December 10th, 2010
ファージディスプレイライブラリーは、ターゲットの骨そのペプチド配列を同定するために使用された。目的は、間葉系細胞の分化に対するこれらのペプチドの効果を調査すると骨再生への影響を決定することでした。
この実験の全体的な目標は、間葉系細胞の分化を増強し、骨修復を促進する配列を特定することです。最初のステップは、骨に結合するファージをバイオパンニングして単離することです。間葉系細胞に結合するペプチド配列の同定に進み、その後の遺伝子発現の変化も決定します。
ペプチド配列を骨に送達して再生する方法を決定するための実験を行います。最後のステップとして、骨修復を組織学的に調べると、その結果をまとめると、in vitroでの細胞分化とin vivoでの骨修復のメカニズムに関する重要な洞察を得ることができます。ファージディスプレイライブラリーとバイオップパンニング技術を併用する利点は、骨を標的とするペプチドを同定でき、間葉系細胞の分化を刺激し、骨修復を増強するために使用できることです。
最終的に、これらのペプチド配列は、骨修復のための治療法や、骨減少症や骨粗鬆症などの骨量減少の治療に役立つ可能性があります。ULAとPascalがバイオップパンニングを使用して血管を標的とするペプチド配列を分離できることを示した研究に基づいて、この方法を骨のメカニズムのクエリに適応させることを選択しました。in vivoバイオパンニング手順では、10週齢のバルブCマウスの心臓を介して、N-E-B-P-H-D 12ファージディスプレイペプチドライブラリーの10〜10番目のプラーク実行ユニットを10回灌流しました。
約5分後、マウスを安楽死させ、大腿骨を露出させて解剖し、端を切り取り、骨髄を取り除きます。左大腿骨の内側と外側の両方をPBSで10回すすぎます。次に、骨をER2 5 3 7細菌に加えます。
非結合ファージを除去するためには、21ゲージの針が付いた注射器で2%乾燥スキムミルクを使用し、右大腿骨の中間管を10回すすぎます。次に、結合したファージを中間管から塩酸グリシン緩衝液で溶出します。pH 2.2 1 mol la trissで中和。
ファージを増幅するには、小胞体2 5 3 7細菌にEITを添加し、4.5時間培養します。上清を新鮮なチューブに慎重に移し、ポリエチレングリコールを添加してファージを3回沈殿させます。塩化ナトリウム溶液は、チューブを摂氏4度で一晩インキュベートします。
最後に、ペレットを0.02%アジ化ナトリウムでTBSに再懸濁します。ファージをプレート上にプラークして、増幅されたEITのプラーク形成単位を決定します。逃れたファージと溶出していないファージの両方について、in vivoバイオパンニング手順を4回繰り返します。
細菌培養物でプールされたファージを増幅します。DNA配列を精製および定量し、ファージディスプレイキットに付属の98プライマーを用いて最終的なファージDNAを調製する。重要なのは、ファージDNA配列表現の頻度を計算することです。
次に、グリシン、グリシン、シン、リジン、配列シードを組み込んだペプチドを合成し、D one細胞を増幅します。私たちの研究室で90%コンフルエンスで開発されたクローンマウス多電位骨髄間質細胞株。トリプシンは、ゼラチンコーティングされたチャンバー上のペプチド染色プレート細胞を24時間24時間培養し、ペレット化してカウントするための細胞と遠心分離機です。
細胞をPBSで洗浄し、4%パラアルデヒドで30分間固定します。次に、グリシンによるブロッキングインキュベーションを行い、続いてBSA AdenとBBSAでインキュベートします。ビオチンブロッキングソリューション。
ビオチン化L 7ペプチドとR oneペプチドを100マイクロモル添加します。細胞をPBSで3回、それぞれ5分間洗浄します。1000倍に希釈したLORストリピンカバーとホイルを加え、暗い引き出しで30分間インキュベートします。
セルを洗浄し、カバースリップをベクターシールド封入剤で封入します。次に、手術の24時間前に蛍光顕微鏡でスライドを分析します。ジェルフォームシリンダーを浸します。
20マイクロモルのペプチド、LセブンまたはRワン、またはペプチドを含まないPBS緩衝液を含むゲルフォームシリンダーを滅菌12に移します。よく培養した料理は、手術時に摂氏4度で一晩冷蔵します。使用するまで、ゲルフォンコンポジットを氷の上に置きます。
生理食塩水灌漑下で空気圧バリを使用して、幅3ミリメートル×長さ8ミリメートルの大きな長方形の単皮質欠損を作成します。準備されたジェルフォームで、埋め込まれたすべての足場を優しくたたいて挿入することにより、骨欠損を治療します。ラットを安楽死させ、定義された時点で脛骨を収集し、骨の欠陥を注意深くチェックし、採取した脛骨をパラフィン切片用の10%中性緩衝ホルマリンに固定します。
最後に、すべての組織切片をヘマチンエオシンで染色し、骨マトリックスを標識します。Adenで標識されたフルオレセインイソチオシアネートは、in vitroで増殖した細胞上のペプチドの結合を顕微鏡で検出することができます。ここでは、ペプチドは培養中の間葉系細胞に結合して、細胞に対するペプチドの骨形成効果を決定します。
培養中のin vitro間葉系細胞を試験ペプチドで処理して、細胞形態の変化を判定することができます。たとえば、4日目には、細胞が凝集し始め、凝集体が時間とともに拡大して結節を形成します。興味深いことに、骨切片は紫外線下でhおよびe自家蛍光で染色されました。
このように骨組織と非骨組織とのコントラストが大きくなるため、ゲルフォームとペプチドで処理した欠損部の骨修復を決定するための切片内の骨の存在を定量化する分析が容易になります。ここでゲルフォーム単独と比較すると、プラスペプチドで満たされた欠損は、この手順を試みている間、時間とともに最大の皮質修復を示しました。データ入力は、ペプチドの最終グループを選択するまで、時間の経過とともに常に多数の検体が蓄積されるため、非常に系統的に行うことが重要です。
骨を標的とするペプチドを同定する技術としてin vivoバイオップパンニングが開発されたことで、骨修復や骨量減少の治療薬として使用できる可能性のある薬剤が手に入りました。骨修復の根底にあるメカニズムの1つは、骨量減少にも関与しています。これらのメカニズムをより詳細に理解し、遅延骨折や骨粗鬆症などの疾患の治療に使用できるツールを用意することは、医療のために考案できる治療法を改善するのに役立ちます。
この研究は、骨をターゲットとするペプチド配列と、それらが間葉系細胞の分化と骨再生に与える影響を調査します。ファージディスプレイライブラリを使用して、研究は骨修復メカニズムを強化するペプチドを特定することを目指しています。
This study demonstrates how phage display-derived peptides can modulate mesenchymal cell differentiation to enhance bone repair, offering a target validation strategy for regenerative therapeutics. The approach supports early discovery by identifying bioactive sequences that potentiate osteogenesis in preclinical models. Such target-de-risking tools improve predictive confidence in bone anabolic pathway modulation.
The method fits within the discovery continuum from target identification through lead optimization to preclinical validation in bone repair models.