酵素消化と手動解離:細胞培養のためのC.エレガンス胚の調製方法

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- 妊娠した成虫を漂白して分離したペレット卵から始めます。この手順の各ステップが無菌的に実施され、培養細胞の汚染を避けるようにしてください。キチン(卵殻の構造成分である大きな多糖類)を分解する酵素であるキチナーゼの溶液にペレットを懸濁します。

適切な消化期間の後、卵を穏やかに遠心分離し、上清を細胞培養培地に置き換えて消化を停止します。次に、胚を18ゲージの針に通して、個々の細胞を機械的に分離します。次に、溶液をろ過して、卵殻または分離されていない細胞塊から破片を取り除きます。ピーナッツ凝集素(細胞表面の炭水化物を結合して細胞がカバースリップに付着するのを助けるレクチン)でコーティングされたガラスカバースリップに培養皿に細胞をプレートします。

プロトコル例では、in vitroの形態学的分化および分析のために胚細胞を調製します。

- 細菌汚染の導入を避けるために層流フードの下で作業しながら、ペレット卵を1ミリリットルあたり2ミリグラムのキチナーゼの1ミリリットルに再懸濁し、それらを新鮮な15ミリリットルの円錐管に移します。チューブを室温で10〜30分間揺さぶります(酵素の鮮度にもよりますが)。卵殻の約80%が消化されたら、卵を900gで3分間遠心分離します。

上清を慎重に取り除いた後、L15培地を3ミリリットル加えます。卵子を直径6センチメートルのプレートに移し、18ゲージの針が付いた10ミリリットルの滅菌注射器を使用して手動解離を開始します。解離の程度を監視するには、懸濁液を新鮮なペトリ皿に一滴入れ、顕微鏡で観察します。細胞の約80%が解離するまで続けます。

細胞の塊、未消化の卵、および孵化した幼虫を除去するには、懸濁液を5ミクロンのフィルターで穏やかにろ過し、さらに4〜5ミリリットルのL15培地をフィルターに通して細胞を回収します。濾液を900 gで3分間遠心分離した後、細胞を培養するには、細胞を完全なL15培地に再懸濁します。1ウェルあたり1ミリリットルをプレートし、プレートは周囲空気中の摂氏20度の湿度の高い密閉チャンバーに保管します。

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最終更新:15 8月 2026