免疫蛍光顕微鏡:パラフィン埋め込組織切片の免疫蛍光染色

1. セットアップ

1. 一般的な染色プロトコルには、次の手順が含まれます。
   1. 一連の等級付けされたエタノールを使用してスライド上の組織セクションを再水和する。
   2. ブロッキングバッファーを用いて組織セクションをインキュベートすると、組織に対する抗体の非特異的結合をブロックし、バックグラウンド蛍光を減少させるのに役立ちます。
   3. ブロッキングバッファーを除去し、一次抗体中のセクションをインキュベートし、その時点で抗体はそのペプチド標的を結合する。
   4. 一次抗体を除去し、洗浄バッファー内のセクションを広範囲に洗浄する。
   5. 二次抗体でセクションをインキュベートして一次抗体への結合を可能にし、一次抗体がフッ素で直接標識されていない場合、二次抗体が必要とされる。
   6. 二次抗体をスライドから洗い流す。
   7. 取り付け媒体にスライドを取り付け、蛍光顕微鏡で可視化する前に乾燥させます。
2. スライドホルダー(ガラスまたはプラスチック)、瓶、ピペット、パップペン、湿気のあるチャンバー、カバースリップ、DAPI付き取り付けメディアが必要です。
3. キシレンはスライドの水分補給に使用される。キシレンは危険であり、手袋および実験室のコートを含む適切なPPEと一緒にヒュームフードで使用されるべきである。
4. バッファー、ソリューション、試薬のレシピ
   1. グレードエタノール
      エタノール - 160 mL 200プルーフEtOHおよび40mL ddH₂O
      エタノール - 140 mL 200プルーフEtOHおよび60mL ddH₂O
   2. 抗原検索液
      10 mM ク硝酸ナトリウム、pH 6.0
   3. ブロックバッファ
      二次抗体を作った宿主動物から100 μL血清
      900 μL 1X PBS
      注:これは 10 セクションのボリュームです。必要に応じて、セクションあたり約 100 μL バッファの音量を調整します。
   4. 洗浄バッファ(1X PBS)

2. プロトコル

1. キシレンとエタノールによる水分補給
   1. スライドをスライドホルダーに入れ、100%Xyleneアイソーマーソリューションにスライドを沈め、スライドが完全に溶液で覆われていることを確認します。
   2. 100%キシレンイソーマーのスライドを3分間インキュベートし、合計3回の別々のインキュベーションを2回繰り返します。汚染を最小限に抑えるために、新しい溶液に移す前に、スライドラックをペーパータオルで拭き取ってください。
      注:これらのインキュベーションは、3つの別々の容器で行う方が推奨されます。
   3. 100%EtOHでスライドを2分間インキュベートし、合計3回の別々のインキュベーションを2回繰り返します。
      注:これらのインキュベーションは、3つの別々の容器で行う方が推奨されます。
   4. 95%EtOHで2分間スライドをインキュベートします。
   5. 80% EtOH でスライドを 2 分間インキュベートします。
   6. 70% EtOH でスライドを 2 分間インキュベートします。
   7. 1X PBSでスライドを5分間インキュベートします。
2. (オプション)一次抗体によって認識されるエピトープのマスク解除に対する抗原検索
   注1:この手順は、使用される抗体に大きく依存しており、抗原検索の要件を決定するために初期最適化手順を実行することをお勧めします。
   注2:この手順は、以下に示すF4/80染色では行わなかった。抗原検索の要件は、新しい抗体ごとに最適化する必要があります。
   1. 耐熱プラスチックまたはガラススライドホルダーにスライドを配置し、ラックがスライドで満たされていることを確認して、均等な熱分布を確保します。ラック内のスロットよりもサンプル数が少ない場合は、空のスライドを使用できます。
   2. ラックを2Lビーカーに1000mLの抗原アンマスキング溶液に入れ、10mLの抗原アンマスキングストックを990mLの水にします。
   3. 合計20分間電子レンジで、スライドが水で覆われたままであることを確認してください。
   4. ビーカーで20分間冷やします。
   5. ddH₂Oを含むスライドホルダーにスライドラックを5分間洗います。毎回新鮮なddH₂Oを使用して、合計3つの別々のインキュベーションのために2回繰り返します。スライドは各洗浄の間に同じスライドホルダーで洗うことができる。
   6. 1X PBSでスライドを5分間インキュベートします。
3. パップペンでセクションをサークルします。これはティッシュセクションをカバーするために必要なバッファーの最低の容積の使用を可能にする。組織のセクションを乾燥させないようにしてください。
4. 各セクションにブロック バッファを追加します。断面をカバーするために必要なバッファの量は、セクションのサイズによって異なりますが、25~500 μL の範囲である可能性があります。
   注:ブロッキングバッファーの選択は、使用される抗体によって異なる場合がある。例えば、二次抗体が上昇した宿主動物由来の10%血清は、二次抗体の非特異的結合を減少させるために使用されてもよい(例えば、正常なヤギ血清は、ヤギで二次抗体を上げた場合に使用することができる)。ブロッキングバッファーの最適化は、各一次抗体に対して行われるべきである。F4/80で乳腺腫瘍切片を染色するために、PBSで10%正常ヤギ血清の0.1mlを用いた。
5. 室温または4°Cで1時間、または24時間まで加湿室内のブロッキングバッファーのセクションをインキュベートします。加湿された部屋はセクションが乾燥しないことを保障する。
6. ブロッキング バッファをスライドから取り外して取り外します。あるいは、ブロッキングバッファはピペットを使用して除去することができますが、ピペット先端でセクションに触れないように注意してください。
7. ブロッキングバッファー内の一次抗体を希釈する。
   注:抗体およびサンプルタイプごとに正しい希釈を決定する必要があります。最適化には、最適な染色を識別するために一連の希釈を行うことが含まれます。F4/80で乳腺腫瘍切片を染色するために、組織切片を0.1mLラット抗F4/80抗体で一晩4°Cでインキュベートし、PBSで1%正常ヤギ血清で1:100を希釈した。
8. 各セクションに一次抗体を追加し、4°Cで最大16時間(一晩)加湿室でインキュベートします。一次抗体を使用せずにブロッキングバッファーに少なくとも1つのセクションを残して対照として機能し、二次抗体による非特異的結合を同定するのに役立つ。
9. 一次抗体またはブロッキングバッファーをセクションから排出し、スライドラックにスライドを配置し、1x PBSのスライドホルダーに入れてPBSでセクションを洗浄します。毎回3回10分間洗います。
10. ブロッキングバッファーで二次抗体1:200を希釈する。希釈は二次抗体に応じて最適化することができる。
11. 二次抗体を対照を含むすべてのセクションに添加し、光から保護された加湿室で1時間インキュベートする。
12. 二次抗体を切片から排出し、PBSで毎回3回洗浄する。
13. DAPI を含む取り付けメディアをスライドに 2 ~3 滴追加し、サンプルにカバースリップを配置します。取り付け媒体が急速乾燥タイプのメディアでない場合は、漏れを防ぎ、サンプルを長期的に維持するために、溶融パラフィンワックスまたは爪磨きでスライドの端を密封する必要があります。
14. スライドが暗闇の中で一晩乾燥し、蛍光顕微鏡を使用してセクションを画像化します。

3. データ分析と結果

1. 染色されたセクションは、蛍光顕微鏡を用いて分析される。画像のキャプチャと解析の具体的な詳細は、顕微鏡の仕様と分析を実行するために使用されるソフトウェアに依存します。通常、画像は単一色の画像として撮影し、複数色の画像を生成するために重なり合うことができます。パーセント陽性細胞は、陽性染色された細胞の数をカウントし、セクション内のDAPI染色細胞の総数で除算することによって定量することができる。乳腺腫瘍セクションのF4/80染色については、ソフトウェアLeicaアプリケーションスイート、バージョン3.8を使用して、取得タブと画像オーバーレイ取得モードで、DAPIとRFPの両方が有効になりました。露出、ゲイン、ガンマは、実験によって異なりますが、DAPIの場合はそれぞれ20.0ミリ秒、1.0x、1.53、RFPでは944.2ms、1.0x、1.08と調整しました。[オーバーレイの取得] ボタンを使用して、DAPI および RFP 露出のオーバーレイ イメージを作成しました。
2. 下の画像(図1)は、マクロファージおよび他の骨髄細胞上の抗原を検出するF4/80で染色された腫瘍部の免疫蛍光画像の例を示す。このセクションはDAPI含有の取り付け媒体を使用して取付けられ、核は青で示される。