Name: 活性骨髄由来マクロファージとBradyzoite条件におけるトキソプラズマのシスト壁形成 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-08-12T17:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 56 s
Description: 学ぶ Toxoplasma gondiiのシスト壁形成誘導法。マクロファージと線維芽細胞を用いたin vitro培養系で、pH変化やマクロファージ活性化によるストレス応答を可視化する手法を解説。蛍光レクチンを用いた免疫蛍光顕微鏡法でシスト壁を観察し、寄生虫の宿主細胞内での挙動を解析する。

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この作品は、ウィスコンシン大学マディソンハーマンI.シャピロ識別大学院フェローシップ（CMT）、NIHの賞AI072817（AMP）とアメリカ心臓協会賞0840059N（LJK）の大学によってサポートされていました。

1。ヒト包皮線維芽細胞（HFF）でコーティングされたカバースリップの準備<ol><li> 24ウェル組織培養プレートのウェルの底に滅菌円形のガラスのカバースリップを配置。 </li><li>コンフルエント150センチメートル2フラスコからHFFsを回収するために、1 × PBSで2回フラスコを洗い、0.025％トリプシン- EDTA 2.5 mlを加える。 ℃で5〜10分間37℃でフラスコをインキュベートする。 </li><li>手のひらに対してフラスコの側面をタップすると、フラスコから細胞を切り離すに役立ちます。細胞がフラスコから放出したら、HFF培地（ダルベッコ改変イーグル培地[DMEM] 10％のFBS、2mMのL -グルタミン、及び1％ペニシリン - ストレプトマイシン）の150mlを追加し、フラスコを洗浄し、収集する培地を使用して細胞。 </li><li>カバースリップとウェルあたりの細胞を1 mlを分注する。 </li><li>細胞は37℃、5％CO 2コンフルエントになることができます。 </li></ol> 2。 BMC開発のためのL929条件培地（CM）を準備<ol><li> L929は、コンフルエントの長い期間の後に刺激因子、マクロファージコロニーを分泌するマウス異数体の線維肉腫細胞株です。この分泌は、細胞培養1のマクロファージにマウスの骨髄細胞を開発するために使用するL929細胞からのCMが可能になります。 </li><li> L929細胞がコンフルエントになれば、彼らは球状に表示され、フラスコを持ち上げ始めるまで、彼らは追加の7から9日間インキュベートてみましょう。上清とペレットを10分間425 xgで任意の剥がれた細胞を集める。この上清はCMです。 </li><li> L929細胞の一つ150センチメートル2フラスコは、BMCの培地150mlを生成するCMの30mlを、得られます。 BMC培地を10％FBS、DMEMに20％のCM、1％ペニシリン - ストレプトマイシン、および1％L -グルタミンで構成されています。 </li></ol> 3。骨髄とBMCの細胞培養の分離<ol><li> CO 2窒息と表面を70％エタノールで消毒して、1つC57BL / 6マウスを生け贄に捧げる。 </li><li>足の近くに腹部の皮膚を持ち上げ、ハサミで切断して腹膜を公開。腹膜腔を穿刺することは避けてください。脛骨と大腿骨を露出させる足に減らす。はさみを使って脚の骨から筋肉組織をカット。 </li><li>大腿骨を削除するには、一度膝の下に、一度腰の近くにカット。冷1X PBSを含む細菌ペトリ皿に骨を置きます。 BMCは恒久的に付着するので、これらのステップのためのペトリ皿を扱う組織培養を使用しないでください。余分な筋肉組織を掻きにメスを使用してください。骨髄を公開するだけで膝の上に骨を切る。 </li><li>リピート工程（b）と（c）第2大腿骨から骨髄を収集する。 </li><li>冷1X PBS及び50 mlコニカルチューブに骨髄を取り除くために25ゲージの針で満たされた10ccの注射器を使用してください。骨は、純粋な白色度骨髄が削除され表示されます。 </li><li>どんな骨髄凝集体を分割するために22ゲージの針を通してPBS /骨髄の混合物を渡します。 </li><li> 10分間425 × gで混合物を回転させ、上清を取り除く。 </li><li> BMCの培地8 mlにペレットを再懸濁する。 8細菌ペトリ皿に細胞懸濁液と9ミリリットルのBMC培地1mlを追加。 </li><li> 37℃、5％CO 2。 </li><li> 5日目に、各プレートに10ミリリットルのBMC培地を加える。 7日目までに、細胞は完全に開発される。 BMCは、成熟後1-2週間継代培養することができます。 </li><li> BMCが分割するには、培地を除去し、各シャーレに冷1 × PBS 5 mlを加える。 4℃でインキュベート℃で30分間を、細胞は持ち上げる始めるまで。無菌トランスファーピペットを用いてプレートからするBMCをすすぐ。 </li><li> 10分間、425 × gで50 mlコニカルチューブとペレットのプールBMCが。 </li><li> 10ミリリットルのBMC培地と血球計でカウントにペレットを再懸濁する。底の丸いガラス製カバースリップで24ウェルプレートにウェル当たり2 × 10 5シードBMCは。 BMCははT.で感染する前に一晩付着してみましょう原虫。超過BMCは、後で使用するためのペトリ皿に播種することができます。 </li></ol> 4。 T.と感染細胞トキソプラズマ原虫 <ol><li> 2 × 10 6 TでコンフルエントHFFsの25cm 2のフラスコに感染原虫と細胞が溶解し始めるまでに成長（約2〜3日）。 </li><li>組織培養フラスコから感染した宿主細胞の単層を除去するために、セルスクレーパーを使用して、その後、27ゲージの針を通して外れた単分子層を渡すことによって、宿主細胞から寄生虫を離します。 </li><li>培地中の寄生虫の数を決定するために血球計数器を使用してください。 </li><li>プロトコル1、またはプロトコル3からBMCはからHFF単分子膜のカバーで、ウェル当たり10 5寄生虫に感染する。寄生虫は、37℃で3時間に侵入° C、5％CO 2をしましょう。 </li></ol> 5。 T.を開始環境ストレスによる原虫 bradyzoite開発<ol><li>培地のpHの上昇とCO 2飢餓とHFFsでBradyzoiteの開発<ol class="lalpha"><li>開発の培地を準備する。開発の培地には、RPMが含まれています私炭酸なしの1640、1％FBS、1％ペニシリン - ストレプトマイシン、および42 mMのHEPES。 〜8.0と殺菌フィルター。 </li><li>感染HFFsからDMEMを除去、1X PBSですすぎ、および開発の培地を1mlを加える。 </li><li>周囲の空気を37℃で3日間Cインキュベートする。 </li></ol></li><li> BMCの活性化<ol class="lalpha"><li> BMCが活性化するメディアを準備します。アクティベーション培地は、100U/mlのIFN -γおよび100 ng / mlのLPSを添加したBMCの媒体です。凝集を妨害するために使用する前に2分間水浴でLPSを超音波処理してください。 </li><li>井戸からBMC培地を除去し、活性化培地1mlで交換してください。 </li><li> 37℃、3日間5％CO 2を 。 </li></ol></li></ol> 6。免疫蛍光検出<ol><li> 1X PBSでウェルを三回感染リンス。 </li><li> 20分間3％ホルムアルデヒドの200ulで単層を修正。 </li><li>固定液を取り出して、1 × PBSをウェルの中にすすいでください。 </li><li>ウェルに0.1 Mグリシン200μlのを追加し、5分間放置します。 </li><li>グリシンを削除し、1X PBSでウェルをリンス。 </li><li> 30分間単分子層を透過し、ブロックするために3％の250μlのBSA/0.2％1X PBSでTritonX - 100を追加。 </li><li>ブロッキング溶液を除去し、1 × PBSでウェルを洗ってください。 </li><li> BSA/0.2％のトリトンX - 100 1X PBSで3％ローダミンDolichos biflorusアグルチニンの1:250希釈の50μlを追加。 </li><li> 1時間室温でプラットフォームシェーカー上プレートと場所をカバー</li><li> 0.2％のカバーグラスを3回洗浄トリトン各プラットフォームシェーカー上で5分間、1 × PBSでX - 100。 </li><li> 4'6 -ジアミジノ-2 - フェニルインドール（DAPI）を含むVectaShieldマウンティング培地を使用してマウントカバースリップ。 </li><li>ステンドT.トキソプラズマは、100倍の倍率でローダミン用のフィルターを適切な蛍光顕微鏡を用いて可視化することができます。 </li></ol> 7。代表的な結果図1は、Tの代表的なDBAの染色を示しています。 pHのストレス下で活性化さBMMsとHFFsの原虫 。寄生虫の周りの両方のshowのDBA染色は、嚢胞壁成分の存在を示す、空胞を含む。アクティブBMMイメージは液胞の表面と一致しているDBA染色を示す。 T.の断面pHの原虫は HFFsはステンドのない内部構造を持つ嚢胞壁を示して強調した。 <img src="/files/ftp_upload/2091/2091fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 図1。ストレスT.のDBA染色ストレス状態、活性化BMMsまたはpH下で原虫。細胞内寄生虫は、HFFsを強調したローダミン共役DBA（赤）で染色した。微分干渉コントラスト（DIC）は、嚢胞の概要を示すと黒のスケールバーは2μmに等しくなります。 動物実験動物実験は、ウィスコンシン大学の動物実験委員会が定めるガイドラインおよび規則に従って行った。

<ol><li>Tomida, M., Yamamoto-Yamaguchi, Y., Hozumi, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification+of+a+factor+inducing+differentiation+of+mouse+myeloid+leukemic+M1+cells+from+conditioned+medium+of+mouse+fibroblast+L929+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Purification of a factor inducing differentiation of mouse myeloid leukemic M1 cells from conditioned medium of mouse fibroblast L929 cells.</a> J Biol Chem. 259 (17), 10978-10980 (1984).</li>
<li>Matrajt, M., Donald, R. G., Singh, U., Roos, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+characterization+of+differentiation+mutants+in+the+protozoan+parasite+Toxoplasma+gondii%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Identification and characterization of differentiation mutants in the protozoan parasite Toxoplasma gondii.</a> Mol Microbiol. 44, 735-747 (2002).</li>
<li>Singh, U., Brewer, J. L., Boothroyd, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+analysis+of+tachyzoite+to+bradyzoite+differentiation+mutants+in+Toxoplasma+gondii+reveals+a+hierarchy+of+gene+induction%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Genetic analysis of tachyzoite to bradyzoite differentiation mutants in Toxoplasma gondii reveals a hierarchy of gene induction.</a> Mol Microbiol. 44, 721-733 (2002).</li>
<li>J, P., Knoll, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+Toxoplasma+gondii+development+mutants+identifies+a+potential+proteophosphogylcan+that+enhances+cyst+wall+formation.+Molecular+and+Biochemical+Parasitology%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Isolation of Toxoplasma gondii development mutants identifies a potential proteophosphogylcan that enhances cyst wall formation. Molecular and Biochemical Parasitology.</a> 169 (2), 120-123 (2010).</li>
<li>Bohne, W., Heesemann, J., Gross, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+Bradyzoite-Specific+Toxoplasma+gondii+Antigens+in+Gamma+Interferon-Treated+Mouse+Macrophages%5BTitle%5D)+AND+%22Infection+and+Immunity%22%5BJournal%5D)">Induction of Bradyzoite-Specific Toxoplasma gondii Antigens in Gamma Interferon-Treated Mouse Macrophages.</a> Infection and Immunity. 61 (3), 1141-1145 (1993).</li>
<li>Ibrahim, H. M., Bannai, H., Xuan, X., Nishikawa, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toxoplasma+gondii+Cyclophilin+18-Mediated+Production+of+Nitric+Oxide+Induces+Bradyzoite+Conversion+in+a+CCR5-Dependent+Manner%5BTitle%5D)+AND+%22Infection+and+Immunity%22%5BJournal%5D)">Toxoplasma gondii Cyclophilin 18-Mediated Production of Nitric Oxide Induces Bradyzoite Conversion in a CCR5-Dependent Manner.</a> Infection and Immunity. 77 (9), 3686-3695 (2009).</li>
<li>Lyons, R. E., McLeod, R., Roberts, C. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toxoplasma+gondii+tachyzoite-bradyzoite+interconversion%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Parasitology%22%5BJournal%5D)">Toxoplasma gondii tachyzoite-bradyzoite interconversion.</a> Trends in Parasitology. 18 (5), 198-201 (2002).</li>
<li>Berghaus, L. J., Moore, J. N., Hurley, D. J., Vandenplas, M. L., Fortes, B. P., Wolfert, M. A., Boons, G. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Innate+immune+responses+of+primary+murine+macrophage-lineage+cells+and+RAW+264.7+cells+to+ligands+of+Toll-like+receptors+2%2C+3%2C+and+4%5BTitle%5D)+AND+%22Comp+Immunol+Microbiol+Infect+Dis%22%5BJournal%5D)">Innate immune responses of primary murine macrophage-lineage cells and RAW 264.7 cells to ligands of Toll-like receptors 2, 3, and 4.</a> Comp Immunol Microbiol Infect Dis. , (2009).</li>
<li>Mordue, D. G., Scott-Weathers, C. F., Tobin, C. M., Knoll, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+patatin-like+protein+protects+Toxoplasma+gondii+from+degradation+in+activated+macrophages%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Microbiol%22%5BJournal%5D)">A patatin-like protein protects Toxoplasma gondii from degradation in activated macrophages.</a> Mol Microbiol. 63 (2), 482-496 (2007).</li>
<li>Bohne, W., Heesemann, J., Gross, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reduced+replication+of+Toxoplasma+gondii+is+necessary+for+induction+of+bradyzoite-specific+antigens%3A+a+possible+role+for+nitric+oxide+in+triggering+stage+conversion%5BTitle%5D)+AND+%22Infection+and+Immunity%22%5BJournal%5D)">Reduced replication of Toxoplasma gondii is necessary for induction of bradyzoite-specific antigens: a possible role for nitric oxide in triggering stage conversion.</a> Infection and Immunity. 62 (5), 1761-1777 (1994).</li>
</ol>

利害の衝突は宣言されません。

T.のbradyzoiteの発展のメカニズムは完全には理解されていませんが、分子遺伝学的解析組織培養における原虫のステージの変換には、bradyzoite嚢胞形成2,3,4に関与する遺伝子の発見につながっている。分析はまた、いくつかのbradyzoiteマーカーは活性化マクロファージ5,6の成長を含む他の長引くストレス状態で発現されるという観察につながった。上記の方法ではTを成長させる方法について説明します原虫と誘導開発されたBMCとHFFs両方でDBA正嚢胞壁の構造。これらの結果は、嚢胞の開発経路が異なるストレス刺激によって誘導されることがハイライト。 ので、T.ゴンは、温血動物のホストからのほぼすべての有核細胞に成長できる、多くの細胞型はT.を成長させるために使用することができます。 in vitroでの原虫 。彼らは細胞株を阻害した接触なのでHFFsは、このプロトコルで使用されていた。細胞培養のbradyz...

<table><tbody><tr><td>牛血清アルブミン (BSA)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7906</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco&amp;rsquo;s Modified Eagle Medium (DMEM)</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>11960-051</td><td></td></tr><tr><td>胎牛血清 (FBS)</td><td>Atlanta Biologicals</td><td>S11150</td><td>非動化処理済み</td></tr><tr><td>ロダミン &lt;em&gt;Dolichos biflorus&lt;/em&gt; アグルチニン</td><td>Vector Laboratories</td><td>RL-1032</td><td></td></tr><tr><td>ホルムアルデヒド (16%)</td><td>Polysciences, Inc.</td><td>18814</td><td></td></tr><tr><td>グリシン</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP381-5</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP310-1</td><td></td></tr><tr><td>IFN&amp;#947;</td><td>PeproTech Inc</td><td>315-05</td><td>1回分ずつ分注して保存</td></tr><tr><td>L-グルタミン (200mM)</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>25030</td><td></td></tr><tr><td>リポ多糖 (LPS)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L4391-1MG</td><td>1回分ずつ分注して保存</td></tr><tr><td>顕微鏡用カバーガラス</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-545-80 12CIR-1</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン-ストレプトマイシン</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>15140</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640 培地粉末 (L-グルタミン含有、重炭酸塩不含)</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>31800-022</td><td></td></tr><tr><td>Triton-X-100</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP151-500</td><td></td></tr><tr><td>トリプシン-EDTA (0.25%)</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>25200</td><td></td></tr><tr><td>VectaShield DAPI含有封入剤</td><td>Vector Laboratories</td><td>H-1200</td><td></td></tr></tbody></table>

活性骨髄由来マクロファージとbradyzoite条件におけるトキソプラズマのシスト壁形成

Toxoplasma gondii Cyst Wall Formation in Activated Bone Marrow-derived Macrophages and Bradyzoite Conditions

トキソプラズマ原虫は、温血動物の任意の有核細胞に侵入することができる偏性細胞内寄生体である。感染中に、T.原虫は tachyzoiteと呼ばれる高速な複製形態として発信しています。タキゾイトはよく特徴付けされていないシグナル伝達過程でbradyzoiteと呼ばれる成長が遅い被嚢の形に変換する。動物の中で、bradyzoite嚢胞は中枢神経系と筋肉組織で発見し、感染症の慢性期を表しています。 bradyzoitesへの変換は、高pH、またはインターフェロンγ（IFNγ）の添加により培地を用いて、CO 2飢餓による組織培養でシミュレーションを行うことができます。 Bradyzoitesは、レクチンがDolichos biflorus凝集素（DBA）が結合する嚢胞の壁の存在によって特徴付けられる。蛍光標識されたDBAは、低CO 2と高pHの培地にさらされたヒト包皮線維芽細胞（HFFs）で成長させた寄生虫の嚢胞壁を可視化するために使用されます。 BMMsがIFNγとリポ多糖（LPS）で活性化された後、同様に、内に存在する寄生虫は、マウス骨髄由来マクロファージ（BMMs）は、DBAによって検出可能な嚢胞壁が表示されます。このプロトコルは、Tの変換を誘導する方法を紹介します低CO 2とBMMsの活性化と高pHの増殖培地を使用してbradyzoitesに原虫 。宿主細胞は、カバースリップ上で培養タキゾイトに感染し、どちらかのIFNγとLPS（BMMs）の添加により活性化または三日間高pHの増殖培地（HFFs）に公開されます。感染症が完了すると、宿主細胞は、固定透過性、およびブロックされます。嚢胞壁は、蛍光顕微鏡とローダミンのDBAを使用して視覚化されます。

トキソプラズマ原虫は、組織培養モデルで模倣することができる環境ストレスに応答して嚢胞フォームに変換します。このビデオでは、骨髄由来のマクロファージや線維芽細胞の変化、増殖培地のpHを活性化することにより、嚢胞壁の形成を調べるためのテクニックを示しています。

活性骨髄由来マクロファージとBradyzoite条件におけるトキソプラズマのシスト壁形成

Toxoplasma gondiiは、温血動物のあらゆる有核細胞に侵入することができる偏性細胞内寄生虫である。感染 during 、T. gondiiは...

本手順の全体的な目的は、in vitro において Toxoplasma gondii のシスト壁形成を誘導し、可視化することです。これは、まずマクロファージと線維芽細胞を培養することによって達成されます。次に、これらの宿主細胞に寄生虫を感染させ、pHによる線維芽細胞への刺激またはマクロファージの活性化によって、寄生虫にストレス応答を誘導します。これにより、いずれの場合もシスト壁が形成されます。最後に、シスト壁に結合する蛍光レクチンを培養液に添加し、免疫蛍光顕微鏡でシストを可視化します。こんにちは。ウィスコンシン大学マディソン校医学微生物学・免疫学部、Dr.Laura Noelの研究室のCrystal Tobinです。No Labのアンジェラ・ポラードです。本日は、in vitroにおけるToxoplasma gondiiのシスト壁形成の手順について解説します。当研究室では、ストレス条件下における寄生虫の応答を研究するためにこの手法を用いています。それでは、始めていきましょう。まず、24ウェル組織培養プレートの各ウェルの底に、滅菌済みの円形ガラスカバースリップを配置します。これにより、高pHおよび二酸化炭素飢餓条件下で、ヒト前皮線維芽細胞におけるToxoplasma gondiiのブラディゾイトへの分化を誘導します。組織培養用フード内で、コンフルエントになった150 cm²フラスコのヒト前皮線維芽細胞から開始してください。コンフルエントになったヒト包皮線維芽細胞のフラスコを1xPBSで2回洗浄し、0.025%トリプシンEDTAを2.5 mL加えます。フラスコを37 °Cで5〜10分間インキュベートします。5〜10分間のインキュベーション後、フラスコを数回軽く叩き、プラスチック表面から細胞を遊離させます。次に、150 millilitersのHFF培地またはサプリメント添加delcos modified eagles mediumを加えます。この培地を用いてフラスコを洗浄し、細胞を回収します。カバーガラスを入れた24 well plateの各ウェルに細胞を1 milliliterずつ分注し、37 °C、5% carbon dioxideの条件下で細胞をコンフルエントになるまで培養します。これで細胞はToxoplasma Gandhi寄生虫を感染させる準備が整いました。ティッシュカルチャーフード内で、コンフルエント状態になった25 square centimeterのフラスコ内のヒト包皮線維芽細胞に2×10⁶個の寄生虫を感染させ、細胞が溶解し始めるまで37 °Cでインキュベートします。約2〜3日後、セルスクレイパーを使用して、ティッシュカルチャーフラスコから感染した包皮線維芽細胞の単層を除去します。次に、剥離させた単層を27ゲージの針に通して、宿主細胞から寄生虫を放出させます。血球計数器を用いて培地中の寄生虫数を算出し、あらかじめ準備しておいたコンフルエントなヒト前皮線維芽細胞の24ウェルそれぞれに、10⁵個の寄生虫を感染させます。寄生虫が宿主細胞に侵入するように、細胞を37°C、5% carbon dioxideで3時間インキュベートします。次に、寄生虫をBrady Zeolite期へ分化誘導します。感染させたヒト前皮線維芽細胞からDMEMを除去します。それらを1回XPBSで洗浄し、次いで1 mLの発色培地を添加します。これは、pH 8に調整した重炭酸塩を含まないRPMIベースの培地です。細胞を37 °Cの室温空気下で3日間インキュベートします。これで、細胞中のBradyzoitesの有無を解析する準備が整いました。Bradyzoitesの存在は、Toxoplasma gondiiのシスト壁に結合する蛍光標識レクチンのDolichos biflorus agglutinin（DBA）を用いて判定します。蛍光イメージングに向けて感染細胞を調製するため、ウェルを1×PBSで3回洗浄します。次に、3% formaldehyde 200 µLを用いて細胞単層を20分間固定します。固定液を除去し、ウェルをXPBSで1回洗浄します。0.1 molar glycine 200 µLをウェルに加え、5分間静置します。グリシンを除去し、ウェルをXPBSで1回洗浄して、細胞のブロッキングおよび透過処理を行います。ブロッキング溶液を250 µL加えます。細胞を30分間インキュベートします。ブロッキング溶液を除去し、ウェルを1回XPBSで洗浄します。ルミン（rumine）を結合させたDBAの1/250希釈液を50 µL、各ウェルに加えます。プレートに蓋をし、室温でプラットフォームシェーカーを用いて1時間振盪します。インキュベーション後、カバースリップを1×PBS中の0.2% Triton X 100で5分間ずつ3回、プラットフォームシェーカーを用いて洗浄し、蛍光標識されたDBAを除去します。最後に、DPIを含むBeta Shield封入剤を用いてカバースリップを封入します。染まった細胞は、ロダミンに適したフィルターを備えた蛍光顕微鏡を用いて、100倍の倍率で観察できます。Brady ZO形成を誘導する代替法として、インターフェロンγおよびリポポリサッカライド（LPS）を用いて感染した骨髄由来マクロファージを活性化させる方法があります。まず、このプロセスのためにL 929コンディショニング培地を調製します。L 9 29は、長期間のコンフルエンス後にマクロファージコロニー刺激因子を分泌する、応用線維肉腫細胞株である。この条件化培地は、細胞培養においてマウス骨髄細胞をマクロファージへと分化させるために使用できる。条件化培地を調製するには、L 9 2 9細胞を150 cm²のフラスコで37 °Cでコンフルエンスまで増殖させる。その後、細胞が球状になり、フラスコの表面から剥離し始めるまで、さらに7〜9日間インキュベートする。培地と剥離した細胞を50 mLチューブに回収し、420 ×gで10分間遠心分離します。得られた上清がコンディション培地となります。L 9 29細胞を播種した150 cm²フラスコ1本から30 mLのコンディション培地が得られ、これは150 mLのBMC培地を調製するのに必要な量です。BMC調製に使用するL 9 29細胞用のDMEMをあらかじめ準備しておくことを忘れないでください。骨髄細胞の単離方法を詳しく示したビデオプロトコルを視聴してください。マウス大腿骨については、採取したBMCを5日間培養した後、以下のビデオプロトコルを視聴してください。細菌学用ペトリ皿に、L 9 2 9細胞の条件付き培地を含むBMC培地を10 millilitersずつ加え、さらに2日間培養すると、細胞が完全に分化します。成熟した骨髄由来マクロファージ（BMS）は、成熟後1〜2週間にわたって継代することが可能です。BMSを分離させるため、培地を除去し、4°Cでインキュベートした冷たい1×PBSを5mL加え、細胞が剥がれ始めるまで30分間放置します。滅菌転送ピペットを用いて、プレートから細胞を洗い流します。BMSを50mLコニカルチューブに移し、420 ×gで10分間遠心して細胞をペレット化します。ペレットを10 millilitersのBMC培地で再懸濁し、ヘモサイトメーターを用いて細胞密度を測定します。24ウェルプレートの底面にラウンドカバーガラスを配置し、1ウェルあたり2×10⁵個のBMSを播種します。T. gondiiを感染させる前に、一晩置いて細胞を接着させます。余剰の細胞は、後で使用するためにペトリ皿で保存することができます。BMSを活性化させるために、活性化培地を調製します。凝集物を解消するため、LPSをウォーターバスで2分間超音波処理します。その後、BMC培地に100 nanograms per milliliterのLPSと100 units per milliliterのIFN gammaを添加します。最後に、ウェルからBMC培地を除去し、活性化培地に交換します。37°C、5% carbon dioxideで3日間インキュベートします。BMCの染色は、以前に前皮線維芽細胞で示された方法で行うことができます。これらの例では、ヒト包皮線維芽細胞におけるtoxoplasma Gandhi I Bradysが蛍光DBAで標識されています。pHストレス下において。このin vitroシストの断面図に示されるように、IFN GammaおよびL-P-S-D-V-Aで活性化されたdmsにおけるシスト壁が蛍光標識されています。ここに見られるように、空胞の表面にも染色が認められます。以上で、線維芽細胞および活性化マクロファージ内にあるin vitroのToxoplasma gondiiシストの染色方法を説明しました。この手順を行う際は、寄生虫と宿主細胞が同じ日に準備できるよう計画を立てることが重要です。以上となります。ご視聴ありがとうございました。皆様の実験の成功をお祈りいたします。

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フォワード遺伝学はどのように分子レベルで解明するための強力な方法です...

分離するために遺伝学的スクリーニングトキソプラズマホストセル出口変異体

このビデオは、骨髄由来マクロファージ(BMM)の寄生虫の細胞内増殖を定量化するアッセイを示しています。マクロファージ細胞は、リーシュマニアの運動性侵襲期と非運動性の浸潤期にそれぞれ感染し、メタサイクリック前胸茎と無形成性に浸潤します。寄生虫はマクロファージに侵入し、寄生虫の液胞に内在化され、内部で増殖します。細胞内寄生虫の増殖は、マクロファージと寄生虫核を蛍光染色した上で顕微鏡を用いて定量化されます。...

マクロファージにおける寄生虫の細胞内増殖を定量化するためのIn vitroアッセイ

ここでは、タイプIとタイプIIを使用するための方法を報告する...

の遺伝的操作<em&gt;Δku80</emの機能ゲノム解析のための&gt;株<em&gt;トキソプラズマ</em

マクロファージは、長い自然免疫と獲得免疫応答の重要な構成要素として認識されている。マクロファージや微生物間の相互作用の進化遺伝的、および生化学的な側面に関する知識の最近の爆発はマクロファージへの科学的関心をリニューアルしました。この記事では、マウスの骨髄からマクロファージを差別化する方法を説明している。...

骨髄由来マクロファージの生産

このプロトコルを使用して、我々は、シスト化の寄生虫と感染したニューロン間の空間的関係の可視化と分析を可能にする寄生虫トキソプラズマに感染したマウスからの画像160の厚さの脳切片することができました。...

感染ニューロンの3-Dイメージングと分析インビボとトキソプラズマ

フォワード遺伝学は、識別するためのマクロファージを使用した画面<em&gt;トキソプラズマ</emIFN-γ依存性細胞自律イミュニティへの抵抗のための重要な&gt;遺伝子

このプロトコルの全体的な目標は、マウスアストロサイトおよびミクログリア細胞を中枢神経系から抽出、維持、解離し、続いて原虫寄生虫に感染する方法を指示することである。...

原虫性原虫感染に対する原発星およびミクログリアの同時分離

この研究は、シャーガス病の原因となる病原体であるTrypanosoma cruziの3つのin...

Trypanosoma cruziの3つのIn Vitroライフサイクルステージにおける超微細構造拡大顕微鏡

私たちは、体細胞核移植（SCNT）を介してエピジェネティックなリプログラミングが事前定義されたT細胞受容体（TCR）特異性を有するマウスモデルを生成するためのツールと​​して使用できることをここに示しています。これらtransnuclearマウスは、内因性プロモーターの制御下での内因性遺伝子座から対応するTCRを発現する。...

に対する事前定義されたT細胞受容体の特異性をもつTransnuclearマウストキソプラズマ SCNTを介して取得

学ぶ Toxoplasma gondiiのシスト壁形成誘導法。マクロファージと線維芽細胞を用いたin vitro培養系で、pH変化やマクロファージ活性化によるストレス応答を可視化する手法を解説。蛍光レクチンを用いた免疫蛍光顕微鏡法でシスト壁を観察し、寄生虫の宿主細胞内での挙動を解析する。

活性骨髄由来マクロファージとBradyzoite条件におけるトキソプラズマのシスト壁形成

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