Name: クーマシー有機溶媒および酢酸のないG - 250でゲル中のタンパク質の染色 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-08-14T00:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 47 s
Description: 学ぶ、有機溶媒や酢酸を使用しないCoomassie Brilliant Blue G-250によるポリアクリルアミドゲル内タンパク質染色法。電気泳動後のタンパク質バンドを1分で可視化でき、安全かつ簡便な生化学分析手法として利用可能です。

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我々は、イネスRackéの技術支援に感謝したい。

パート1：CBB染色液の調製<ol><li> CBB G - 250の60〜80 mgを2〜4時間攪拌することにより二回蒸留水1リットルに溶解されています。最後に、濃塩酸3mlを別分間攪拌しながら濃い青色溶液に添加し、後で使用するために暗所に保存されます。解決策は、その染色の効率を失うことなく、数ヶ月に数週間まで保存することができます。 </li><li>濃塩酸は、換気フードの下に使用される通常のケアのウントに取り扱ってください。最終的な解決策は、pH約2になる、手袋を使用する必要があると皮膚との接触を避けるべきであるように。 </li></ol>パート2：SDS - PAGE <ol><li>タンパク質サンプルの適切なアリコートは1 ×ローディングバッファーの最終濃度になるようにバッファーをロードすると混合されています。我々は、125mmのTris/H3PO4（25 ° CでpH 7.5）を、2mMのEDTA、4％SDS、200mmのDTT、0.02％ブロモフェノールブルー、50％グリセロールで2 ×ローディングバッファーを使用。 SDS - PAGEのための他のローディングバッファも同様に使用できます。 </li><li>タンパク質サンプルをロードする前に、約5分間加熱する。一方、ゲル電気泳動槽は、実行用に準備されます。我々はX細胞SureLockで©ビス - トリスゲル（Invitrogen）® MES -バッファ付きミニ細胞（Invitrogen）を実行しているバッファが、その他のゲルや電気泳動システムとしても使用することができるプレキャスト4-12％NuPAGEを使用してください。 </li><li>タンパク質サンプルは、220Vで50分間実行ゲル電気泳動でロードされます。 </li></ol>パート3：ゲルの染色<ol><li>ゲルカセットを分解し、ゲルは、その後の洗浄ステップのボックスに配置されます。 </li><li>蒸留水約100mlをゲルに添加し、30秒間電子レンジで加熱される。沸騰が発生する前に加熱を停止する必要があります。ゲルのボックスは、3〜5分間シェーカー上に置かれる。そしてこの洗浄ステップは、新鮮な水で二回繰り返されます。 </li><li>十分なCBB染色液は、ボックス内のゲルと10秒間電子レンジで加熱ボックスをカバーするために追加されます。沸騰せず。ゲルのボックスは、染色の仕上げにシェーカーに置かれます。すでに1分後に、タンパク質のバンドが15〜30分間の後、観察することができます。染色は、ほとんどの場合、十分に強いです。 </li><li>染色液はオフに注ぎ入れ、50〜100ミリリットル蒸留水は、さらにシェーカー上でゲルの明るい青の背景を脱色するために追加された。水は、必要に応じてさら​​に脱色のために新鮮な水に置き換えることができます。 </li><li>ゲルは、スキャン撮影や長期保存用に乾燥させることができる</li></ol>パート4：代表的な結果： 図を参照してください。説明する手順に従って適切に染色したゲルの場合は1。 図を参照してください。十分な長染色と残留SDSが効率的な染色を阻害する前に洗浄されていないゲル2。マーカーレーンが（*）マーカータンパク質の同量を含んでいることに注意してください。 <img src="/files/ftp_upload/1350/Fig1.png" alt="" /> 図。 1：タンパク質の精製の ​​サンプル（：分子量マーカー*）をロードした後に染色した代表ゲル。 <img src="/files/ftp_upload/1350/Fig2.png" alt="" /> 図。 2：CBB染色する前に十分な長さで洗浄されていないCBB染色したゲル。タンパク質バンドは、（マーカーのレーンの*は、図のように同量のタンパク質が含まれている点に注意。1）弱いが表示されます。

<ol><li>Process for fast visualization of protein. US patent. , 6319720 (B1) (2001).</li>
<li>Solution for fast visualization of protein. US patent. , 2001046709 (A1) (2001).</li>
</ol>

競合する利害関係はありません。上記の手順は、もともと、EM Wondrak（Refを参照してください。）によって特許出願に掲載されました。

<ul><li>洗浄ステップは、タンパク質の効率的な染色のために重要です。 2分または水（&lt;50ミリリットル）の削減量以下に削減、洗浄時間は、ゲル中の残留SDSの高い金額に起因する可能性が最も高い淡いブルーのタンパク質のバンド、になる可能性があります。 </li><li>タンパク質は、質量分析によって分析することを予定している場合のバンドの強度が十分な強さになるまで、電子レンジで加熱ステップは、約10の各ステップで最小と拡張染色時間に延長ゲルの洗浄のための時間をスキップしてください。質量分析によるタンパク質のため、ゲルマトリックスにタンパク質の架橋におけるゲルの結果を加熱し、検出が妨げられる可能性があります。 </li><li>代わりに、CBB G - 250の、一Wondrakによるオリジナルプロトコルに従って、CBB R - 250を使用することができます。我々の研究室でCBB G - 250の株式を持っていたし、この染料との良好な結果を持っていたとして、我々は並ん染料側の両方を比較していない。 </li><li>手続きのスピードと洗浄し、染色のステップに有毒または有害な溶剤の不作為は、このプロトコルを使用するための最も重要かつ説得力のある要因です。感度は、古典的なCBB染...

<table><tbody><tr><td>Coomassie Brilliant Blue G-250</td><td>AppliChem</td><td>A3480</td><td>他のCBB G-250でも代用可能</td></tr><tr><td>濃塩酸</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

クーマシー有機溶媒および酢酸のないg - 250でゲル中のタンパク質の染色

Staining of Proteins in Gels with Coomassie G-250 without Organic Solvent and Acetic Acid

クマシーブリリアントブルー（CBB）、有毒で引火性の有機溶媒（メタノール、エタノールまたは2 - プロパノール）と酢酸の高い内容を持つソリューションを使用して古典的なタンパク質染色のプロトコールで染色し、SDS泳動後のゲル中のタンパク質の脱色、固定のために使用されています- PAGE。頻繁に使用されている短い時間のために電子レンジでの染色溶液を加熱し、手続きのスピードアップに。有毒または有害なメタノール、エタノールまたは2 - プロパノール及び安全性の考慮のために避けるべきラボにおける酢酸の強いにおいの蒸発でこれは通常、結果。もともとEM Wondrak（US2001046709（A1）、US6319720（B1））によって2つの特許出願で公開プロトコルでは、染色液の代替物はないの有機溶媒や酸が使用されていないで説明されています。 CBBは、蒸留水に溶解している（CBB G - 250リットル当たり60 - 80mg）、35 mMの塩酸は、染色液中の唯一の他の化合物として追加されます。ゲルのCBBのstaningは、蒸留水でゲルのSDS - PAGEと徹底した洗浄の後に行われます。洗浄および染色工程中にゲルを加熱することにより、プロセスをより速く仕上げることができるとは有毒または有害なcompundsは蒸発されていません。タンパク質の染色は、溶液を染色でゲルを加熱した後、1分以内にすでに発生し、完全に染色されたタンパク質に影響を与えずに、蒸留水で染色したゲルの長期にわたる洗浄によって完全に脱色され若干青色の背景色の15-30分後に開発されていますバンド。

クマシーブリリアントブルー（CBB）ポリアクリルアミドゲル中でのG - 250によるタンパク質染色用の短いプロトコルは、CBBと古典的な染色の手順のように有機溶剤または酢酸を使用せずに記述されています。

クーマシー有機溶媒および酢酸のないG - 250でゲル中のタンパク質の染色

Coomassie Brilliant Blue (CBB) を用いた従来のタンパク質染色プロトコルでは、毒性および可燃性の有機溶媒を高濃度に含む溶液が...

本手順を開始するために、クマシーブリリアントブルー（CBG 250）を1リットルの二回蒸留水に溶解し、2〜4時間攪拌します。その後、この濃青色の溶液に塩酸を加え、さらに1分間攪拌し、溶液を遮光して保存します。タンパク質試料の調製およびSTS-PAGEの後、ゲルカセットを分解し、ゲルをボックスに入れて二回蒸留水で3回連続して洗浄します。3回目の洗浄後、ボックス内のゲルが浸る十分な量のCBB染色液に交換します。ボックスを電子レンジで10秒間加熱し、ゲルが入ったボックスをシェーカーの上に置きます。染色が完了すると、1分後にタンパク質バンドが観察できます。こんにちは。私はエンペリオン・ハイデルベルクのタンパク質発現精製施設のAmri Lawrenceです。本日は、クロリドゲルにおけるCoomassie Brilliant Blue G-250を用いたタンパク質染色のプロトコルをご紹介します。従来の染色法とは異なり、本プロトコルでは有機溶媒や酢酸を一切使用しません。このプロトコルを使用して、精製ステップごとにタンパク質の分析を行います。それでは、手順を開始しましょう。CBB染色液を調製するには、60〜80 mgのCBBを1 Lの二回蒸留水に溶解し、2〜4時間攪拌します。CBVを溶解させた後、溶液をドラフトチャンバー内に移動させます。ドラフトチャンバー内で、濃塩酸3 mLを濃紺色の溶液に慎重に加えます。最終的な溶液のpHは2となるため、手袋を着用し、1分間撹拌してください。溶液を調製した後、後で使用するために暗所で保存します。この溶液は、染色効率を損なうことなく数週間から最大数ヶ月間保存することが可能です。SDS-PAGE用のタンパク質サンプルを準備するには、適切な量のタンパク質サンプルをローディングバッファーと混合し、最終濃度を1x loading bufferにします。ロードする前に、タンパク質サンプルを約5分間加熱します。サンプルの加熱中に、ゲル電気泳動槽の準備を行います。本手法では、MES緩衝液を走行緩衝液として使用し、ミニセル内のプレキャストゲルを用いますが、他のゲルおよび電気泳動システムでも代用可能です。加熱したタンパク質サンプルをゲルにロードし、220 Vで50分間電気泳動を行います。SDS-PAGEの完了後、ゲルカセットを分解し、ゲルを100 mLの二回蒸留水を入れたボックスに入れます。その後の洗浄ステップのため、ボックスを電子レンジで30秒間加熱します。沸騰する前に加熱を停止してください。ゲルを入れたボックスをシェーカーに載せ、電子レンジで3～5分間加熱した後、新鮮な水を用いてこの洗浄ステップを2回繰り返します。計3回の水洗浄の後、ボックス内のゲルが浸るまでCBB定常溶液を加え、沸騰させないように電子レンジで10秒間加熱します。その後、ゲルを入れたボッ

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Research

JoVE Journal

Biology

生物学

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ミトコンドリアスーパーコンプレックス解析のためのミトコンドリアの単離 (Small Tissue and Cell Culture Samples) 

学ぶ、有機溶媒や酢酸を使用しないCoomassie Brilliant Blue G-250によるポリアクリルアミドゲル内タンパク質染色法。電気泳動後のタンパク質バンドを1分で可視化でき、安全かつ簡便な生化学分析手法として利用可能です。

クーマシー有機溶媒および酢酸のないG - 250でゲル中のタンパク質の染色

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