免疫染色のための固定ショウジョウバエ卵子の調製:外膜を固定および除去するためのハイスループット法

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- 麻酔をかけたショウジョウバエをブレンダーでバッファーと一緒にパルス化し、ハエを細かく砕くことから始めます。メッシュを通して混合物をろ過し、大きな体の部分を取り除きます。次に、卵が沈むのを待ちますが、大きな破片は表面に残って取り除くことができます。

小さなメッシュを使用してこのプロセスを繰り返し、追加の破片を取り除きます。卵をバイアルに集め、卵を薬で治療する場合は、この時点でそうしてください。次に、液体を取り除き、固定剤と交換します。固定剤が卵の周囲の膜に浸透するのを助けるためにヘプタンを追加します。

その後、PBSで固定剤を洗い流します。卵子を染色するには、抗体が浸透できるように保護用の外膜を剥がします。卵子をスライドガラスのつや消し部分にピペットで移します。卵の上にカバースリップを置き、カバースリップを前後にゆっくりと転がして、絨毛膜とビテリン膜を卵から機械的に分離します。これで、卵子を染色する準備が整いました。

プロトコルの例では、減数分裂Iの卵子を調製して、紡錘体装置を染色して視覚化します。

- まず、5ミリリットルのチューブとパスツールピペットの内側をPTBで事前にカットし、卵子が表面に付着するのを防ぎます。100ミリリットルのロブのバッファーをブレンダーに加え、麻酔をかけたハエを100〜300匹加え、1秒間に3回パルスします。

得られたスラリーを、約1500マイクロメートルの細孔を持つ大きなメッシュを通して250ミリリットルのビーカーにろ過します。濾液を約2分間安定させてから、最上層を吸引し、できるだけ多くの大きな体の部分を取り除きます。スラリーを再び250ミリリットルのビーカーに濾過し、細孔径300マイクロメートルの小さなメッシュで濾過します。

コーティングされたピペットに追加のバッファーを使用して最初のビーカーをすすぎ、残りの卵子を収集します。スラリーを3分間沈殿させてから、下部10ミリリットルを除くすべてを吸引します。コーティングされた5ミリリットルのチューブに10ミリリットルをできるだけ多く注ぎます。スラリーを約2分間沈殿させてから、液体を慎重に取り除きます。

残りの10ミリリットルのスラリーを追加し、混合物を再び沈殿させてから、液体を取り除きます。コーティングされたピペットに追加のバッファーを使用して、ビーカーから残っている卵子を洗い流します。すすぎを5ミリリットルのチューブに3〜5分間沈めます。

卵巣を固定するには、まず、組織からすべての液体を吸引し、すぐに1ミリリットルの固定ミックスを追加します。ティッシュをニューテーターに2分半置きます。次に、1ミリリットルのヘプタンを加え、チューブを1分間ボルテックスし、次に卵母細胞をさらに1分間沈殿させます。

沈殿した組織からすべての液体を取り除き、1xPBSの1ミリリットルを追加します。チューブを30秒間ボルテックスし、次に卵子が1分間落ち着くのを待ちます。その後、チューブからすべての液体を取り除き、5ミリリットルの1x PBSを入れます。

コーティングされたピペットを使用して、すりガラススライドに約500〜1,000個の卵子を追加します。鉗子を使用して、体の無関係な部分や材料をすべて取り除きます。組織の上にカバースリップを置き、すべての膜が剥がれるまで卵子を静かに転がします。カバースリップの端を卵母細胞の上でドラッグするとうまくいきます。メンブレン除去の進行状況を定期的に顕微鏡で確認してください。圧力がかかりすぎると卵子が破壊されます。

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最終更新:15 8月 2026