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- まず、脱葉胚にカルシウムを供給するE3培地を溶融アガロースに添加してアガロースを調製します。次に、MS222を添加して胚を麻酔します。アガロースミックスを摂氏38度に冷却し、固化に近づけます。蛍光タンパク質を発現するデコレーション胚をいくつか選択し、それらをアガロースミックスに移します。
次に、ガラスキャピラリーにプランジャーを完全に挿入し、1つの胚を引き出し、頭から入ることを確認します。アガロースが固まったら、テープを使用して、E3媒体を含むビーカーでキャピラリーを直立させます。キャピラリーの底部が開いているため、胚サンプルのガス交換が促進されます。
キャピラリーをライトシート蛍光顕微鏡のサンプルホルダーに入れます。レーザーは薄い光シートを形成し、サンプルに対して垂直に配置された検出対物レンズが断面画像をキャプチャできるようにします。このプロトコル例では、ゼブラフィッシュの胚をマウントして、発育中の眼を画像化します。
アガロースの準備から始めます。調製した1ミリリットルのアリコートに1%低融点アガロースをE3培地で摂氏70度で溶かします。約15分後、600マイクロリットルの溶融アガロースを新鮮な1.5ミリリットルのチューブに移し、250マイクロリットルのE3培地、50マイクロリットルの0.4%MS222、および25マイクロリットルのボルテックス蛍光ビーズストック溶液を加えます。
チューブを摂氏約39度の加熱ブロックに置き、アガロースがゼリー点に近づくようにします。次に、テフロンチップのプランジャーを内径1mmのガラスキャピラリーの底まで押し下げます。このうち5つを用意します。
次に、アガロース混合物を短時間ボルテックスし、次に、最小限の量の液体で5つの胚をそれに移します。次に、毛細血管を挿入し、1つの胚を頭から吸引します。
ヘッドはテールの前に入らなければならず、気泡があってはなりません。胚の上に約2センチメートルのアガロースがあり、その下に1センチメートルのアガロースがあるように、十分な溶液を描きます。
進行する前に、各毛細血管に1つの胚を描きます。このステップをマスターするには、ある程度の練習が必要です。価値のない胚を使用して準備します。
アガロースが完全に固まったら、粘土で毛細血管をビーカー壁に支え、底部の開口部を溶液にして、サンプルをE3培地に保管します。次に、サンプルホルダーを組み立てます。まず、適切なサイズの2つのプラスチックスリーブを互いに押し合わせてステムに挿入します。
袖のスリットは外側を向いている必要があります。次に、クランプネジを取り付け、キャピラリーをホルダーに挿入し、反対側に黒い色のバンドが見えるまで挿入します。プランジャーには触れないでください。
次に、clを締めますamp ネジ。次に、キャピラリーから1センチメートルのアガロースを押し出し、トリミングします。次に、ステムをサンプルホルダーディスクに挿入します。
サンプルディスクをロードする前に、制御ソフトウェアのステージが一番上の位置にあることを確認してください。次に、ガイドレールを使用してホルダーをスライドさせ、サンプルを顕微鏡に滑り込ませます。次に、選択したサンプルをテキストプロトコルで説明されているように画像化します。