0 閲覧数 • 3:50 分 • April 30th, 2023
- 活性酸素種は、主にミトコンドリアから電子が漏れ出すときに生成されます。これらの電子は分子状酸素と結合し、さまざまな活性酸素種(ROS)を引き起こします。がん細胞では、活性酸素が過剰に産生されています。これらの反応性の高いROS分子は、細胞内の膜、タンパク質、DNAに酸化的に損傷を与える可能性があります。
ROSレベルの上昇はDNAを損傷し、発がん性シグナル伝達経路の活性化を引き起こし、がんの進行を引き起こします。そのため、がん細胞が産生する活性酸素の量を検出することが重要です。
まず、ヒト大腸がん由来のがん細胞を適切な培地で採取します。次に、これらの細胞をマルチウェルプレートに播種し、DCFH-DA溶液を添加します。プレートを所望の期間インキュベートします。DCFH-DAは細胞膜を通過します。細胞内に入ると、DCFH-DAは細胞エステラーゼ酵素の存在下でDCFHに変換されます。また、活性酸素種によるDCFHの酸化により、緑色蛍光分子が得られます。
細胞を蛍光顕微鏡で観察します。緑色の蛍光の強度は、細胞内の活性酸素種のレベルを示しています。次のプロトコールでは、DCFH-DA色素を使用して、結腸直腸癌細胞の活性酸素種を染色します。
- 細胞を染色するには、薬剤を含む培地を取り除き、DMEMで一度洗浄します。500マイクロリットルのDCFH-DAワーキング溶液を各ウェルに加え、プレートを摂氏37度で30分間インキュベートします。インキュベーション後、DCFH-DAをウェルから取り出し、DMEMで2回、PBSで1回洗浄します。
次に、各ウェルに500マイクロリットルのPBSを追加します。蛍光顕微鏡で緑色蛍光タンパク質チャンネルを使用して、細胞の代表的な画像を撮影します。次に、PBSを取り外し、200マイクロリットルの放射性免疫沈降アッセイバッファーを各ウェルに加えます。
プレートを氷上で5分間インキュベートし、細胞ライセートを1.5ミリリットルのチューブに集めます。チューブを21,130 x gで摂氏4度で10分間遠心分離します。次に、100マイクロリットルの上清を黒い96ウェルプレートに移します。励起波長485ナノメートル、発光波長530ナノメートルのマイクロプレートリーダーを使用して、各ウェルの蛍光を測定します。
次に、100マイクロリットルのタンパク質アッセイ溶液を含む透明な96ウェルプレートに1マイクロリットルの上清を移すことにより、Bradfordアッセイでタンパク質濃度を測定します。タンパク質濃度を使用して、蛍光強度を正規化します。
本研究では、大腸がん細胞における活性酸素種(ROS)の産生とそのがん進行における役割を調査します。手法として、がん細胞をDCFH-DAで染色し、蛍光顕微鏡を用いてROSレベルを測定します。
大腸がん細胞株における総活性酸素種(ROS)の定量的な検出は、腫瘍学における創薬研究でのメカニズムのリスク低減およびターゲットバリデーションを可能にします。DCFH-DA染色ワークフローは、標準化され再現性のあるROS測定を提供し、初期段階のがん生物学プログラムにおける予測の信頼性を高めます。この機能は、酸化ストレスを腫瘍形成シグナルおよび疾患の進行に関連付けることで、ポートフォリオの選別と優先順位付けに寄与します。
DCFH-DAを用いたROS検出アッセイは、基礎研究から前臨床への一連の流れに組み込むことができ、がん細胞モデルにおける強固な仮説検証および定量的なパスウェイ解析を可能にします。
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最終更新:29 8月 2026