, and to enable controlled water collection. Plot areas were separated as well, to prevent lateral water movement. Water runoff studies were conducted using irrigation systems. Water runoff was collected and a chemical analysis completed to determine contaminants in the water.

You’ve just watched JoVE’s introduction to water nutrient analysis in surface water. You should now understand the challenges associated with water runoff and eutrophication, and how to measure nutrient content in water samples. Thanks for watching!