0 閲覧数 • 4:32 分 • April 30th, 2023
- 目的の抗体と結合したヒドロゲルでコーティングされた小さな金部分を有する官能基化されたワイヤーを取ります。ワイヤーの金の部分を腫瘍細胞の入ったバイアルに浸します。ワイヤーストッパーで閉じ、チューブローテーターでインキュベートします。循環腫瘍細胞または表面抗原を示すCTCは、ワイヤー上の抗体に結合します。リン酸緩衝生理食塩水またはPBSを含むバイアルに浸してワイヤーをすすぎ、風乾します。次に、ワイヤーをアセトン溶液に浸して、細胞を脱水して固定します。
次に、機能化された部分が入った状態で、ワイヤーをP200チップにそっと挿入します。蛍光色素と結合した抗体をテープに充填し、ワイヤーを水没させます。これらの標識抗体は、細胞上に存在するそれぞれの抗原に結合します。開口部を実験室用フィルムで密封し、4°Cの暗闇で一晩インキュベートします。次に、ワイヤーをPBSで洗浄し、結合していない抗体を取り除きます。ワイヤーをワイヤーホルダーに入れ、蛍光顕微鏡で観察します。抗体によって結合したCTCは、ワイヤ上で蛍光を発します。次のプロトコールでは、医療用ワイヤーでCTCを捕捉し、免疫蛍光染色により同定します。
- 実験を開始するには、4ミリリットルの完全な培地を使用して、5ミリリットルのバイアルで80%の合流点にあるT75フラスコの全内容物を再懸濁します。次に、ガラスパッケージからワイヤーを取り出します。ワイヤーの官能化金部分をバイアルに浸し、ワイヤーストッパーが5ミリリットルのバイアルに水密にフィットすることを確認します。ワイヤーを実験用フィルムで密封します。次に、チューブローテーターでワイヤーを室温で30分間インキュベートします。回転後、3つの異なる清浄バイアルを使用して、1つの折り畳みPBS溶液でワイヤーを3回すすぎ、ワイヤーが乾くのを待ちます。
フード内でワイヤーを10分間風乾した後、ワイヤーを5ミリリットルチューブの100%アセトン溶液に室温で10分間浸して細胞を固定します。官能基化された先端に微量のアセトンがないことを確認してください。ワイヤーを室温で5分間風乾します。次に、5ミリリットルのチューブで、ワイヤーを1つ折りPBSで2回洗います。ワイヤーを抗体希釈バッファーでインキュベートします。
データシートに指定されているように、蛍光色素と抗体希釈バッファーを結合させたモノクローナル一次抗体の希釈液と150マイクロリットルの抗体混合物を調製します。次に、P200チップを使用してワイヤーストッパーからワイヤーを引き出し、チップの大きい方の穴にワイヤーをそっと挿入します。機能していない端を最初に挿入し、金色の部分が大きな穴のすぐ後ろに来るまで、ワイヤーを小さい方の穴からゆっくりと引っ張ります。150マイクロリットルの抗体ミックスをチップに静かに加えます。
気泡形成のリスクを避けるために、機能化された端が完全に沈むまでワイヤーをゆっくりと回転させます。先端の穴を塞ぎ、穴の周りに実験用フィルムを巻き付けます。ワイヤーを暗所4°Cで一晩垂直にインキュベートします。2日目は、ワイヤーを1折りPBSに2回洗浄して抗体のインキュベーションをブロックします。ワイヤーをワイヤーストッパーに再度挿入します。
本記事では、抗体でコーティングされた機能化ワイヤを用いて循環腫瘍細胞(CTC)を捕捉する方法について説明します。このプロセスでは、ワイヤを腫瘍細胞とともにインキュベートし、続いて免疫蛍光染色を行って結合したCTCを同定します。
機能化された医療用ワイヤーで捕捉した循環腫瘍細胞(CTC)の免疫蛍光アッセイにより、患者の血液から希少な腫瘍細胞をin situで直接同定することが可能になります。このアプローチは、オンコロジーパイプラインにおけるターゲット検証およびメカニズムのデリスキングのための堅牢なプラットフォームを提供することで、創薬の初期段階における極めて重要な課題を解決します。本手法は、初期探索とトランスレーショナルリサーチの接点において予測の信頼性を高め、リスク調整後のポートフォリオ決定を支援します。
この免疫蛍光アッセイは、初期のターゲットバリデーションから前臨床研究に至るオンコロジー創薬の連続的なプロセスに組み込まれており、翻訳バイオマーカーとしてのCTCの直接測定を可能にします。
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最終更新:22 8月 2026