Name: ミツバチのテングザルの拡張レスポンスの古典的条件における行動薬理学（セイヨウミツバチ） (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-01-24T17:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 36 s
Description: 学ぶミツバチの古典的条件付けによる行動薬理学的手法。セイヨウミツバチを用いて薬物投与が学習と記憶形成に与える影響を評価し、神経科学における分子メカニズムの解明に貢献する研究方法です。

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私たちは、原稿の以前のバージョン上で貴重なコメントをランドルフメンツェルに感謝学習の神経基盤（B​​FNL）DEへ：この作品は、バーンスタインフォーカス内教育研究省（BMBF）のドイツ連邦環境省からの助成金によって支えられて。

1。ハイブからキャッチ蜂<ol><li>実験は、午後2〜4を開始する前に、ある日、ハイブを残してミツバチがキャッチされています。そのためには、頂点および基部で開閉可能なUV光透過性のプレキシガラスのピラミッドは、（高さ= 30センチ、頂点3,5 × 3、5 cmのベース18 × 18センチ）、、20で開催される - ベースのオープンと頂点を持つハイブの入り口の前に30cmの距離は、ハイブを残してミツバチがピラミッドの底辺を入力するように閉鎖。ベースはその後閉鎖され、キャプチャされたミツバチは、さらなる処理のための研究室に持ち込まれている。 </li></ol> 2。ガラスバイアルにピラミッドから蜂を転送<ol><li>ラボでは、ピラミッドはそのベースに配置されます。ピラミッドの壁面は暗くなります（タオルなど）はしかし、頂点が発見されたままになります。開いたときのため、その正の走光性を、ミツバチが頂点を通じてピラミッドを残す。一つ一つは、ミツバチがオープン頂点上のバイアルを保持することによって、ガラスバイアルにピラミッドから転送されます。 1バイアルは、蜂ごとに使用されます。したがって、頂点は1つのミツバチは、バイアルに入ったときに閉じられます。 </li></ol> 3。チューブの活用の蜂<ol><li>ミツバチは、2.5から3.5分間氷上でガラスバイアルに、それらを冷却することによって固定化される。蜂を見るとすぐそれが変化しないように氷からそれを削除することをお勧めします。 </li><li>単一の固定されたミツバチは、それが自由ではなく、その頭部、胸部や脚の長い鼻を移動することになるように粘着テープ付きの小さなプラスチック製のチューブ、で活かされている。首が圧縮されていないことが重要です。 </li><li>プラスチックチューブで修正すべての蜂がより良いハンドリングと識別するためのラックの番号のボーリング孔に配置されます。それはコンディショニングまたはメモリ取得のために削除された後にチューブを常に正確に同じ孔に返されます。 </li></ol> 4。餌蜂<ol><li>最初の晩（4-6時）に、キャッチされた後、蜂はショ糖溶液（0,88 M、水道水に溶解した白洗練された家庭用砂糖）で満腹に供給されています。蜂を養うために、そのPERは、ショ糖溶液と動物とのアンテナがショ糖溶液の一滴（4μL）を消費するために許可されて触れることで誘発される。自分のアンテナがショ糖溶液で触れているとき、彼らはもはやPER高速かつ信頼性を示さないまで、ミツバチは、繰り返し次々に供給されています。 </li><li>実験の蜂の後続の各​​夜（4-6時）にショ糖溶液の1滴（4μL、0,88 M、水道水で解決白い精製された砂糖）を使用して別の4倍々に供給されています。それは、ショ糖溶液を摂食中にミツバチのアンテナやテングザルに塗抹されていないことと、チューブがショ糖溶液で汚染されていないことが重要です。ミツバチは、ショ糖刺激によるトレーニングのコンテキストを関連付けるの可能性を排除するコンディショニングの部位またはその近くに供給されるべきではない。 </li></ol> 5。活かした蜂が一晩に保つ<ol><li>ミツバチは、室温でプラスチック製のボウルで一晩保持されます。水道水は、ボウル（約0,5-1センチの高さ）に充填される。活かしたミツバチが付いているラックは、プラットフォームとしてのELISAプレートを使用して水線の上のボウルに配置されます。最後に、ボールは段ボールで覆われている。 </li></ol> 6。嗅覚コンディショニング実験の最初の朝（午前10時）に嗅覚調整が行われる。条件刺激（CS）が臭気である、無条件刺激（米国）は、ショ糖溶液です。 <ol><li>臭気（例えばクローブオイル）の4μLを20 mLシリンジに挿入される円形の濾紙（1,3 cmの直径）にピペットで。臭気は、ボンネットの下ピペットされ、フィルタのヒントは、ピペットの汚染を防止するために使用されています。 </li><li>活かしたミツバチとラックは、コンディショニングの手順を開始する前にコンディショニングのサイトで30分の近くに配置し、しかし、単一のミツバチが調整されている排気管の前にある場所までの距離にあります。 </li><li>エアコンは10分の期日間間隔（ITI）を持つ3つの香りの組み合わせ（条件刺激、CS）とショ糖溶液（無条件刺激、米国、1,25 M）で構成されています。オーディオプレーヤーを介して実験者に配信される音響信号は、刺激開始、刺激オフセット、刺激の持続時間と配置の正確なタイミングが保証されます。買収の裁判は、排気の前で動物の10秒の位置から始まります。間もなく10秒の終わりの前に臭いを含む注射器は、ミツバチのアンテナを対象としたハチの目の前に3センチに配置されます。続いて、匂いは注射器を介して20mLの空気を押すことで、5秒間表示されます。最初の3秒後に両方のアンテナの遠位鞭毛は、つまようじと動物が4秒moistend爪楊枝をなめるために許可されているソリューションは、湿らせたショ糖で触れています。 13秒は、CSの刺激の終了後に、ミツバチは、トレーニングの文脈から取り出し、ラックに戻って配置されます。完全にグループレッスンの試験では、28秒間継続。 ハチの触角も長い鼻のどちらも調整後のショ糖で覆われていることが重要です。したがって、つまようじが唯一のスクロース溶液と爪楊枝でのショ糖溶液の形のない滴その湿らせていることを確保する必要があります。 </li><li>コンディショニング後にラックをボウルに戻って配置されます。 </li><li>動物実験時の動作、配置とCSの間にPERの発生と米国のプレゼンテーションをすなわち、実験者によって監視され、下に記載されています。 </li></ol> 7。記憶維持<ol><li>保持テストは、任意の間隔（日数の分）で行うことができます。メモリテストが開始される前にミツバチを持つラックは、コンディショニングのサイトで30分の近くに配置されます。 </li><li>メモリテストは、米国のプレゼンテーションすることなく5秒CSのプレゼンテーションで構成されています。テストは、排気の前で動物の10秒の位置から始まります。前述のように続いて、臭いを5秒間表示されます。動物の行動は、配置時にPERの発生、すなわちとCSのプレゼンテーションは、実験中にダウンして注目される。 </li><li>実験の終わりに口先延長の応答は、再び動物はまだその口吻を拡張できることを保証するためにショ糖溶液でアンテナに触れることで誘発される。 </li></ol> 8。全身注射全身注射の時点では、実験計画に依存します。 <ol><li>小さ ​​な穴は、使い捨て注射針（21 G）を使用して、飛翔筋17は、上記のscutumの割れ目の横のたて座の後部のクチクラで作られています。 </li><li>ガラス毛細管を使用して、1μLのソリューションは、飛翔筋へのクチクラの穴から噴射される。訓練を受けた実験者は、注射やコンディショニングの正確なタイミングを可能にする、30秒ごとone蜂を注入することができます。 </li></ol> 9。実験中に餌蜂<ol><li>コンディショニング後の夜（4-6時）に、ミツバチは、ショ糖溶液を1滴（4μL、0,88 M、水道水に溶解して白い精製された砂糖）を使用して別の4倍後のものを供給している。それは、ショ糖溶液を摂食中にミツバチのアンテナやテングザルに塗抹されていないことと、チューブがショ糖溶液で汚染されていないことが重要です。ミツバチは、ショ糖刺激によるトレーニングのコンテキストを関連付けるの可能性を排除するコンディショニングの部位またはその近くに供給されるべきではない。 </li></ol> 10。データ収集とデータ解析<ol><li>実験時の口先拡張応答の発生が監視されます。それは、CSの発症と米国のプレゼンテーション（研修中）の間またはCSのプレゼンテーション中に、その長い鼻を拡張する場合ハチが開いて顎の間に仮想回線を経由する、（テストフェーズで）正の得点が記録されます。 </li><li>分析の動物に含まれるようにするには、2つの条件を満たす必要があります：彼らは、実験全体を生き残る必要で、それらは実験終了時にショ糖溶液に無条件口先拡張応答を（PER）を示す必要があります。獲得と保持テストの間にPERを示す蜂の割合は、各CSのプレゼンテーションのためにプロットされます。 </li></ol> 11。代表的な結果： 二つの実験はここに表示されます。 最初の実験では、リン酸緩衝生理食塩水（PBSの全身注射の影響を見て、内のMM：137のNaCl、2,7のKCl、10,1のNa 2 HPO 4、1,8 KH 2 PO 4、pHが7、 2）学習と長期記憶の形成に。無処理群、トレーニング前に1μLPBSで30分間で注入した群、および治療を偽注射群：ミツバチの3つのグループは10分の期日間間隔で3 CS - USペアで訓練されたPBS注入群としてではなく、PBSを注入することなく、同じ方法で。トレーニングのメモリの24時間後は3つのグループすべてが1つのCSのプレゼンテーションでテストされています。コンディショニング時にエアコンの応答を示す動物の割合は、3つのトレーニングの試験にわたって大幅に増加する（図1、係数の時間を繰り返し測定するための分散分析F 2378 = 340456、P &lt;0.05）。 PERの差は調整中に、三つのグループ（因子グループの繰り返し測定のための分散分析F2、189 = 1299、P&gt; 0,05）との間で認められなかった。 PBS注入し、偽注射動物と非投与動物を比較するときに24時間の保持テスト（F2、187 = 0752、P&gt; 0,05）の場合にも当てはまります。 タンパク質合成阻害剤のアニソマイシン（10 mm）を全身3つのC - USペアリング後に30分を注入したときに2番目の実験では、3、4日間のトレーニング後のメモリ保持の阻害を示す。 PBS注入群とアニソマイシン注入群の比較では、保持さtの間に群間で有意差を明らかにEST（図2、ファクターグループF1、94の繰り返し測定のANOVA = 8,86、P &lt;0.05）。主な違いは、3日と4日目のメモリテストで観察することができます。これはWüstenberg らの結果に似ている。18また、別のプロトコルではあるが、三CS - US組み合わせで蜂を条件付け人。 <img src="/files/ftp_upload/2282/2282fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 図1。 PBSのクチクラの病変や注射は、買収と記憶の保持が変更されることはありません。動物は、3つのCS - USの組み合わせ（買収）で訓練された。 24時間後、メモリは（メモリ保持）試験された。トレーニング前の30分、穴が二つのグループのクチクラ（病変、PBS）で行われ、これらのグループの一つであった1μLPBS（PBS）を注入した。第三のグループは、（無処理）そのまま残されました。発表は各グループごとに臭気のプレゼンテーションに対応するための動物のパーセンテージです。 ANOVAは、アクイジションフェーズ（F2、189 = 1.299、P&gt; 0.05）またはメモリ保持のグループ（F2、187 = 0.752、P&gt; 0.05）の間に有意な違いは示されません。 <img src="/files/ftp_upload/2282/2282fig2.jpg" alt="図2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図2"> 図2。最後のCS - USのペアリング後にアニソマイシン40分の注入は、メモリの保持三日と四日間の訓練の後を削減。動物は、3つのCS - USの組み合わせ（買収）で訓練を受け、1μLの10mMアニソマイシン（異方性）または1μLのPBSを注入した最初のトレーニング試験1時間後。メモリは後72時間および96時間、（記憶保持）24時間、48時間をテストした。 PERと臭気のプレゼンテーションへの応答をグループごとに動物の割合は、され提示。アニソマイシンの注射は、ANOVAによって明らかにトレーニング（F1、94 = 8.86、p &lt;0.05）が後の記憶保持72時間と96時間の大幅な削減につながります。

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</ol>

利害の衝突は宣言されません。

<ol><li>蜂キャッチ：経験豊富な採餌蜂を収集するには、ミツバチは、ハチの子は向きのフライト19日にある時間を避けて、午前中か午後のいずれかで捕捉されます。飼料収穫機は花粉や蜜のいずれかを収集する。花粉と蜜の飼料収穫機の違いは、それらの糖応答性とその学習能力20によれば観察されている。唯一の蜜の飼料収穫機をキャッチするために、ショ糖溶液で満たされた人工的な食料源は、ハイブと動物の近くに設置することができますそこに収集することができる。ハイブに戻っ花粉飼料収穫機は、その後ろ足20日に花粉籠によって識別することができます。 </li><li>修正と処理：それは実験の最後まで学習すると生存能力に影響を与える可能性があるため、氷上で蜂の拡張冷却は避けてください。足根は、ショ糖溶液による偶発的な刺激を避けるために、チューブ内に慎重に固定する必要があります。ミツバチがsuccroseソリューション3,21と足根刺激によって習得することが示されているので、これは、重要です。 </li><li>嗅覚コンディショニング：コンディショニングの試行回数、期日間の間隔、およびテスト時間のポイントは、研究3,22の焦点に応じて変化させることができる。 </li><li>餌：ミツバチの飽食のレベルは、その学習性能とメモリの保持3,23に影響を与えることが知られている。これは、実験を計画する際に考慮する必要があります。 </li><li>注入：空気嚢は、ミツバチの胸部17に配置されています。呼吸器系のこれらの重要な部分は、生存のために必要です。したがって、注意を注入中に空気嚢を傷つけないように注意してください。気泡の放出は、空気嚢への損傷を示している。 </li></ol>

<table><tbody><tr><td>Omnifix シリンジ 20 ml</td><td>B. Braun Medical</td><td>4616200 V</td><td></td></tr><tr><td>精製白色家庭用砂糖</td><td>カイザー・スーパーマーケット、ドイツ、ベルリン</td><td></td><td></td></tr><tr><td>クローブオイル</td><td>ボンバストゥス、フライタール、ドイツ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>マルチピペットプラス</td><td>Eppendorf</td><td>4981 000.019</td><td></td></tr><tr><td>30本用ビーチューブラック</td><td>自製の</td><td></td><td></td></tr><tr><td>プラスチックチューブ</td><td>自作の</td><td></td><td></td></tr><tr><td>UV透過性プレキシガラス製ピラミッド</td><td>自家製</td><td></td><td>高さ = 30cm、頂点 3.5 x 3.5cm、底面 18x18cm</td></tr><tr><td>粘着テープ</td><td>Tesa、ドイツ、ハンブルク</td><td></td><td></td></tr><tr><td>キャピラリースティック 1-5&amp;mu;申し訳ございませんが、翻訳対象のソーステキストが提供されておりません。翻訳するテキストを入力してください。</td><td>セルザー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>キャピラリーチップ 1-5&amp;mu;l</td><td>セルザー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ろ紙（厚さ0.16～0.2 mm）</td><td>Macherey-Nagel</td><td>MN 616 または MN615</td><td>直径1.3 cmの円形片に調整した</td></tr><tr><td>使い捨て皮下注射針</td><td>B. Braun Medical</td><td>4657683</td><td>直径0.45 mm</td></tr></tbody></table>

ミツバチのテングザルの拡張レスポンスの古典的条件における行動薬理学（セイヨウミツバチ）

Behavioural Pharmacology in Classical Conditioning of the Proboscis Extension Response in Honeybees (Apis mellifera)

ミツバチ（ セイヨウミツバチ ） がよく彼らのコミュニケーションと向きのスキルのためにと彼らの印象的な学習能力の1,2のための知られている。ミツバチのコロニーの生存は、食料源の利用に依存するため、飼料収穫機ミツバチは、変数の花のサイトだけでなく、その収益性を学び、記憶する。飼料収穫機ミツバチは簡単に自然な設定で訓練することができますどこに彼らが餌場での飼料​​とそのような臭いや色など、関連する信号を学ぶ。食欲の連合学習は、エアコン、個別に活かさミツバチ3,4のテングザルの拡張子の応答（PER）によって実験室で制御された条件下で研究することができる。この学習のパラダイムでは、シンプルかつ信頼性の高い方法5-12に学習や記憶の形成の根底にある神経細胞および分子メカニズムの研究が可能になります。行動薬理学的なアプローチは、分子メカニズムを研究するために使用されます。薬物は、学習と記憶形成の13から16までの間または後に特定の分子の機能を妨害するために全身的に注入されています。 ここでは、PERコンディショニングに活かさミツバチを訓練する方法と、ミツバチの飛翔筋に全身に注入することにより薬物を適用する方法を示します。

我々は、薬物の全身アプリケーションによってミツバチの食欲の嗅覚コンディショニングのパラダイム（セイヨウミツバチ）の行動薬理学のメソッドを実装する方法を示します。 、このメソッドでは、メカニズムの基礎となる学習や、シンプルで信頼性の高い方法で、記憶形成の調査を可能にします。

セイヨウミツバチ（Apis mellifera）は、そのコミュニケーション能力、方向定位能力、そして優れた学習能力でよく知られています1,2。…のため、

本手順の総合的な目的は、学習および記憶形成の根底にある分子メカニズムを研究することです。ミツバチにおいて、最初のステップは巣から自由に飛び回っているハチを採集することです。次に、ハチをプラスチックチューブに固定します。本手順の第3段階は、古典的条件付けを行うことです。学習および記憶形成への影響を調べるため、条件付け前後の特定の時点で薬物を注入することがあります。手順の最終段階は、記憶の保持をテストすることです。最終的に、薬物投与後の行動の変化により、ミツバチにおける学習および記憶形成の根底にある分子メカニズムを明らかにできる可能性があります。この手法は、記憶形成の分子メカニズムを解明することで、記憶研究分野における重要な疑問への回答に寄与します。一般的に、この手法に不慣れな研究者は、条件付けおよび記憶想起における刺激提示のタイミングを正確に制御する必要があるため、困難に直面します。また、給餌法も極めて重要です。本手順は、私の研究室の大学院生であるcutting gearingおよびJohannes fabergによって実演されます。実験の前日、UV透過性プレキシガラス製ピラミッドを用いて、午後2時から4時の間に蜂を採集してください。ラボに戻ったら、ピラミッドを底辺で立て、頂上部のみを露出させた状態で、壁面をタオルで遮光します。頂上部を開き、開口部の上のガラスバイアルにハチが1匹ずつ入るようにして、その後すぐに閉じます。秋および冬において、すべてのハチをガラスバイアルに移し替えるまで、この手順を繰り返します。ミツバチが屋外を飛んでいないときは、温室内のネットで蜂群を管理し、個別のミツバチをネットから直接捕獲します。1匹につき1本のガラスバイアルを使用し、バイアルを氷上で2分30秒から3分30秒間冷却してミツバチを不動化させます。ミツバチの状態を注意深く観察し、動きが止まったらすぐに氷から取り出してください。固定したミツバチを、粘着テープを用いて小さなプラスチックチューブに固定します。ミツバチが腹部を自由に動かせるようにし、頭部、胸部、脚は動かないように固定してください。また、首を圧迫しないようにすることが重要です。ミツバチの準備が完了したら、取り扱いと識別の便宜を図るため、チューブをラックの番号付きボアホールに挿入します。チューブは常に同じ巣穴に戻します。処理後、コンディショニング場所とは異なる場所で、午後4時から6時の間にミツバチに給餌します。ミツバチの体に触れ、触角を刺激することで、口吻伸展反応（PER）を誘発させます。ショ糖溶液を用いて、ミツバチに約4 µLのSRA溶液を1滴摂取させます。その際、ミツバチの触角や口器、またはプラスチックチューブを汚さないように注意してください。ミツバチが摂取しなくなるまで、それぞれに給餌します。触角が溶液に触れた際に、迅速かつ確実な確率的反応（PER）を示すことを確認します。実験の以降の夜は、各ミツバチに1滴のショ糖溶液を4回与えます。高さ約0.5～1 cmのプラスチック製ボウルに水道水を満たします。リサプレートをプラットフォームとして使用し、固定したミツバチが入ったラックをボウルに入れます。ボウルを段ボールで覆い、室温で一晩保存します。採集翌日の午前10時頃に、ミツバチに嗅覚条件付けを行います。実験開始の30分前に、ハーネスを装着したミツバチが入ったラックを条件付けサイトの近くに配置します。ただし、ミツバチを訓練する排気管の開口部からは離して置いてください。次に、フード内で条件刺激を調製します。フィルターチップを用いて、4 µLのクローブオイルを丸いフィルターペーパーにピペッティングします。香り付けしたフィルターペーパーを20 mLシリンジに入れ、プランジャーを挿入します。実験者に音信号を送るためのオーディオプレーヤーを設定します。これにより、刺激の提示開始、提示終了、持続時間、および配置のタイミングを正確に制御できます。条件付けの間、ミツバチの行動を記録する準備をしてください。条件刺激の開始から無条件刺激の提示までの間に、ミツバチがSSISを伸展させた場合に陽性スコアを与えます。開いた大顎の間の仮想線を横切ること。獲得試行を開始するには、訓練するミツバチを選択し、排気口の前に10秒間配置します。この10秒間のインターバルの終了直前に、臭気を含むシリンジをミツバチの触角から3 cm離して配置します。シリンジから20 mLの空気を送り出すことで、5秒間にわたって臭気を提示します。3秒後、湿らせた爪楊枝を用いてショ糖溶液で両方の触角の遠位鞭毛の腹側部分に触れ、無条件刺激を与えます。ミツバチ本体や触角に溶液が付着しないよう注意しながら、ミツバチに爪楊枝を舐めさせます。この複合刺激を4秒間継続した後、ミツバチを訓練環境から取り出し、ラックに戻します。条件刺激の提示から13秒後までを含め、1回のトレーニング試行は28秒間続きます。試行間隔を10分空けてから、ミツバチをトレーニング場所に連れ戻します。前述の手順に従って3回中の2回目の試行を行い、さらに10分待機してから最後のペアリングを実施します。その日の訓練が終了したら、ラックをボウルに戻します。午後4時から6時の間に、各ミツバチに4 µLのショ糖溶液を1滴ずつ、計4回投与することを忘れないでください。前述のように、保持テストは訓練後、数分から数日の任意の感覚で実施可能です。記憶テストの準備として、ミツバチのラックを条件付け部位の近くに30分間置きます。蜂を排気口の前に10秒間置いてテストを開始します。条件刺激を5秒間提示し、PERの発生を確認します。その日のテストが完了した後、ラックをボウルに戻します。以前に実演した通り、午後4時から6時の間に、1匹のミツバチに4 µLのショ糖溶液を4回与えてください。全実験の最後に、SRA溶液で触角に触れ、ミツバチが依然として口吻を伸ばせていることを確認し、解析対象に含めます。ミツバチは全実験を通じて生存し、PERが完全な状態で保持されている必要があります。一部の研究では、嗅覚記憶に対する薬理学的介入の効果を調べるために、全身投与が用いられます。これらの投与は、実験デザインに応じて異なるタイミングで行われます。まず、使い捨て皮下注射針を用いて、飛翔筋の上方にあるS scootle裂付近のS scootin後部の角皮に小さな穴を開けます。次に、ガラス毛細管にテストする溶液を1 µL満たします。毛細管を角皮の穴に挿入し、溶液を飛翔筋に注入します。熟練した実験者は30秒に1回Bを注入することができ、これにより注入と条件付けの正確なタイミング制御が可能になります。ここでは2つの実験を提示します。最初の実験では、トレーニング前に生理食塩水を全身投与したことが記憶の学習に及ぼす影響を検討します。本研究では、無処置のAグループ、1 µLのリン酸緩衝生理食塩水を全身投与したグループ、またはシャムグループの3つのグループを設定しました。これらの処置は、左側に示すトレーニングの30分前に行われました。獲得段階において条件反応を示した動物の割合は、3回のトレーニング回数を経て増加しましたが、グループ間に差は認められませんでした。右側の棒グラフは、PBSの注入および擬似病変のいずれも記憶保持に影響を与えなかったことを示しています。2回目の実験では、トレーニングの24時間後に、トレーニングから40分後に注入を行いました。ミツバチを、生理食塩水を投与するグループと、タンパク質合成阻害剤であるアニサイクリンを1 µL投与するグループの2つのグループに分けました。右側の棒グラフは、アニサイクリンを投与されたミツバチにおいて記憶保持が明らかに低下したことを示しています。これらの結果は、嗅覚記憶の形成におけるタンパク質合成の重要性を強調するものです。本手順に従い、電気生理学的記録を行うことで、発達後の学習および記憶形成の神経生理学的基盤は何かといった追加の疑問を解消することができます。この手法は、学習および記憶研究の分野において、ミツバチの記憶形成における分子および神経生理学的メカニズムを探索する研究者に道を開きました。

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

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