0 閲覧数 • 4:11 分 • April 30th, 2023
- コロニー形成アッセイは、抗がん剤が半固体培地中で増殖し、増殖してコロニーに分化する抗がん剤のin vitro解析です。まず、RPMI培地にがん細胞に成長サプリメント(ウシ胎児血清、またはFBS、および抗生物質)を播種します。必要な期間、細胞をインキュベートします。
次に、所望の濃度の細胞をマイクロフュージチューブに集め、遠心分離します。ペレットをPBSに再懸濁します。メチルセルロースベースの培地を調製し、FBSを使用してさまざまなチューブに分注して、最適な増殖を促進します。
チューブに適量の細胞懸濁液を添加し、ボルテックスして細胞を培地と混合します。次に、チューブ内に抗がん剤を添加し、DMSOを添加してコントロールを調製します。ボルテックスチューブ。
この細胞混合物を培養プレートに加え、所望の期間インキュベートします。インキュベーション後、臭化メチルチアゾールジフェニルテトラゾリウム(MTT)を加え、しばらくインキュベートします。MTTは、生細胞中の黄色テトラゾリウム塩を紫色のホルマザン結晶に還元します。生存可能なコロニーは紫色に変わります。デジタルカメラで画像を取得し、生存可能なコロニーを解析します。次のプロトコルでは、肺がんにおけるヒドロキシクマリン OT48 および BH3 模倣物の活性を評価するためのコロニー形成アッセイを研究します。
- まず、15ミリリットルのRPMI 1640細胞培養培地に1平方センチメートルあたり20,000個のA549細胞をプレートし、75平方センチメートルのフラスコに10%のFBSと1%の抗生物質を補充します。培養物を摂氏37度および5%CO2でインキュベートする。実験当日は、血球計算盤を用いて細胞濃度を測定します。
1.5ミリリットルの微量遠心チューブに50,000個の細胞を400 Gで7分間遠心分離して収集します。そして、細胞を100マイクロリットルの滅菌1X PBSに再懸濁します。マルチピペットを使用して、1.1ミリリットルの半固体メチルセルロースベースの培地(MCBM)をチューブに分注し、各条件に1本のチューブを準備します。次に、各チューブに110マイクロリットルのFBSを追加します。
次に、ミリリットルあたり1,000個の細胞を播種します。次に、ストックセル溶液2.4マイクロリットルをMCBMおよびFBSのチューブにピペットで移します。細胞を添加した後、チューブを垂直に保持し、最高速度で1分間ボルテックスして、MCBMと細胞を完全に混合します。
次に、試験化合物OT48を単独で、またはA1210477と組み合わせてサンプルに加えます。使用する溶媒のコントロールとして、DMSOなどの別のチューブを準備します。その後、サンプルを1分間ボルテックスします。
各アッセイについて、混合物の1ミリリットルを12ウェル細胞培養プレートの中央ウェルにピペットで入れます。次に、1ミリリットルの滅菌水またはPBSを使用して、空の井戸を満たします。プレートを摂氏37度と5%CO2で10日間インキュベートします。次に、各ウェルに5ミリグラム/ミリリットルのMTTストック溶液を200マイクロリットル加えます。プレートを10分間インキュベートした後、生存可能なコロニーを確認します。
コロニー形成アッセイは、抗がん剤ががん細胞の増殖に及ぼす影響を評価するための極めて重要なin vitro法です。本プロトコルでは、A549細胞を用いて、肺がんにおけるヒドロキシクマリンOT48およびBH3ミメティクスの活性を評価する手順を詳しく説明します。
コロニー形成アッセイは、半固形培地における肺がん細胞の増殖能を測定することにより、抗がん剤の有効性を定量的に再現可能な形で評価する手法です。このアッセイは、化合物がコロニー数およびサイズに及ぼす影響を直接的に比較することを可能にし、前臨床腫瘍学パイプラインにおけるゴー/ノーゴーの意思決定に寄与することで、ターゲットのバリデーションおよびリード化合物の同定を支援します。また、ハイコンテントイメージングや生存染色との互換性があるため、メカニズムのデリスキングやポートフォリオの優先順位付けのためのスクリーニングカスケードへの統合が容易です。
コロニー形成アッセイは、初期の細胞毒性スクリーニングの後、そしてin vivoでの有効性試験に先立って実施される中間的な探索ツールとして機能し、ターゲットへの結合と表現型の結果との間のメカニズム的な関連性を明らかにします。
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最終更新:29 8月 2026