ポリメラーゼ連鎖反応およびゲル電気泳動法と環境微生物の検出

1. サンプル コレクション

1. オーガーを使用して土壌を収集または決められた深さまでシャベルします。根圏 (土周辺と植物の根とその関連付けられている微生物によって影響の狭い地域) から土壌を収集する場合のみから直接収集植物の根の周りコレクション バレルに土を押すことで。
2. 水の中に浸漬の棒の端を押しながら滅菌プラスチック ボトルを浸すことによって水のサンプルを収集します。

2. 核酸抽出と準備

1. サンプルから有機体およびウイルスを収集し、それらから DNA や RNA を抽出します。詳細については、ゼウスの科学教育コミュニティ核酸抽出に関するビデオを参照してください。
2. ラベル付き microfuge の管に抽出した DNA を格納します。DNA は、一晩、または時間の長い期間保存する必要があります、-20 ° C で凍結し、常温使用の準備ができたら、チューブを解凍します。
3. 試金するのに遺伝物質は (かどうかそれは RNA のウイルスのゲノムや細胞生物の転写 RNA)、RNA は PCR に進む前に相補的 DNA (cDNA) を作成するサンプルの逆のトランスクリプション (RT) を実行します。詳細については、ゼウスの理科の RT-PCR のビデオを参照してください。

3. ポリメラーゼ チェーン反応

1. 氷上 PCR 酵素を (例えば、 Taqのポリメラーゼ) を置き、室温で指定された「クリーン」フードの中その他の試薬 (PCR のバッファー、dNTPs、プライマー) に解凍します。酵素は-20 ° C で保存されているが、フリーズすることはありません。温度に敏感でありのでクールなと最小周囲温度への露出を保たれなければなりません。
2. すべての反応 (表 1) の間で一定しているすべての試薬の「マスター ミックス"を作るために必要な各試薬の量を計算します。(例えば、ターゲット地域を含んでいるテンプレート) の肯定的なアカウントの確認と計算に否定的な (例えば、テンプレートなし) コントロール。ピペッティング誤差を考慮する最終的なボリュームに追加の 10% を追加します。プライマー ボリュームによって異なります特定の有機体のための試金適切な値の公表された資料を参照してください。
3. チューブは、プラスチック製の壁に試薬分子の付着を最小限に抑える、低結合および microfuge を使用して各試薬マスター ミックスを組み立てるための計算されたボリュームを追加します。優しく渦、追加する前に各試薬を遠心力場します。一度マスター ミックスを調製、渦をミックスし、遠心分離によって収集
4. 8 チューブ PCR ストリップを準備します。各サンプルでは、正と負のコントロールを含むための管を指定します。
5. ストリップの各チューブに pcr の適切な量を分注します。
6. それぞれの PCR チューブにから、サンプルと同様、肯定的なテンプレートの 5 μ L、5 μ L グレードの分子水のネガティブ コントロールとしての DNA のテンプレートの適切なボリュームを追加します。
7. Minicentrifuge を使用して、数秒間キャップを 8 管ストリップと遠心分離機で配置します。
8. 場所、たちで 8 チューブ ストリップ
9. 適切な PCR プログラム、たちに実行するを設定します。典型的なプログラムは、以下のとおり
   1. 変性 94 ° C、3 分で。
   2. 増幅の 30-40 のサイクル: 変性 94 ° c 30 s、30 s と拡張が 30 のための 72 ° c (50-60 ° C) の間に通常プライマー特定温度で焼鈍 s/500 bp。
   3. 7-10 分のための 72 ° C で最後の拡張。

4. Agarose のゲルの準備

1. 125 mL 三角フラスコに粉が agarose の適切な量を必要なゲル容積とゲル濃度 (表 2) に基づき、重量を量る。
2. フラスコ、ゲルの連続したバッファーの適切なボリュームを追加し、フラスコを手で旋回します。
3. 1 分のハイパワー電子レンジ オーブンでバッファー agarose の混合物を加熱します。
4. 電子レンジからフラスコを削除し、すべての agarose が溶けるように手で旋回します。Agarose に完全に溶解していない場合は、30 の単位で電子レンジを繰り返します。
5. フラスコにキャップをしっかりと確保した後に、冷たい水を実行して下に回して 50 ° C にクールします。
6. 臭化エチジウム (EtBr) の 1 μ L を EtBr 用に指定された micropippette を使用して agarose の混合物に追加します。EtBr は二本鎖核酸を結合し、UV ライトで照らされた時はオレンジ色の蛍光を発する染料です。EtBr は潜在的に発癌 (ゴーグル、白衣、EtBr 手袋) 保護具を着用する必要がありますので、注意してください。
7. 電気泳動ゲルの鋳造トレイに溶融ゲルを注ぎなさい。Agarose 内で閉じ込められている気泡がないかどうかを確認します。ゲルに櫛を置き、確実にクランプします。ジェルを固めるための約 20-30 分を待ちます。
8. ゲルは凝固させる為、一度ゲルの涙を引き起こすことがなく櫛を慎重に削除します。櫛はサンプルをロードのためのゲルの井戸を作成します。

5. ゲル電気泳動

1. 電気泳動室に凝固 agarose のゲルを配置します。
2. ゲルはかろうじて水没までチャンバーに適切な実行バッファーを追加します。
3. パラフィルムの作品に染料の集中を読み込みのスポットをピペットします。PCR の製品の予想されるサイズの適切な範囲の DNA の梯子があります。また、microfuge の管、サンプルごとに 1 つの新鮮なセットを使用します。
4. PCR が完了すると、たちから 8 チューブ ストリップを取得し、簡単に任意の凝縮を収集する遠心分離機します。ローディングの染料とミックスを上下にピペットに DNA 製品の適切な量を追加します。たとえば、ローディングの染料 × 10 の 2 μ L に 10 μ L、1 x で染付の最終的なボリュームを与えるサンプルの 8 μ L 混合です。
5. 井戸を穿刺しないように注意して agarose のゲルで指定されたウェルにピペットの各色素サンプル混合物。
6. 電気泳動室に電極を接続します。DNA は負に帯電""肯定的な電極に向かって動作するようです。したがって、正の電極を井戸が読み込まれた、商工会議所の反対側に接続します。バッファー システムとゲル室のサイズを適切な電圧に電源供給を設定し、それを実行するを設定します。小さな泡は、電気泳動が適切に進んでいる場合、商工会議所の側面を移動表示されます。
7. 染料フロントはゲルを十分にずっと進んだ、電源をオフにします。慎重に transilluminator または視覚的撮像素子にゲルを輸送し、UV ゲルの DNA バンドを視覚化する光を入れます。
8. バンドのサイズと、ゲル上の位置を分析します。関心の有機体からの DNA のサンプル (図 1) に存在を確認する肯定的な制御サンプルのバンドの位置を比較します。

コンポーネント	チューブごとにボリューム (μ L)	5 管の体積 (μ L)	最終濃度
10 倍Taqバッファー Ex	5.0	25	1 x
2.5 mM dNTPs	4.0	20	0.2 mM
前方プライマー *	2.0	10	400 nM
逆プライマー *	2.0	10	400 nM
分子 H2O	31.75	158.75	-
Taq ex	0.25	1.25	2.5 U
Pcr	45	225

テーブル 1。PCR の試薬ボリューム マスター ミックス。* プライマー ボリュームは生物の試金によって異なります。分子グレード最終巻 45 μ L を作るために水の量を調整します。その他のコンポーネントのボリュームが変わらないようにします。

アガロースの推奨 %	最適な解像度線形 DNA のフラグメント (塩基)
0.5	1,000 30,000
0.7	800-12,000
1.0	500-10,000
1.2	400 7,000
1.5	200 3,000
2.0	50 2,00

表 2。DNA フラグメント サイズ範囲の異なる agarose のゲルの割合によって最適な解決。