メチルセルロースベースのCFUアッセイ:白血病細胞のコロニー形成に対する抗癌化合物の影響を決定する方法

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- 時々、幹細胞または前駆細胞が突然変異を起こし、白血病性幹細胞が生じます。これらの細胞では、特定のタンパク質がアップレギュレーションされており、そのようなタンパク質に対して抗がん剤を使用すると、細胞の成長を制御するのに役立ちます。これらの抗がん化合物の効果は、形成されたコロニーの数とサイズをモニタリングすることにより、CFUアッセイを用いて分析することができます。

まず、白血病マウスから前駆細胞を採取し、適切な培地で希釈します。この細胞懸濁液を適切な抗がん化合物とともに、マウス特異的サイトカインを含むメチルセルロースに加え、ペトリ皿に注ぎます。コロニーが現れるまでこの混合物をインキュベートします。メチルセルロースは化学的に不活性な半固体マトリックスで、細胞の移動を防ぎ、サイトカインは前駆細胞を刺激して分化させ、認識可能な子孫を含むコロニーを形成します。

次に、ヨードニトロテトラゾリウムクロリド(INT)を使用してコロニーを染色し、コロニーが暗赤褐色に変わるまで一晩インキュベートします。ミトコンドリア酵素は、黄色のINTを赤褐色のホルマザン色素に還元します。最後に、プレート上に存在するコロニーを特定してカウントします。次のプロトコルでは、YFP陽性細胞に対する抗がん化合物の効果をテストするためにCFUアッセイを実施します。

- まず、メチルセルロースをサイトカインでマウス用室温で解凍します。次に、3ミリリットルのメチルセルロースをFACSチューブに分注します。適切な阻害剤を含む100マイクロリットルの細胞懸濁液を3ミリリットルのメチルセルロースに加えます。次に、サスペンションを10〜30秒間高でボルテックスします。

ほとんどの気泡が逃げた後、1ミリリットルのシリンジを使用して、1ミリリットルのメディアを3つの複製プレートにプレートします。プレートを大きなシャーレに入れ、滅菌水が入った1つの開いたディッシュに入れます。次に、大きなシャーレに蓋をして、細胞を摂氏37度でインキュベートします。

10ミリグラムの塩化ヨードニトロテトラゾリウムを10ミリリットルの水に溶解することにより、塩化ヨードニトロテトラゾリウム染色を調製します。0.2 μmフィルターを装備したLuer-Lokシリンジで染色液をフィルター滅菌します。

組織培養フードに、100マイクロリットルの染色液をCFUプレートの周囲に滴下します。次に、プレートを細胞培養インキュベーターで摂氏37度で一晩インキュベートします。最後に、コロニーが濃い赤茶色に変わった後、無菌組織培養フードの白い背景を使用して、染色されたCFUプレートの写真を撮ります。

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最終更新:1 8月 2026