0 閲覧数 • 4:45 分 • April 30th, 2023
- まず、基底膜マトリックスのバイアルを摂氏4度で一晩解凍します。基底膜マトリックスは、腫瘍微小環境に存在するタンパク質で構成されており、in vitroでがん細胞の特性を維持するのに役立ちます。翌日、基底膜マトリックスバイアルを氷上に置いて、マトリックスを液体状態に保ちます。肺がん細胞を予冷した遠心チューブに取り込み、摂氏4度で遠心分離します。上清を吸引し、軽くたたいてペレットを取り除き、氷の上に置きます。次に、このチューブに適量の基底膜混合物を加えて混合し、均一な細胞懸濁液を作ります。基底膜のゲル化を防ぐために、すべてのステップを低温で行ってください。
適量の細胞マトリックス懸濁液を、予冷したウェルプレート内の各ウェルの中央に移し、ウェル全体を覆います。ウェルプレートをインキュベートして、マトリックスが固化します。顕微鏡で観察して、マトリックス内の細胞が均一に分布していることを確認します。3D培養完全培地を各ウェルに加え、摂氏37度でインキュベートします。この培地は、細胞マトリックスの相互作用を促進します。したがって、細胞は腺房様構造を持つオルガノイドを形成します。次のプロトコルでは、TUM622肺がん細胞の3D培養を行います。
まず、基底膜マトリックスのバイアルを摂氏4度の冷蔵庫で一晩解凍します。2ミリリットルのプラスチックピペットとチップをマイナス20°Cで一晩冷やします。翌日、TUM622細胞、HEPES緩衝液、トリプシン-EDTA、およびトリプシン中和緩衝液の解離に使用した試薬を摂氏37度の水浴で温めます。解凍した基底膜マトリックスを冷蔵庫から取り出し、バイアルを氷の上に置きます。氷の上に置かれた金属製のプラットフォームクーラーで組織培養プレートを冷却します。遠心分離管を氷の上の金属製冷却ラックに置きます。調製するウェルの数と各ウェル内の細胞の濃度に基づいて、必要な細胞の量を計算します。TUM622細胞懸濁液を冷却した遠心分離管に移し、4°Cの吊り下げ式バケツ遠心分離機で300 gで5分間スピンダウンします。
ろ過されていないチップに吸引ピペットを取り付けた状態で、上清を慎重に吸引し、チューブ内に約100マイクロリットルの培地を残します。チューブの側面を軽くたたいてペレットを取り外して関連付け、冷却ラックに戻します。2ミリリットルの予冷ピペットを使用して、氷上でマトリックスを数回上下にピペッティングして穏やかに混合します。この手順中にマトリックスに気泡が入らないように、均一で適度な速度でピペットを動かします。
マトリックスの1.1ミリリットルを各遠心分離チューブに移します。予冷チップを使用して、各チューブ内のマトリックスを約10回上下にピペットで動かし、均一な細胞懸濁液を作ります。310マイクロリットルの細胞マトリックス懸濁液を、予冷した24ウェルプレートの各ウェルに移します。ピペットをプレート表面に対して90度の角度で置き、懸濁液をウェルの中央に追加します。サスペンションは広がり、全体をしっかりと覆います。下流の免疫蛍光分析を容易にするために、60マイクロリットルの細胞マトリックス懸濁液を2ウェルチャンバースライドのウェルセンターに移します。これにより、マトリックスははるかに小さな体積でドーム状の構造を形成することができます。
プレートとチャンバーをスライドさせて組織培養インキュベーターに戻し、マトリックスが固まるまで30分間インキュベートします。その後、プレートを検査し、光学顕微鏡でスライドさせて、単一細胞がマトリックス内に均一に分布していることを確認します。予熱した3D培養完全培地1ミリリットルをプレートの各ウェルに加え、チャンバースライドの各ウェルに1.5ミリリットルの3D培養培地を加えます。その後、それらをインキュベーターに戻します。
本記事では、基底膜マトリックスを用いたTUM622肺癌細胞の3D培養プロトコルについて概説します。この手法では、マトリックスのゲル化を防ぐため、調製中の低温維持を重視しています。
本プロトコルでは、細胞とマトリックスの相互作用をモデル化するために、肺癌細胞の再現性のある3D培養を可能にし、腫瘍学における創薬のターゲットバリデーションを支援します。基底膜マトリックス中でオルガノイド様構造を形成させることで、腫瘍微小環境をより正確に再現し、前臨床モデルにおける予測精度を向上させます。これにより、肺癌研究における治療ターゲットのメカニズム的なリスク低減のための、スケーラブルで標準化されたシステムを提供します。
本手法は、創薬から前臨床に至る連続的なプロセスに適合しており、生物学的忠実度の向上を通じて、初期段階のターゲット評価およびリード最適化を可能にします。
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最終更新:29 8月 2026