DCFH-DA染色によるROS検出:結腸直腸癌細胞株の総ROSの測定

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- 活性酸素種は、主にミトコンドリアから電子が漏れ出すときに生成されます。これらの電子は分子状酸素と結合し、さまざまな活性酸素種(ROS)を引き起こします。がん細胞では、活性酸素が過剰に産生されています。これらの反応性の高いROS分子は、細胞内の膜、タンパク質、DNAに酸化的に損傷を与える可能性があります。

ROSレベルの上昇はDNAを損傷し、発がん性シグナル伝達経路の活性化を引き起こし、がんの進行を引き起こします。そのため、がん細胞が産生する活性酸素の量を検出することが重要です。

まず、ヒト大腸がん由来のがん細胞を適切な培地で採取します。次に、これらの細胞をマルチウェルプレートに播種し、DCFH-DA溶液を添加します。プレートを所望の期間インキュベートします。DCFH-DAは細胞膜を通過します。細胞内に入ると、DCFH-DAは細胞エステラーゼ酵素の存在下でDCFHに変換されます。また、活性酸素種によるDCFHの酸化により、緑色蛍光分子が得られます。

細胞を蛍光顕微鏡で観察します。緑色の蛍光の強度は、細胞内の活性酸素種のレベルを示しています。次のプロトコールでは、DCFH-DA色素を使用して、結腸直腸癌細胞の活性酸素種を染色します。

- 細胞を染色するには、薬剤を含む培地を取り除き、DMEMで一度洗浄します。500マイクロリットルのDCFH-DAワーキング溶液を各ウェルに加え、プレートを摂氏37度で30分間インキュベートします。インキュベーション後、DCFH-DAをウェルから取り出し、DMEMで2回、PBSで1回洗浄します。

次に、各ウェルに500マイクロリットルのPBSを追加します。蛍光顕微鏡で緑色蛍光タンパク質チャンネルを使用して、細胞の代表的な画像を撮影します。次に、PBSを取り外し、200マイクロリットルの放射性免疫沈降アッセイバッファーを各ウェルに加えます。

プレートを氷上で5分間インキュベートし、細胞ライセートを1.5ミリリットルのチューブに集めます。チューブを21,130 x gで摂氏4度で10分間遠心分離します。次に、100マイクロリットルの上清を黒い96ウェルプレートに移します。励起波長485ナノメートル、発光波長530ナノメートルのマイクロプレートリーダーを使用して、各ウェルの蛍光を測定します。

次に、100マイクロリットルのタンパク質アッセイ溶液を含む透明な96ウェルプレートに1マイクロリットルの上清を移すことにより、Bradfordアッセイでタンパク質濃度を測定します。タンパク質濃度を使用して、蛍光強度を正規化します。

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最終更新:29 8月 2026