蛍光標識T-ALL細胞の単離:成体ゼブラフィッシュからT-ALL細胞を単離する方法

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- T細胞性急性リンパ芽球性白血病(T-ALL)は、リンパ球が成熟せず、リンパ芽球と呼ばれる未熟な細胞として残るときに発生するがんの一種です。これらの異常な細胞は、感染と戦うのに効果がありません。これらの未熟な細胞は急速に分裂するため、健康な血液細胞の数を上回り、脾臓、肝臓、中枢神経系などの臓器に移動することができます。

ゼブラフィッシュの腫瘍は、ヒトに形成される腫瘍と似ています。したがって、ゼブラフィッシュはT-ALL腫瘍細胞を生成するための好ましいモデルです。

まず、腫瘍細胞の広がりを示す蛍光シグナルを示す形質転換魚を選択します。安楽死させた魚の頭を取り除き、体腔をヘパリン溶液で洗って余分な赤血球を取り除きます。次に、適切なバッファーを体腔に注入します。外部から穏やかな圧力をかけ、腫瘍細胞を含むバッファーをマイクロフュージチューブに集めます。

細胞をトリパンブルーで染色し、顕微鏡で観察します。生きた腫瘍細胞は、トリパンブルーで染色すると蛍光色で無色に見えますが、これは負に帯電した細胞膜が負のトリパンブルーが細胞内に侵入するのを排除するためです。トリパンブルーは多孔質膜を通って死んだ細胞に入り込み、死細胞を青く染色します。次のプロトコルでは、成体ゼブラフィッシュからGFP標識T-ALL腫瘍細胞を単離します。

- 0.9X PBS中に20ミリリットルの10%熱不活化FBSを調製します。300ユニットの抗凝固剤を含むヘパリンナトリウム塩のバイアルに1ミリリットルのFBS / PBS溶液を追加します。.次に、エピ蛍光顕微鏡を使用して、腫瘍細胞が体の50%に浸潤している魚、または食事や水泳が困難であると特定された魚を選択します。

魚を魚水中のトリカイン1ミリリットルあたり1〜2ミリグラムの溶液に移すことにより、魚を安楽死させます。動物の動きと心拍を観察して、安楽死を確認します。

魚の頭を取り除いた後、ピペットで100マイクロリットルのヘパリン溶液を体腔に注入して、余分な赤血球を取り除きます。注ぎ出されたすべての液体を吸引し、1.5ミリメートルの微量遠心チューブにピペットで入れます。次に、新しいピペットチップを使用して、体腔をさらに2回、または洗浄液に血液が含まれなくなるまで洗浄し、すべての洗浄から収集した液体を廃棄します。

白血病細胞を採取するには、100マイクロリットルのFBS-PBS溶液を予め洗浄した体腔に注入します。解剖顕微鏡で、ピペットの先端で魚の体に穏やかな圧力をかけ、腫瘍細胞を押し出します。放出された液体を1.5ミリリットルの微量遠心チューブに集めます。腫瘍細胞の大部分が採取されるまで、単離を繰り返します。

すべての細胞を同じ1.5ミリリットルの微量遠心チューブに集め、得られた懸濁液を室温に保ちます。次に、分離された腫瘍細胞をピペッティングで穏やかに混合し、細胞塊を解離します。細胞懸濁液を40μmメッシュフィルターでろ過し、100μLのFBS-PBSでフィルターを1〜2回洗浄します。

ろ過したら、細胞を室温に保ちます。最後に、新しいチューブで、2マイクロリットルの細胞懸濁液を18マイクロリットルの0.04%滅菌トリパンブルー溶液と混合します。得られた懸濁液の10マイクロリットルを血球計算盤にロードし、生存可能な蛍光腫瘍細胞をカウントします。

- T-ALL細胞のクリーンなサンプルを採取することが重要です。ここで使用されているHoechst 33342の濃度は、収集された生腫瘍細胞の数に基づいています。追加の細胞破片または非腫瘍細胞がアッセイに干渉する可能性があります。

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最終更新:15 8月 2026