初代マンモスフィアの作製:細胞の効力を決定する技術

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単一の乳がん幹細胞は、初代マンモスフィアと呼ばれる細胞のクラスターを生み出します。それらを取得するには、まず乳がん細胞株を70%から80%がコンフルエントになるまで培養し、細胞が成長段階にあることを確認します。トリプシン-EDTAを添加してフラスコから細胞を分離し、血清を含む培地を添加してトリプシンの作用を停止させます。

次に、細胞をチューブに入れ、遠心分離して細胞ペレットを取得します。ペレットを血清を含まないマンモスフィア培地に再懸濁し、懸濁液を細胞ストレーナーキャップフィルターに通して、単一細胞懸濁液を得る。この懸濁液は、幹細胞、前駆細胞、および異なるタンパク質発現を示す分化細胞で構成されています。

CD44およびCD24は、乳がん幹細胞に特徴的な細胞表面タンパク質です。それらはCD44発現に対して陽性であり、CD24に対して陰性です。蛍光または磁気活性化細胞ソーティングを使用して、細胞懸濁液から細胞を単離します。次に、アリコートとアドトリパンブルー染色を細胞に取り、血球計算盤スライドを使用してミリリットルあたりの生存細胞数を計算し、播種密度を見つけます。

最後に、細胞を6ウェルの超低接着プレートに播種し、細胞が懸濁したままになるようにします。プレートを乱さずに、球体の直径が40ミクロンになるまでプレートを5〜10日間インキュベートします。次のプロトコルでは、乳がん細胞株から初代マンモスフィアを作製します。

- 無菌培養フードの下で作業し、70%から80%がコンフルエントなMCF7またはMDA-MB-231細胞でこの手順を開始します。フラスコからメディウムを吸引します。細胞をPBSで2回洗浄し、Tripsin-EDTAを添加して2〜6分間インキュベートします。剥離後、10%FBSを含むマンモスフィア培地を追加して急冷します。

細胞が分離したら、15ミリリットルの円錐形遠心チューブに移し、室温で200 gを5分間回転させます。この遠心分離に続いて、上清をデカントし、次いで細胞を1〜5ミリリットルのマンモスフィア培地に再懸濁した。ピペットを10回上下させて、細胞ペレットをバラバラにします。

次に、細胞懸濁液を40ミクロンの細胞ストレイキングキャップフィルターに移し、付属のチューブ内に流れを回収して、シングルセル懸濁液を得る。再懸濁した細胞の20マイクロリットルのアリコートを血球計算盤にピペットで移し、顕微鏡を使用して検査します。ここに示すように細胞クラスターが観察された場合は、注射器を使用して、懸濁液を25ゲージの針に1〜2回出し

入れします。

ここに示すように細胞を単一細胞懸濁液に分散させたら、蛍光活性化細胞ソーティングまたはLSカラムを用いた磁気活性化細胞ソーティングにより、CD44陽性細胞、CD24陰性細胞サブセットの単離に進み、CD44陽性細胞を正に選択します。目的のセルがLSカラムの壁に付着するため、フロースルーを破棄し、カラムからセルを取り出し、5ミリリットルのバッファーを適用し、カラムに付属のプランジャーを適用して押し下げて目的のセルを洗い流します。

次に、LDカラムを使用して、ネガティブセレクションによって母集団をさらに精製します。ここでは、CD24陽性細胞がLDカラムに付着します。CD24陰性細胞を含むフロースルーを収集します。次に、フローサイトメトリーを使用して、すべての単離された細胞の表現型を確認します。トリパンブルー排除法を使用して、生細胞の密度を計算します。

細胞懸濁液を適切に希釈した後、6ウェルの超低接着プレートの各ウェルに、2ミリリットルの完全マンモスフェア培地に500〜4,000細胞/センチメートル四方のシードを施します。球体が観察されるまで、プレートを邪魔しないように注意しながら5〜10日間プレートをインキュベートします。球体の直径が少なくとも40ミクロンになるまで培養を続けますが、まだアポトーシスに変わり始めていません。

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最終更新:15 8月 2026