Name: マウスB細胞を精製における誘導とクラススイッチ組み換えの評価 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-08-13T17:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 49 s
Description: 学ぶマウス脾臓B細胞の磁気細胞分離による精製とLPS刺激によるクラススイッチ組み換えの誘導法。CFSE染色とフローサイトメトリーで増殖と抗体イソタイプ変換を解析し、B細胞免疫の機能解明に貢献します。

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我々は有用な議論のためのマーティンの研究室に感謝しています。この出版物は、保健研究のカナダ研究所（MOP - 89783）からの助成金によってサポートされています。 AMは、カナダのリサーチチェアティアII賞でサポートされています。

ステップI：磁気濃縮を経由して脾臓B細胞の分離を<ol><li>実験用マウスは、免疫システムの完全な成熟を確保するために8〜12週間熟成されるべきである。 </li><li>頚椎脱臼によりマウスを安楽死させると70％エタノールに浸漬。外科的腹部の左季肋部の皮膚と筋肉を通して切開を行うことによって脾臓を除去し、リン酸塩の3大部分にカット（PBS）緩衝生理食塩水。すべてのツールおよび試薬は無菌であることを確認してください。 </li><li> 1 mLのシリンジプランジャ、軽くマッシュPBSに70μmのセルストレーナーを介して脾臓のゴムの端を使用する。研削が大きい（増殖すなわち）細胞の破裂につながる可能性があるので押す動きではなく、研削モーションを使用してください。 </li><li> 5分間のこれ以上の350よりもgで細胞をスピンダウンし、PBSでペレットを再懸濁します。血球計数器を用いて再懸濁した細胞を数えます。 </li><li>キャップ付き滅菌5mLのポリスチレンチューブ（チューブあたり2 mLの最大音量）の5％正常ラット血清を含むPBSで1 × 10 8細胞/ mlの懸濁液を準備する。 </li><li>細胞のあらゆるmLのためのEasySep負の選択マウスのB細胞の濃縮カクテルの50μLを追加。混合物をピペット、チューブにキャップをし、15分間冷蔵庫に入れてください。 </li><li>細胞のあらゆる液を100μLEasySepビオチン選択カクテルを追加。混合物をピペット、チューブにキャップをし、15分間冷蔵庫に入れてください。 </li><li>細胞のあらゆるmLのEasySep磁性ナノ粒子を100μLを（ナノ粒子がよく混合され、溶液が均質であることを確認）を追加します。混合物をピペット、チューブにキャップをし、5分間冷蔵庫に入れてください。 </li><li> PBSで5分間EasySep磁石の位置と2.5mLのトップへソリューションを提供します。磁石とチューブを逆さにして新しいポリスチレンチューブに迅速に注ぐ。否定的に選択したセルが磁気チューブの壁にバインドされるようにチューブを振らないでください。 </li><li>さらに細胞懸濁液の純度を高めるために、管をさらに5分間磁石に再挿入し、新しいチューブに注いだことがあります。これは、全体の細胞の回復を減らすことができます。 </li><li> B細胞の純度は、B細胞表面マーカーのフローサイトメトリー分析によって評価することができる。濃縮に続いて、我々は一貫して&gt; 95％B220陽性細胞の純度を参照してください。 </li></ol> CFSE細胞の染色ステップII： <ol><li> mL当たり1 × 10 6細胞の最終濃度でアルブミン0.1％ウシ血清を添加した温かいPBSで分離した細胞を再懸濁します。 </li><li> CFSE（無菌ジメチルスルホキシドで希釈）の5mMのストック溶液を調製し、チューブ内の細胞のあらゆるmLの場合、2μlのを追加します。 10μMの最終濃度は、主要なB細胞の染色に最適です。 </li><li> 37℃暗所で10分間（注：CFSEは光に敏感であり、可能な場合は暗所に保管してください）​​。 </li><li>あなたの細胞に仔ウシの血清の等量を追加し、5分間氷上でインキュベートすることにより、汚れを癒やす。 </li><li> gを（レシピのステップIIIを参照）培養液のチューブを補充し、350で遠心分離で細胞を洗浄メディアの少なくとも5倍のボリュームに相当するが、仔ウシの血清の粘度を打ち消すようにし、細胞ペレットを生成するために追加しなければならないことに注意してください。 </li><li>培地で2回細胞を洗浄。セルは刺激のための準備が整いました。 </li></ol>ステップIII：LPSによる細胞の刺激を<ol><li> 10％ウシ胎児血清および50μMβ-メルカプトエタノール/を含むRPMI 1640を補完することによりin vitroで B細胞の培養液中で自分を準備します。 </li><li> 50μg/mLの最終濃度でLPSを追加して、刺激のメディアを準備します。フラットボトムの各ウェルを96ウェル組織培養プレートに刺激の培地のアリコートを125μL。 </li><li> 3.2 × 10 6細胞/ mlの最終濃度でLPSを含まない培地でCFSE染色B細胞を準備します。穏やかにピペッティングすることにより、刺激媒体とミックスを含むウェルに細胞懸濁液125μLを加える。 </li><li>各ウェルは、25μg/ mLの最終的なLPSの濃度で4 × 10 5個の細胞が含まれています。これらの値に変化が必要に応じて行うことができるが、これは、細胞増殖とクラスのスイッチングの最適なレベルを提供します。 </li><li> 37℃、72〜96時間、5％CO 2の細胞をインキュベート。 48時間後、大規模な増殖B細胞のクラスターは、顕微鏡下ではっきりと見えるようになります。 </li></ol>ステップIV：クラススイッチングのフローサイトメトリー分析<ol><li>あなたがクラススイッチを見て準備ができたら、彼らの文化の条件からあなたの細胞を除去し、染色バッファー（2％仔ウシ血清を含むPBS）1mLに二度、それらを洗ってください。 </li><li> 350グラムとインキュベーションでそれらをスピンダウンして、細胞、細胞をペレット化の非特異的な抗体染色を防ぐために5％正常マウス血清と氷上で15分間FcBlock per106細胞の1μgのでバッファを染色の100μLのTEそれら。細胞のブロッキングは氷上で行ってください。 </li><li>あなたの細胞を洗浄せずに、蛍光標識抗マウスIgG3抗体の10 6個の細胞あたり1μgのを追加し、細胞は氷上で30分間染色することができます。 </li><li>染色バッファーの200から300μLで遠心分離と再懸で細胞を2回洗浄する。セルはフローサイトメトリーによる評価のための準備が整いました。 </li><li> CFSEは最適波長492 nmで励起（アルゴンイオンレーザーによる）、517 nmで放出される。 IgG3抗体の励起および発光スペクトルは、その共役蛍光色素に依存しています。 </li></ol>代表的な結果磁気濃縮の後、細胞懸濁液は区別がつかない小さな円形の細胞（図1A）の均質な集団のようになります。刺激の48〜72時間後、拡大増殖細胞の分離されたクラスターは、（図1B）はっきりと見えるようになります。彼らはアポトーシスを起こすように、非増殖細胞の大部分は小さな粒度の細かい表示されます。 細胞のほとんどが7を死ぬことを開始する前に、CSRは、通常は刺激後72および96時間の間に最高レベルで検出することができます。この段階で、細胞は後に娘細胞の集団で現れる切り替え細胞と細胞分裂の数を受けているはずです。 CFSEで希釈し、LPS刺激の96時間後のIgG3の表面発現の代表的なフローサイトメトリープロットを図2に見ることができます。 表1。カクテルを切り替えアイソタイプ。注：覚せい濃度値は、推奨事項のみです。滴定が必要になる場合があります。 <table border="1"><tbody><tr><td>希望のアイソタイプ</td><td>刺激のカクテル</td></tr><tr><td> IgG1and IgE値</td><td> LPS（25μg/mL）およびIL - 4（10 ng / mL）を</td></tr><tr><td> IgG1and IgE値</td><td>抗CD40（10μg/mL）およびIL - 4（10 ng / mL）を</td></tr><tr><td>的なIgG2a </td><td> LPS（25μg/mL）およびIFN -γ（10 ng / mL）を</td></tr><tr><td> IgG2b及びIgG3に</td><td> LPS（25μg/mL） </td></tr><tr><td> IgAの</td><td> LPS（25μg/mL）、TGF -β（2 ng / ml）およびIL - 5（1.5 ng / mL）を</td></tr></tbody></table><img src="/files/ftp_upload/2130/2130fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 図1。単離及び脾臓B細胞のLPS刺激。 （）磁気LPSの刺激の前に脾臓B細胞を濃縮。 （B）48時間LPSの25μg/ mLので刺激した後。増殖する細胞は、ブラストおよびアポトーシス細胞のバックグラウンドでのクラスターとして見られている。 <img src="/files/ftp_upload/2130/2130fig2.jpg" alt="図2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図2"> 図2。96時間後の増殖とクラススイッチ組み換え。 （A）LPSのためのCFSEの希釈は、文化の中で96時間後に細胞を刺激した。それぞれ独立したピークは、独立した細胞分裂に対応するCFSEの蛍光の希釈を表しています。 （B）細胞分裂のいくつかのラウンドに続くIgG3に肯定的な人口の出現を示すIgG3に表現。

<ol><li>Hodgkin, P. D., Lee, J. H., Lyons, A. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((B+cell+differentiation+and+isotype+switching+is+related+to+division+cycle+number%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">B cell differentiation and isotype switching is related to division cycle number.</a> J Exp Med. 184, 277-281 (1996).</li>
<li>McCall, M. N., Hodgkin, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Switch+recombination+and+germ-line+transcription+are+division-regulated+events+in+B+lymphocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim+Biophys+Acta%22%5BJournal%5D)">Switch recombination and germ-line transcription are division-regulated events in B lymphocytes.</a> Biochim Biophys Acta. 1447, 43-50 (1999).</li>
<li>Manis, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((53BP1+links+DNA+damage-response+pathways+to+immunoglobulin+heavy+chain+class-switch+recombination%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Immunol%22%5BJournal%5D)">53BP1 links DNA damage-response pathways to immunoglobulin heavy chain class-switch recombination.</a> Nat Immunol. 5, 481-487 (2004).</li>
<li>de Yebenes, V. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((miR-181b+negatively+regulates+activation-induced+cytidine+deaminase+in+B+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">miR-181b negatively regulates activation-induced cytidine deaminase in B cells.</a> J Exp Med. 205, 2199-2206 (2008).</li>
<li>McBride, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+class+switch+recombination+and+somatic+mutation+by+AID+phosphorylation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Regulation of class switch recombination and somatic mutation by AID phosphorylation.</a> J Exp Med. 205, 2585-2594 (2008).</li>
<li>Ramachandran, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+RNF8%2FRNF168+ubiquitin+ligase+cascade+facilitates+class+switch+recombination%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">The RNF8/RNF168 ubiquitin ligase cascade facilitates class switch recombination.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 107, 809-8014 (2010).</li>
<li>Zaheen, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AID+constrains+germinal+center+size+by+rendering+B+cells+susceptible+to+apoptosis%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">AID constrains germinal center size by rendering B cells susceptible to apoptosis.</a> Blood. 114, 547-554 (2009).</li>
<li>Chaudhuri, J., Alt, F. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Class-switch+recombination%3A+interplay+of+transcription%2C+DNA+deamination+and+DNA+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Class-switch recombination: interplay of transcription, DNA deamination and DNA repair.</a> Nat Rev Immunol. 4, 541-552 (2004).</li>
<li>Kaminski, D. A., Stavnezer, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stimuli+that+enhance+IgA+class+switching+increase+histone+3+acetylation+at+S+alpha%2C+but+poorly+stimulate+sequential+switching+from+IgG2b%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Stimuli that enhance IgA class switching increase histone 3 acetylation at S alpha, but poorly stimulate sequential switching from IgG2b.</a> Eur J Immunol. 37, 240-251 (2007).</li>
<li>Kaminski, D. A., Stavnezer, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antibody+class+switching+differs+among+SJL%2C+C57BL%2F6+and+129+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Int+Immunol%22%5BJournal%5D)">Antibody class switching differs among SJL, C57BL/6 and 129 mice.</a> Int Immunol. 19, 545-556 (2007).</li>
</ol>

利害の衝突は宣言されません。

上記で概説プロトコルは、プライマリマウスB細胞のクラススイッチの間にAIDの発現と機能を解析する標準的なアッセイを提供する。刺激のメディアへの変更は、他のアイソタイプ（表1 8、9に示す）に切り替える誘導できるものはありますが、このプロトコルでは、IgMからIgG3にするためにスイッチング誘導する細菌のLPSを使用しています。 我々がいることを指摘している、まだのような未知の理由のために、ウシ胎児血清はin vitroで観察されたスイッチングクラスのレベルに影響を与える可能性があります。それは、同一のロット番号は、実験的な一貫性を確保するために、すべてのCSRの実験に使用することが重要です。それはまた 、in vitroのスイッチング速度に最適な達成するためにウシ胎児血清ソースのパネルをスクリーニングするために有益であるかもしれません。マウス系統はまた 、in vitro 10 で見られるクラスの切り替えの度に影響を与える可能性があります。悪いようなSJLマウスのよう...

<table><tbody><tr><td>リン酸緩衝生理食塩水</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>14190</td><td></td></tr><tr><td>EasySep マウスB細胞濃縮キット</td><td>Stem Cell Technologies</td><td>19754</td><td></td></tr><tr><td>ポリスチレンチューブ</td><td>BD Biosciences</td><td>352058</td><td></td></tr><tr><td>ウシ血清アルブミン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7030</td><td></td></tr><tr><td>CellTrace CFSE細胞増殖キット</td><td>Invitrogen</td><td>C34554</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清（BCS）</td><td>Hyclone</td><td>SH30072.03</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640 培地</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>11875</td><td></td></tr><tr><td>&lt;em&gt;Escherichia coli&lt;/em&gt;由来リポ多糖</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L6529</td><td></td></tr><tr><td>&amp;#946;-メルカプト&amp;#8211;エタノール</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>21985</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清（FBS）</td><td>Hyclone</td><td>SH30396.03</td><td></td></tr><tr><td>正常マウス血清</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>011-000</td><td></td></tr><tr><td>精製ラット抗マウスCD16/CD32 (Mouse BD Fc Block)</td><td>BD Biosciences</td><td>553141</td><td></td></tr><tr><td>ラット抗マウスIgG3</td><td>BD Biosciences</td><td>553401</td><td></td></tr></tbody></table>

マウスb細胞を精製における誘導とクラススイッチ組み換えの評価

Induction and Assessment of Class Switch Recombination in Purified Murine B Cells

体液性免疫はB細胞によって維持されると抗体の分泌を介して免疫系の分岐です。 B細胞の活性化により、免疫グロブリンの遺伝子座は、結合能と分泌される抗体のエフェクター機能を変更するために遺伝的改変のシリーズを受ける。このプロセスは、デフォルトのIgM抗体のアイソタイプがIgG抗体は、IgA、またはIgEのいずれかに置換されているクラススイッチ組み換え（CSR）として知られているゲノムの組換え事象によって強調表示されます。それぞれのアイソタイプは、それによって免疫の維持にCSRが重要な意思異なるエフェクター機能を持っています。 免疫グロブリン遺伝子座の多様化は、酵素活性化誘導シチジンデアミナーゼ（AID）によって媒介される。詳細にこのプロセスを説明する回路図ビデオがオンラインで入手可能（http://video.med.utoronto.ca/videoprojects/immunology/aam.html）です。 AIDの活動とCSRの経路は、一般的にB細胞の機能とマウスにおける液性免疫の評価で検討されています。このレポートに記載されているプロトコルは、IgG3（他の抗体アイソタイプについては表1を参照）に切り替えるクラスを誘導する細菌のリポ多糖（LPS）をマウス脾臓とその後の刺激からのB細胞の単離の方法を提示。さらに、蛍光細胞染色色素カルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル（CFSE）が刺激された細胞の細胞分裂、スイッチング1、2をアイソタイプに重要なプロセスを監視するために使用されます。 AIDとCSRが発生するメカニズムの規制はまだ明らかではないため、in vitroでのクラススイッチのアッセイで 、様々なマウスモデルでこれらのプロセスをテストするための信頼性の高い方法を提供する。これらのアッセイは、以前は次のノックアウトマウス3を用いて遺伝子の欠損のコンテキストで使用されている。さらに、B細胞のスイッチングのin vitroでのRNAノックダウンまたは導入遺伝子の発現4-6に遺伝子発現を調節するためにウイルスの伝達を付けることができます。実験のこれらのタイプからのデータは、AIDの活動、CSRの反応の解像度、およびマウスにおける抗体媒介性免疫の理解に影響を及ぼしている。

抗原曝露後、活性化B細胞の亜集団は、異なるエフェクター機能を有する抗体のアイソタイプを生成するためにクラススイッチ組み換え（CSR）として知られているプロセスを経る。このレポートに記載されているプロトコルは、CSRを誘導して分析できる方法について説明します。<em&gt; in vitroで</em&gt; B細胞機能を研究の目的のために。

マウスB細胞を精製における誘導とクラススイッチ組み換えの評価

体液性免疫は、B細胞によって維持され、抗体の分泌を介して機能する免疫系の分枝である。B細胞が活性化すると、...

液性免疫応答において、抗原によって活性化されたB細胞は、応答の進行に伴い増殖し、抗体を分泌します。増殖およびクラススイッチを評価するため、デフォルトのIgM抗体アイソタイプは、より多様なIgG、IgA、またはIgEアイソタイプに置換されます。磁気細胞分離法を用いて、実験用マウスからin vitro用の脾臓B細胞を単離します。細胞は蛍光染料CFSEで染色し、細菌性L-P-Sによる刺激で誘導される増殖をモニターします。L-P-S刺激はアイソタイプIgG3へのクラススイッチも誘導し、増殖とともにフローサイトメトリーで解析可能です。本日は、純粋な脾細胞B細胞の単離および活性化の手法を解説します。この手法は、in vitroでのクラススイッチ組換えおよび増殖の観察に利用できるほか、活性化誘導シチジン脱アミノ酵素の機能や制御を含む、B細胞免疫分野における重要な疑問を解決するためにも活用できます。まず、安楽死させたマウスを70% ethanolに浸します。免疫系が十分に成熟していることを確実にするため、マウスの週齢は8～12週とします。滅菌したハサミを用いて、腹部左季肋部の皮膚と筋肉を切開します。ハサミまたはピンセットを使用して、周囲の組織から脾臓を取り出します。次に、PBS中でそれを3つの大きな断片に切断します。その後、1 mLシリンジプランジャーのゴム端を用いて、脾臓を70 µmのセルストレーナーを通してPBS中に緩やかに押し出します。このとき、すり潰すのではなく、押し出すように操作してください。研磨を行うと、増殖中の大きな細胞が破裂する可能性があるため、細胞を350 G以下で5分間遠心分離します。その後、沈殿物をPBSで再懸濁します。滅菌済みの5 mLポリスチレンチューブ内で、ヘモサイトメーターを用いて再懸濁した細胞数をカウントします。5%正常ラット血清を含むPBSを用いて、1×10⁸ cells/mLの細胞懸濁液を調製します。各チューブに添加できる最大量は2 mLです。次に、細胞1mLあたり50 µLのEP negative selection Mouse B-cell enrichment cocktailを添加します。その後、チューブにキャップをして、冷蔵庫に15分間置きます。細胞1mLあたり100 µLのEPビオチン選択カクテルを加えます。チューブに蓋をし、冷蔵庫に15分間置きます。ビオチン選択カクテルでインキュベートした後、EP磁性ナノ粒子を細胞1mLあたり100 µL加えます。混合物をピペッティングし、チューブに蓋をして冷蔵庫に5分間置きます。PBSを加えて溶液を2.5 millilitersにし、ceptマグネットに設置します。5分後、チューブが入ったマグネットを反転させ、新しいポリスチレンチューブに素早く注ぎます。負に選択された細胞は磁性によりチューブ壁に結合しているため、チューブを振らないでください。細胞懸濁液の純度をさらに高めるには、新しい細胞入りチューブを再びマグネットに5分間設置し、さらに別の新しいチューブへ注ぎます。このステップにより、全体の細胞回収率が低下する可能性があります。B細胞の純度は、B細胞表面マーカーのフローサイトメトリー解析によって評価できます。濃縮後、95%以上の細胞がB two 20陽性である必要があります。滅菌ジメチルスルホキシドで希釈した5 mMのCFSE染料ストック溶液を用い、0.1% BSAを添加した温かいPBSで、最終細胞濃度が10^6 cells/mLとなるように単離細胞を再懸濁します。チューブ内の細胞懸濁液1 mLあたり2 µLを添加します。CFSEは、刺激された細胞の細胞分裂をモニターするために使用されます。アイソタイプスイッチングに不可欠なプロセスです。一次B細胞の染色は、最終濃度10 micromolarが最適です。暗所にて37 degrees Celsiusで10分間インキュベートします。CFSEは光に敏感であるため、可能な限り遮光して保存してください。インキュベーション後、細胞に等量のウシ胎児血清を加えて氷上でインキュベートし、染色を停止させます。細胞を洗浄するため、チューブに培養液を満たします。この際、ウシ胎児血清の粘性を打ち消し、細胞がペレットを形成できるように、元の液量の少なくとも5倍以上の培養液を加えてください。その後、350 Gで遠心分離します。さらに2回、培養液で細胞を洗浄します。これで細胞は刺激準備完了です。RPMI 1640に10%胎児牛血清と50 micromolarのβ-メルカプトエタノールを添加し、in vitro B細胞培養培地を調製します。次に、LPSを最終濃度50 micrograms per milliliterになるように添加して、刺激培地を調製します。刺激培地125 microlitersを、平底96ウェル組織培養プレートの各ウェルに分注します。LPSを含まない培地を用いて、最終濃度が3.2 × 10⁶ cells/mLとなるようにCFS E染色B細胞を調製します。この細胞懸濁液125 µLを、刺激培地が入ったウェルに加えて、ピペッティングで穏やかに混合します。これにより、各ウェルには400,000個の細胞が含まれ、最終的なLPS濃度は25 µg/mLとなります。これにより、細胞増殖とクラススイッチの最適なレベルが得られます。必要に応じてこれらの値を変更しても構いませんが、細胞を37°C、5% carbon dioxideで72〜96時間培養してください。48時間後には、クラススイッチを確認するために顕微鏡で観察すると、増殖した大型B細胞のクラスターが明確に確認できます。インキュベーターから細胞を取り出し、非特異的な抗体染色を防ぐため、1 mLの染色バッファーで2回洗浄します。350 Gで遠心分離して細胞をペレット化します。次に、5%正常マウス血清と10^6細胞あたり1 µgのFCブロックを含む100 µLの染色バッファーに細胞を再懸濁し、洗浄せずに氷上で15分間インキュベートします。10^6細胞あたり1 µgの蛍光標識抗US IgG3抗体を加え、氷上で30分間インキュベートした後、細胞を2回洗浄し、200〜300 µLの染色バッファーに再懸濁します。これで細胞をフローサイトメトリーで評価する準備が整いました。CFSEは、アルゴンイオンレーザーによる492 nmで最適に励起され、517 nmで発光します。IgG三抗体の励起および蛍光スペクトルは、結合している蛍光色素によって異なります。磁気濃縮後、細胞懸濁液は、区別がつかない小さな円形細胞の均質な集団として観察されるはずです。刺激後48〜72時間で、増殖して肥大化した細胞の孤立したクラスターが明確に確認できるようになります。非増殖細胞の大部分は、アポトーシスを起こすため、小さく顆粒状に見えます。CSRは通常、刺激後72時間から96時間の間で、ほとんどの細胞が死滅し始める前の最高レベルで検出されます。この段階で、細胞は数回の細胞分裂を経験しているはずであり、後の娘細胞集団にスイッチした細胞が現れます。これらのプロトコルに従い、RNAiによる遺伝子ノックダウンなどの他の手法を用いて、特定の遺伝子がAIDの機能およびクラススイッチ組換えのプロセスに及ぼす影響を研究することができます。

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