2010年1月18日
電気生理学的研究のための新生児マウス脊髄の分離のデモンストレーション。
こんにちは。私はアラン・メイヤーです。ソーク研究所のfafラボでリサーチアシスタントを務めています。今日は、マウスの脊髄を単離するための腹側椎弓切除術の方法と、神経活動を記録するために脊髄を電極に固定する方法について説明します。脊髄用に、解剖用と記録浴用の2種類の溶液を準備する必要があります。
2つの溶液の唯一の違いは、塩化カルシウムの濃度です。まず、10 X-A-C-S-F溶液を調製する必要があります。これには、以下に記載する試薬が必要です。
まず、10 X-A-C-S-F 100 millilitersを1リットルのメスフラスコに加えます。次に、あふれないように余裕を持たせて、フラスコを水で満たします。ガス充填時は、5%CO2および95%O2のガス濃度の溶液を使用します。
pHを下げて溶液に酸素を供給するため、1 M 硫酸マグネシウムを 1 mL 加えます。次に、解剖液に 1 M 塩化カルシウム溶液を 1 mL 加え、記録液に 1 M 塩化カルシウムを 2 mL 加えます。これらの実験には、胎生 E 16.5 から生後 P 4 までのマウスを使用できます。
まず、鋭いハサミで迅速に断頭し、マウスの解剖を開始します。次に、腹側正中線に沿って尾まで切り開きます。その後、ピンセットを用いてマウスを摘出(内臓除去)し、A CSF溶液で洗浄します。
1 mM 塩化カルシウム含有 A CSF を使用して解剖を行います。マウスを解剖皿に置き、4つの肢と尾の付け根にピンを刺して固定します。この工程の目的は、赤色の点線に沿って切開し、脊柱を脊髄を包む椎板から分離させることで、脊髄を単離することです。
これにより、脊髄を露出させることができます。次に、ラインに沿って髄膜と脊髄神経根を切り出し、脊髄を遊離させます。脊柱の位置を確認し、片手でピンセットを用いて脊柱をしっかりと固定し、もう一方の手で小はさみを操作します。
脊髄を取り出す際は、ハサミを低い角度に保ちます。ハサミの先端で脊髄を傷つけないよう、ここから脊髄の剥離を行います。赤線に沿って、髄膜と脊髄神経根を切断します。
脊髄を摘出するには、脊髄の両側を切り、次に腹側正中線を沿って切断します。脊髄を穿孔しないよう、ハサミを低い角度で保持することが重要です。また、脊髄に近すぎない位置で神経根を切断するようにしてください。
次に、脊髄を記録槽に移し、電極を脊髄根に接続します。電極を神経根の近くに配置します。その後、吸引を用いて神経を電極内にゆっくりと引き込みます。
ご視聴ありがとうございました。このビデオが今後の実験のお役に立てば幸いです。
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本記事では、電気生理学的研究のための新生マウス脊髄の単離方法を解説します。手順には、腹側椎弓切除術の実施、および神経活動記録用の電極への脊髄の固定が含まれます。
本プロトコルは、神経筋疾患のターゲットバリデーションにおけるメカニズム的なリスク低減を目的として、中枢パターン生成回路の電気生理学的評価を行うための新生マウス脊髄の単離を可能にします。この手法は、歩行ネットワーク機能を解析し、神経シグナル伝達に対する化合物の影響を評価するための疾患関連システムを提供します。検証済みの前臨床モデルから電気生理学的出力を定量的に測定することを可能にし、初期探索段階における予測の信頼性を高めます。
本手法は、神経筋標的に対する仮説検証およびパスウェイの解明を可能にする孤立脊髄標本を提供することで、初期の創薬探索ワークフローに統合されます。