Name: げっ歯類のマラリア原虫の遺伝的交雑の生産のためのプロトコル (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-01-03T17:30:00.000+00:00
Duration: 13 min 39 s
Description: 学ぶ Plasmodium yoelii の遺伝的交雑法。マウスと蚊を用いて組換えプロゲニーを生成し、マラリアの薬剤耐性や伝播性の遺伝的決定因子を解明する。この手法は他のげっ歯類マラリア原虫にも応用可能である。

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私たちは、原稿の重要な読書のために、博士ランディエルキンズ、ロビンKastenmayer、テッドトーリー、ダンパレとToviリーマンに感謝。この作品は、＃2007CB513103、学内研究の部門の学内研究プログラム、アレルギーや国立感染症研究所、国立衛生研究所によって、中国の973国家基礎研究プログラムによってサポートされていました。我々は援助のためにNIAID学内エディタブレンダレイマーシャルに感謝。

無菌技術は、実験結果を混乱させることができるマウスに外因性の感染性病原体の不注意な導入を避けるために動物に投与されるすべての材料に適用する必要があります。 1。血液ステージマラリア原虫を持つ実験用マウスの感染症<ol><li>室温で、交差する冷凍血液ステージマラリア原虫を含む二つのバイアルを解凍。この例では、使用される2つのげっ歯類のマラリア原虫の株は、 マラリアyoelii yoeliiとマラリアyoeliiのnigeriensisです。 </li><li> 22から30ゲージ（G）針と注射器を取り付け、滅菌、医薬品グレードのPBS（pH7.4）を400μLを描く。 </li><li>同じ注射器を使用して、解凍した感染血液100μLを立て、内容が均一に混合されるまで上下シリンジを反転させる。 （オプション：ピペットを注入用注射器に転送する前にコレクションチューブにPBSと感染した血液を転送するために使用されることがあります）。 </li><li>マウスの腹膜に直接溶液を含む寄生虫の200μLを注入する。終了したら、鋭利ビンの注射器を廃棄する。 （また、実験用マウスの維持のための補足資料を参照してください）​​。一般的には、接種の標準サイズは、オリジナルの冷凍材料における寄生虫感染症のレベルに応じて、100〜500μLの間です。 </li><li>つのマウスそれぞれに交差する二つの寄生虫株を注入する。マウスは、顕微鏡的に3〜5日間注射した後に正となる。 parasitemiasは1-5％の間に到達すると、次の手順に進みます。 </li></ol> 2。マウスの混合クローン感染<ol><li>混合クローンの感染前に、（詳細な手順については補足資料を参照してください）​​ギムザ染色した血液を薄める塗抹標本による顕微鏡検査（図3）、および赤血球の密度の測定のためのさまざまな寄生虫株に感染twoドナーマウスから尾部血を採取する。 </li><li>以前取得した寄生虫血と赤血球の密度測定を使用して、生理食塩水（1.5％w / vのクエン酸三ナトリウム二水和物、0.85％（w / v）の塩化ナトリウム）と接種の混合物を生成するために必要なマウスの血液の量を計算します。 </li><li> 100μlの100万件の感染赤血球の最終濃度に寄生虫ソリューションを調整します。 </li><li>混在クローン接種を得るために1:1の比率で2つのドナーから感染した血液を組み合わせる。 2つの親のクローンは、成長率が異なるときは、1:2または1:5の遅い成長している親クローンの親の急成長の割合を調整する。 </li><li>感染していることが、各マウスの腹腔内に混合試料の100μLを注入する。 （注入するマウスの数を決定するために3.9をステップも参照） </li><li>この方法を使用して、単一の親系統とのそれぞれ2つのマウスに感染する。単一クローンの感染は2つの親系統の正常な伝送の決定が可能になります。 </li></ol> 3。摂食蚊<ol><li> 300から500までの成人（男性と女性）ハマダラカ蚊それぞれ、蛹から年齢5〜7日のポスト出現を備えた三ケージを用意します。容器は、プラスチックまたは金属製の蓋で安全な網で覆われている。二つのケージは、親のクローンに供給するためであり、第三ケージは、遺伝的交雑の準備のためです。 </li><li>混在クローン感染後4日以降、感染マウスからギムザ染色した血液を薄めるの尾の塗抹標本を準備する。 </li><li> 1000X倍率で少なくとも50顕微鏡のフィールドを走査することにより顕微鏡下で塗抹標本を調べ、男性と女性のgametocytesが存在するかどうかを決定する。 </li><li>男性と女性のgametocytesは大きな液胞と大型顆粒の存在（図3）に起因する認識です。男性と女性のgametocytesはそれぞれ、ピンクとブルーの細胞質を持っている。 gametocytesが存在する場合は、ステップ3.6に従ってください。 </li><li> gametocytesが存在しない場合は、表示されるまで、毎日監視をしてください。 gametocytesが存在する場合、次の手順を続けます。 </li><li> 33 mg / mLのケタミンのと、それぞれ感染したマウスを（20グラムのマウス体重あたり）麻酔マウスの腹膜にキシラジンの3 mg / mLのを含む麻酔薬のカクテルの50μLを注入する。ケタミンとキシラジンの最終的な投与量はそれぞれ82.5と7.5 mg / kgを、です。 </li><li>マウスは24時間のために砂糖の供給が不足し、蚊が中断することなく30分間供給することを許可されている成人のハマダラカ蚊を含むケージの上に伏せて置きます。 </li><li>標準的な条件下での昆虫館で蚊を維持する（温度を24〜26 ° Cの間で維持される;も研究室蚊の維持のための補助メソッドも参照）。 </li><li>すべての50から100メスの蚊用の感染マウスを使用してください。マウスは、麻酔下にまだある間、給餌後に頚椎脱臼によりすぐにマウスを安楽死させる。 </li></ol> 4。解剖モスキートMidgUTSとカウントオーシスト<ol><li>九日給餌後、蚊は昆虫の中腸におけるオーシストのために調べられます。単クローン感染マウスでの飼料は2つの親系統のgametocytesが感染していることを示している蚊のオーシストの存在。 </li><li>蚊中腸を解剖するために、ケージから徒歩5〜10感染した蚊を収集するための小さな容器に接続されてアスピレーターを使用してください。 </li><li> CO 2ガスを使用して、蚊を麻酔し、氷の上にガラスシャーレに入れ、それらを転送する。オス蚊を分離して捨てる。男性のアンテナは、女性に比べて著しくbushierです。 </li><li> PBSで2つのシリンジを記入し、26ゲージ半インチ（G ½）針とそれらをフィット。スライドグラス上にシリンジからのPBS 100μL程度預金。 </li><li> PBSのドロップに5〜10麻酔メスの蚊を移し、解剖顕微鏡でスライドを配置する。 </li><li>同じ針を使用すると、胸部と後腹部に昆虫を持って、その後、各蚊の羽と足を削除、中腸、白い袋状体、リリースされるまでは離れて身体を引っ張る。腸を切り離し、本体の残りの部分を捨てる。 </li><li>スライドが乾燥している場合腸に多くのPBSを追加。乾燥させる場合腸が退化します。 midgutsにカバースリップを置きます。 </li><li> 100倍の倍率で、光学顕微鏡下でmidgutsを調べます。 （図3）それぞれの中腸でオーシストの数を数える。オーシストはmidgutsの外面上にある厚肉円形の構造物として認識できます。 </li><li>終了したら、注射器、針、そして鋭利ビンのスライド処分する。 </li><li>オーシストはmidgutsに存在しない場合、gametocytesの高い数と感染したマウスで蚊を供給し、より長い餌の時間を与える。温度は、このステップが重要です。温度が24から26℃に設定されていることを確認</li></ol> 5。遠心法による蚊からスポロゾイトを収集<ol><li>次のようにスポロゾイトコレクションチューブを準備します。クリーンな0.5 mLの遠心管の蓋をカットし、燃え上がる19 Gの針を使用してチューブの底に穴（0.1〜0.2ミリメートルの直径）をパンチ。 </li><li>グラスウールとチューブの1 / 3を埋める。 1.5 mLのコレクションチューブ（一管が約100蚊からスポロゾイトを収集するのに十分である）にフィルターチューブを挿入します。 </li><li> 17日目後の給餌では、ケージからアスピレーターを使用して、小さな容器の中に蚊を（ステップ4）を収集。 </li><li>蚊を麻酔するためにCO 2ガスを使用してください。 </li><li>男性蚊から女性を区切ります。容器から氷の上にガラスシャーレに麻酔したメスの蚊を転送します。 </li><li> 26 G ½ PBSで満たされた注射針で2つのシリンジを準備します。スライドグラス上にシリンジからのPBS 100μL程度預金。 </li><li>顕微鏡スライド上に蚊を転送する。解剖顕微鏡下で蚊の頭、翼、脚、腹部を削除します。 </li><li>先の細いピンセットを使用すると、1.5 mLのホモジナイザー（乳鉢と乳棒）の0.5mLのPBS中に胸部を移す。氷の上胸部を保存する（スポロゾイトは2〜3時間感染のまま）。 </li><li> （図3を参照）唾液腺からスポロゾイトを解放するために氷の上胸部をホモジナイズし、ガラスピペットを用いて、ガラスウール（ステップ5.1から5.2）で満たされたチューブにライセートを（ホモジネート）に転送。 </li><li>室温で1000rpmで10〜20秒間遠心します。 </li><li>フロースルー（精製のスポロゾイトの懸濁液）22から30 Gの針と注射器を使用して収集する。 （オプション：ドロップフロースルーを顕微鏡スライド上に、カバーが標準的な光学顕微鏡、400X倍率下でのライブスポロゾイトをスリップし、視覚に配置、また、参照して図3の10〜50μL） </li><li>マウスにスポロゾイトサスペンションのIP 0.1から0.5 mLを注入する（最大200,000寄生虫への単一の蚊から収穫することができる。文献12を参照してください）​​。成功した場合には、動物は注射後72時間を感染します。 </li></ol> 6。限界希釈を用いてクローニング子孫<ol><li>スポロゾイトの注射後の七十二時間、（詳しい手順については補足資料を参照してください）​​薄い血液塗抹標本のギムザ染色後、赤血球の細胞密度の測定のための顕微鏡検査のための別の寄生虫の株に感染twoドナーマウスから尾部血を採取する。 </li><li> 0.1から1パーセントの寄生虫を表示するマウスを選択し、その感染した赤血球は、クローニングプロシージャのためのドナーとして、主に単一の寄生虫が含まれています。マウスは微視的に負の場合、6.1次の日繰り返します。動物は14日以内に感染していない場合、）5にステップ2を繰り返し、ステップ5.11スポロゾイトの存在を決定する。 </li><li> CONを達成するように子牛血清と哺乳類リンゲル液の冷1:1溶液（2.7 mMの塩化カリウム、1.8 mMの塩化カルシウム、154 mMの塩化ナトリウム）で収穫された尾の血を薄める100μLあたり0.6から1に感染した赤血球のセンタリング、そして氷の上に接種して保存する。このように、個々のマウスのほとんどは、1または0の寄生虫のいずれかを受信する必要があります。 </li><li>静脈内投与50から100のマウスのそれぞれの希釈感染血液100μLを注入する。 </li><li> 5〜7日後、ギムザ染色した血液を薄めるの塗抹標本を調べることによって、血液ステージ寄生虫の存在のためのマウスをスクリーニングする。成功した実験で、マウスの20〜50％が感染すると8日目、感染後に0.1から5.0パーセントの寄生虫が表示されます。 </li></ol> 7。遺伝マーカーを用いて後代の特性評価<ol><li>チルド生理クエン酸食塩水、ボルテックスを短時間、及びペレットに室温で3000rpmで3分間遠血液細胞の0.2mLを含んでいる1.5 mLのマイクロ遠心チューブにマウスの尾の血液の20〜40μLを収集する。すぐにDNAを抽出または-80ペレット℃を保つ</li><li>任意の標準的なDNA抽出法を用いて寄生虫のDNAを準備します。 DNAの迅速分離のために、高純度PCRテンプレート調製キット（ロシュダイアグノスティックスバイオサイエンス）を使用します。 </li><li>組換え子孫は、マイクロサテライト（MS）や遺伝的交雑の2つの親系統を区別できる、異なる染色体上の一塩基多型（SNP）を用いて遺伝子型の後に識別されます。 P.のMS遺伝子タイピングのための単一蛍光標識したプライマーを用いて、簡便法yoeliiは、（REF 8,9を参照）を使用することができる。 </li></ol> 8。血液ステージマラリア原虫の凍結保存<ol><li> 50〜10 mLの50から20パーセントの寄生虫血で麻酔マウスから心臓穿刺による感染血液の0.5〜1 mLを収集するには、生理食塩水を冷やした。 </li><li>室温で2000rpmで5分間遠心する。上清を捨てる。 </li><li>血液のペレットにGlycerolyte 57ソリューション（Fenwalの研究所）の滴2倍のボリュームを加え、よく混ぜる。 </li><li>クリオチューブ（試験管当たり0.2から0.5 mL）に懸濁液を移す。 </li><li> -80 ° C（最大1ヶ月）で、または液体窒素で凍結保存した血液を保管してください。 </li></ol> 9。代表的な結果： 成功した実験では、クローン化された行の5〜10％は、独立した組換え子孫になります。 <img src="/files/ftp_upload/2365/2365fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 図1。遺伝的交雑の間にライフサイクルと遺伝的組換え現象の概略を表現。遺伝子組換えイベントは、蚊の開発の初期段階で行われる。蚊の中腸の異なる遺伝的背景の"半数体"男性と女性の配偶子の受精に続いて、"二倍"受精卵が形成されています。接合子は、寄生虫のライフサイクルの唯一の二倍のステージを構成し、減数分裂は受精の12時間以内に従っており、蚊や哺乳類のすべての後続の段階では、半数体のまま。結果として得られる受精卵はookinetesとオーシストに開発しています。各オーシストの生育と有糸分裂は、蚊"hemocealに放出されるスポロゾイト、数千を生成します。唾液腺に移行それらのスポロゾイトが肝臓と赤血球の段階の開発が行われる哺乳動物宿主、に送信する立場にあります。赤血球サイクルの過程で、いくつかの寄生虫が成熟したオスとメスgametocytesに分化することができる。これらのgametocytesが伝送を永続させる、別の蚊によって取り込まれる際に寄生虫のライフサイクルは完了です。 <img src="/files/ftp_upload/2365/2365fig2.jpg" alt="図2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図2"> 図2。マラリア原虫と組換え後代の生産における核遺伝子の継承。遺伝子組換えは、染色体の再集合を介して、またはクロスオーバーのイベントによって生成することができます。ホモ接合性の子孫は、同じ親クローン1または2（AとD）、それぞれの配偶子の間に自殖によって生成。 B）二つの異なる親のクローンを、単独で染色体の再集合によって形成されている組換え核（青い楕円）の配偶子間のクロス受精によって生成されるヘテロ接合子孫。 C）相同染色体の非姉妹染色分体の間に陸橋が形成されている2つの異なる親のクローン、組換え核（赤楕円）の配偶子間のクロス受精から生産ヘテロ接合子孫。 <img src="/files/ftp_upload/2365/2365fig3.jpg" alt="図3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図3"> 図3。げっ歯類のマラリア原虫yoeliiの形態。 10日目のポストでオーシストを持つA）段リング、B）栄養型、C）シゾント、D）メロゾイト、E）幼若雄生殖母体、F）成熟した雄の生殖母細胞、G）未成熟雌の生殖母体、H）成熟した雌の生殖母体、私は）中腸給餌（矢印で示される成熟したオーシスト、200倍）、J）蚊の唾液腺（100 ×倍率）、K）スポロゾイト（400X倍率）。

<ol><li>Hayton, K., Ranford-Cartwright, L. C., Walliker, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sulfadoxine-pyrimethamine+resistance+in+the+rodent+malaria+parasite+Plasmodium+chabaudi%5BTitle%5D)+AND+%22Antimicrob+Agents+Chemother%22%5BJournal%5D)">Sulfadoxine-pyrimethamine resistance in the rodent malaria parasite Plasmodium chabaudi.</a> Antimicrob Agents Chemother. 46, 2482-2489 (2002).</li>
<li>Cravo, P. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetics+of+mefloquine+resistance+in+the+rodent+malaria+parasite+Plasmodium+chabaudi%5BTitle%5D)+AND+%22Antimicrob+Agents+Chemother%22%5BJournal%5D)">Genetics of mefloquine resistance in the rodent malaria parasite Plasmodium chabaudi.</a> Antimicrob Agents Chemother. 47, 709-718 (2003).</li>
<li>Hunt, P., Cravo, P. V., Donleavy, P., Carlton, J. M., Walliker, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chloroquine+resistance+in+Plasmodium+chabaudi%3A+are+chloroquine-resistance+transporter+%28crt%29+and+multi-drug+resistance+%28mdr1%29+orthologues+involved%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Biochem+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Chloroquine resistance in Plasmodium chabaudi: are chloroquine-resistance transporter (crt) and multi-drug resistance (mdr1) orthologues involved?</a> Mol Biochem Parasitol. 133, 27-35 (2004).</li>
<li>Yuan, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+mapping+of+targets+mediating+differential+chemical+phenotypes+in+Plasmodium+falciparum%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Chem+Biol%22%5BJournal%5D)">Genetic mapping of targets mediating differential chemical phenotypes in Plasmodium falciparum.</a> Nat Chem Biol. 5, 765-771 (2009).</li>
<li>Su, X., Kirkman, L. A., Fujioka, H., Wellems, T. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complex+polymorphisms+in+an+approximately+330+kDa+protein+are+linked+to+chloroquine-resistant+P.+falciparum+in+Southeast+Asia+and+Africa%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Complex polymorphisms in an approximately 330 kDa protein are linked to chloroquine-resistant P. falciparum in Southeast Asia and Africa.</a> Cell. 91, 593-603 (1997).</li>
<li>Hayton, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Erythrocyte+binding+protein+PfRH5+polymorphisms+determine+species-specific+pathways+of+Plasmodium+falciparum+invasion%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Host+Microbe%22%5BJournal%5D)">Erythrocyte binding protein PfRH5 polymorphisms determine species-specific pathways of Plasmodium falciparum invasion.</a> Cell Host Microbe. 4, 40-51 (2008).</li>
<li>Pattaradilokrat, S., Cheesman, S. J., Carter, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Congenicity+and+genetic+polymorphism+in+cloned+lines+derived+from+a+single+isolate+of+a+rodent+malaria+parasite%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Biochem+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Congenicity and genetic polymorphism in cloned lines derived from a single isolate of a rodent malaria parasite.</a> Mol Biochem Parasitol. 157, 244-247 (2008).</li>
<li>Li, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hundreds+of+microsatellites+for+genotyping+Plasmodium+yoelii+parasites%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Biochem+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Hundreds of microsatellites for genotyping Plasmodium yoelii parasites.</a> Mol Biochem Parasitol. 166, 153-158 (2009).</li>
<li>Li, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Typing+Plasmodium+yoelii+microsatellites+using+a+simple+and+affordable+fluorescent+labeling+method%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Biochem+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Typing Plasmodium yoelii microsatellites using a simple and affordable fluorescent labeling method.</a> Mol Biochem Parasitol. 155, 94-102 (2007).</li>
<li>Walliker, D., Carter, R., Morgan, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+recombination+in+malaria+parasites%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Genetic recombination in malaria parasites.</a> Nature. 232, 561-562 (1971).</li>
<li>Sinden, R. E., Hartley, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+the+meiotic+division+of+malarial+parasites%5BTitle%5D)+AND+%22J+Protozool%22%5BJournal%5D)">Identification of the meiotic division of malarial parasites.</a> J Protozool. 32, 742-744 (1985).</li>
<li>Ozaki, L. S., Gwadz, R. W., Godson, G. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simple+centrifugation+method+for+rapid+separation+of+sporozoites+from+mosquitoes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Simple centrifugation method for rapid separation of sporozoites from mosquitoes.</a> J Parasitol. 70, 831-833 (1984).</li>
<li>Yoeli, M., Most, H., Bone, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasmodium+berghei%3A+cyclical+transmission+by+experimentally+infected+Anopheles+quadrimachulatus%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Plasmodium berghei: cyclical transmission by experimentally infected Anopheles quadrimachulatus.</a> Science. 144, 1580-1581 (1964).</li>
<li>Landau, I., Boulard, Y. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLandau%2C+I+%22Life+cycles+and+Morphology%22">Life cycles and Morphology</a>. , Academic Press. London/New York/San Franciso. (1978).</li>
<li>Vanderbergh, J. P. Y., M, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+temperature+on+sporogonic+development+of+Plasmodium+berghei%5BTitle%5D)+AND+%22J+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Effects of temperature on sporogonic development of Plasmodium berghei.</a> J Parasitol. 52, 559-564 (1966).</li>
<li>Gadsby, N., Lawrence, R., Carter, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+study+on+pathogenicity+and+mosquito+transmission+success+in+the+rodent+malaria+parasite+Plasmodium+chabaudi+adami%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Parasitol%22%5BJournal%5D)">A study on pathogenicity and mosquito transmission success in the rodent malaria parasite Plasmodium chabaudi adami.</a> Int J Parasitol. 39, 347-354 (2009).</li>
<li>Pattaradilokrat, S., Culleton, R. L., Cheesman, S. J., Carter, R. G. ene <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((encoding+erythrocyte+binding+ligand+linked+to+blood+stage+multiplication+rate+phenotype+in+Plasmodium+yoelii+yoelii%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">encoding erythrocyte binding ligand linked to blood stage multiplication rate phenotype in Plasmodium yoelii yoelii.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 106, 7161-7166 (2009).</li>
<li>Pattaradilokrat, S., Cheesman, S. J., Carter, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Linkage+group+selection%3A+towards+identifying+genes+controlling+strain+specific+protective+immunity+in+malaria%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Linkage group selection: towards identifying genes controlling strain specific protective immunity in malaria.</a> PLoS One. 2, e857-e857 (2007).</li>
<li>Mackinnon, M. J., Read, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+Relationships+between+Parasite+Virulence+and+Transmission+in+the+Rodent+Malaria+Plasmodium+chabaudi%5BTitle%5D)+AND+%22Evolution%22%5BJournal%5D)">Genetic Relationships between Parasite Virulence and Transmission in the Rodent Malaria Plasmodium chabaudi.</a> Evolution. 53, 689-703 (1999).</li>
</ol>

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我々はまた、他のげっ歯類malariasの遺伝的交雑の製造に適用可能である齧歯類マラリア原虫yoelii、の遺伝的交雑の生産のための手法を示します。単一の親のクローンを持つマウスの感染は通常、親がクロスを実行する前に、機能的な配偶子の生産で有能であることを保証するために親の寄生虫の転送に成功したことを判断するために実行されます。 蚊を介して転送の成功は、昆虫館の温度、使用される齧歯類のマラリア原虫の種、および血液ステージ寄生虫の投与（接種のサイズ）を含む複数の要因によって影響される。 P. bergheiの伝送は、通常、19〜21 ° C 13、P.の伝送が達成されている間yoeliiとP. chabaudiは日常的に23〜25 ° C 14で実行されます。 P.のOokinetes bergheiは温度でオーシストに開発するために失敗する16℃より低い、または24℃以上15。温度に加えて、接...

補足資料： <ul><li>実験用マウスのメンテナンス</li><li>実験室蚊のメンテナンス</li><li>染色ギムザで染色薄い血液塗抹標本の顕微鏡検査</li><li>赤血球の細胞密度の測定</li></ul>実験用マウスのメンテナンス 5〜8週齢歳の近交系実験用マウス系統BALB / cの雌は、試験で使用されています。マウスは、フィーダーと水のボトルを装備したワイヤーバー蓋付きの標準のソリッドボトムポリカーボネートケージに収容されています。暗サイクル：マウスは、12：12時間光で一定温度（25 ± 1℃）で維持されています。 （滅菌、ハーラン- Tekladから）マウスは、2018SハーランTekladグローバル19％の蛋白質押出齧歯類の食事を食べに許可され、酸性の飲料水を自由に摂取が付属。動物実験はプロトコルLMVR11E（健康、ベセスダ、メリーランド州の国立研究所）の下でアレルギー感染症研究所における動物実験委員会が定めるガイドラインおよび規則に従って実行されます。 実験室蚊のメンテナンス蚊は、ハマダラカの実験室育ちのコロニーからです。 12：12で、80から95パーセント湿度、大人の温度および湿度調整室（23〜25℃ マラリアyoeliiとマラリアchabaudi用C、および21 to 19 ° マラリアbergheiためのCに保持されているナイロンケージの中で維持される時間の光：明暗サイクル）。大人の蚊は、10％グルコースと2.00％のパラ - アミノ安息香酸（PABA）を補充水溶液を供給している。高品質の大人を取得するには、500幼虫は、炭酸水素ナトリウムの約1 mgに付属の1,000 cm 3のオープン皿に蒸留水1 Lの低密度条件で栽培されています。彼らは蛹の段階へと発展し、新興のための大人の蚊のケージに転送されるまで孵化した後、幼虫はtetramin粉（PETCO）が与えられます。 染色ギムザで染色薄い血液塗抹標本の顕微鏡検査使用してきれいなハサミは、感染したマウスの尾の先端（1.0 mm）をチョキンと切る。きれいな標本スライド上に尾の血の一滴（0.5〜1.0μL）を置きます。マウスは1〜2分で出血を止めるでしょう。標本のスライドに45 °の角度の相対でそれを維持し、血の滴の上にきれいなスプレッダーのスライドを配置し、そして血液がスプレッダーの幅全体に吸着することができます。標本のスライドをホールドし、薄層塗抹標本を生成するために迅速かつ円滑にスプレッダーのスライドを前方に押してください。絶対メタノールにスライドを浸漬し、血液のフィルムは乾燥させて、と。スライドが染色ギムザ（蒸留水で10％ギムザ染色）でそれを覆う前に、もう一度風乾します。室温で10〜15分間血液を薄める膜をインキュベートした後、慎重に水道水でスライドを洗浄して空気を乾燥させる。 1000X倍率（100倍対物レンズ付）と計算寄生虫（RBCはカウント100台iRBCの数）で液浸油と光顕微鏡下で、感染した赤血球（感染した赤血球の形態は図3を参照iRBC）の数を調べます。マラリア原虫の異なる株は、成長率と病原性に変化する。血液ステージparasitaemiasの監視は、血液ステージマラリア原虫の投与量に応じて、注射後24時間行うことができます。 10 7感染RBC腹腔内または静脈内投与10 6感染した赤血球を注射したとき、例えば、マウスは、顕微鏡的に正の24時間になります。 赤血球の細胞密度の測定 parasitaemias、感染マウスの赤血球（RBC）の密度のレベルのような感染の経過を通じて変化する。 RBCの密度は、シングルおよびミックスドクローン感染とクローニング実験の開始前に1〜2時間以内に測定する必要があります。 Cellometerを使用してノイ血球計数器と自動計数（Nexcelomバイオサイエンス）を用いてマニュアルカウント：RBCの密度の測定のための2つの方法があります。両方の方法では、ガラスキャピラリーを用いて、マウスの尾の血の1μL（VWR）を撤回し、PBS 10mLに希釈し、よく混ぜる。ノイバウアーの血球計を使用するには、血球計算盤の上に懸濁液20μLをロードする。 10倍対物レンズと光学顕微鏡で血球計を置きます。血球計算盤は9大の正方形に分割し、グリッドが含まれており、コーナーの4大マスはさらに16の小さな正方形に分割されます。四隅の正方形の16の小さな正方形のそれぞれのセルの合計数をカウントします。バイアスを数えたり、グリッド線に重なるセルをカウントを避けるために、&quot;内&quot;としてセルをカウントし、それが重なっている上または右の線と&quot;アウト&quot;が重なる下部または左の行をした場合。一つの小さな正方形当たりの細胞数を推定し、0.00625（つの小さな正方形の体積は6.25 NLです）で割ります。これは、マイクロリットル当たりの細胞数が得られます（＆ミュー、L）。このデータから、10,000（希釈倍率）を乗じて最終的な赤血球の密度を計算する。空気乾燥し、蒸留水と70％エタノールでカバースリップとカウントチャンバーを洗浄します。また、Cellometerカウントのチャンバースライド上に懸濁液20μLをロードする。 Cellometerスライドチャンバー（リーダー）にスライドを挿入します。 Cellometerソフトウェアを起動し、&quot;赤血球&quot;オプションを選択し、10,000の希釈率を入力します。 RBCの密度を記録します。

げっ歯類のマラリア原虫の遺伝的交雑の生産のためのプロトコル

Protocol for Production of a Genetic Cross of the Rodent Malaria Parasites

抗マラリア薬への応答で、マラリア原虫の病原性の変化は、生物学的および医学的に重要である。リンケージマッピングは4-6 1-3およびヒトのげっ歯類のマラリア原虫の様々な特性の基礎となる遺伝子または遺伝子座の同定に成功につながっている。マラリア原虫yoeliiは野生のアフリカのげっ歯類から分離された多くのマラリアの種の一つであり、実験室で成長するように適応されています。この種は、人間のマラリア原虫の生物学的特性の多くを再現し、そのようなマイクロサテライトや増幅断片長多型（AFLP）マーカーなどの遺伝子マーカーはまた、寄生虫7月9日のために開発されている。従って、げっ歯類のマラリア原虫の遺伝学的研究は、 熱帯熱マラリア原虫の研究を補完するために実行することができます。ここで、我々は、P.の遺伝的交雑を生成するための手法を示します第一博士によって開拓されたyoelii。デビッドWalliker、リチャードカーター、そしてエディンバラ10の大学の同僚。 P.の遺伝的交雑yoeliiと他のげっ歯類のマラリア原虫は、関心の表現型と蚊は4日、感染後に感染したマウスを餌にできるため、異なる2つの遺伝的に異なるクローンのgametocytesを含む接種でマウスのハツカネズミを感染させることによって行われます。マウスの血液中の男性と女性gametocytesの有無を顕微鏡供給する前に確認されている。授乳後48時間以内に、蚊の中腸では、半数体gametocytesは、​​男性と女性の配偶子に分化受精させる、と二倍体の接合子（図1）を形成する。オーキネートへの受精卵の開発中に、減数分裂は11を発生することが表示されます。受精卵は、2つの遺伝的に異なる寄生虫、遺伝的交流（。相同染色体のペアの非姉妹染色分体の間に染色体の再集合し、クロスオーバー、図2）の配偶子間のクロス受精によって派生している場合は、組換えの結果、発生する可能性があります。相同遺伝子座の遺伝物質の。それぞれの接合子は、4倍体の核につながる、二つの連続核分裂を起こす。オーキネートはさらにオーシストに開発しています。オーシストが成熟したら、スポロゾイト（クロスの子孫）の数千人が形成され、蚊のhemocealに放出されています。スポロゾイトが唾液腺から採取し、前赤血球と赤血球ステージの開発が行われる新しいマウス宿主に注入されています。赤血球の形態はクローニングと遺伝子連鎖地図作成の前に親の行を区別する文字に関して分類されます。個々の親のクローンの制御の感染症は、遺伝的交雑の生産と同じ方法で実行されます。

げっ歯類のマラリア原虫の遺伝学的交配は蚊に2つの遺伝的に異なる寄生虫を供給することによって実行されます。組換え子孫は、蚊が感染したマウスを噛まないようにできるようにした後、マウスの血液からクローン化されています。このビデオでは、遺伝的交雑を生成する方法を示しています。<em&gt;マラリアyoelii</em&gt;と他のげっ歯類のマラリア原虫に適用可能である。

抗マラリア薬への反応およびマラリア原虫の病原性の個体差は、生物学的および医学的に重要である。連鎖地図作成により、...

本手順の全体的な目的は、齧歯類マラリア原虫であるPlasmodium yoeliiの遺伝的交雑を行い、組換え子を生成することです。これは、まず、交雑させる2つの親クローンの原虫を含む混合接種物をマウス群に注射することで達成されます。その後、感染したマウスを蚊に吸血させ、蚊の体内において各親系統の配偶体が融合して二倍体の接合子を形成させます。この段階での減数分裂により遺伝的組換えが起こり、組換え子が生成されます。得られたスポロゾイトを蚊の唾液腺から回収し、ナイーブなレシピエントマウスに再接種することで血中期の原虫を得ます。この中に、限界希釈法によって単離可能な個々の組換えクローンが含まれています。実験が成功すれば、クローン化された株の5～10%が組換え体となり、適切な遺伝マーカーのジェノタイピングによって特性を評価できます。この手法は、薬剤耐性原虫の遺伝的決定要因やマラリアの伝播能とは何かといった、マラリア研究分野における重要な疑問への回答に寄与します。寄生虫を、凍結保存された血液期のマラリア寄生虫を含む2本のバイアルとともに室温に置きます。本例では、交雑させる2つのげっ歯類マラリア寄生虫株として、plasmodium yoi、oi、およびplasmodiumを使用します。Yoi Nigeriansは、22〜30ゲージの針を装着したシリンジを用い、同じシリンジで400 µLのPBS pH 7.4を吸い上げます。Thor感染血を100 µL吸い上げ、内容物が均一に混ざるまでシリンジを上下に反転させます。本デモンストレーションでは、痛みとストレスを最小限に抑えるため、麻酔を施した動物を使用します。麻酔は、ケタミン 82.5 mg/kg およびキシラジン 7.5 mg/kg を含む麻酔薬カクテル 50 µL をマウスの腹腔内に注射することで行います。麻酔の深さをモニタリングし、マウスの死亡を防止します。本手順では、マウスは20〜30分間麻酔状態に維持されます。回復させる前に、寄生虫を含む溶液200 µLをマウスの腹腔内に直接注入します。終了後、シリンジをシャープスコンテナに廃棄します。この方法を用いて、注射から3〜5日後に、交雑させる2種類の寄生虫それぞれの株を2匹ずつのマウスに感染させます。感染したマウス内で血液ステージの寄生虫が増殖します。滅菌した鋏を用いて、異なる寄生虫株に感染させたドナーマウスの尾端を切り取ります。マウスの尾血を1滴顕微鏡スライドガラスに採取し、薄層塗抹標本を作成します。この薄層血液塗抹標本をギエム染色液で染色します。Guillem SA染料は、非感染赤血球には核がないため、それらを染色することはありません。SAIは感染赤血球内の寄生虫の核を染色し、赤血球内にはリングステージ、トロフォゾイト（栄養体）、シゾント（分裂体）、および破裂直前のメロゾイトの形態で寄生虫が現れます。両方のマウスにおいて寄生率が1%から5%に達すると、混合クローン感染用の血中ステージ寄生虫を回収することができます。異なる寄生虫に感染させたドナーマウスの尾端を、前述の通り滅菌済みのハサミで切除します。ガラスキャピラリーを用いて、1 mLの滅菌PBSにマウスの尾血を1 µL採取します。この血液懸濁液 20 µLを用いて、cellomeで赤血球密度を分析します。赤血球密度およびパラサイト測定値を用いて、感染赤血球濃度が100 µLあたり100万個になるように、生理的クエン酸食塩水で血液サンプルを希釈します。2人のドナーから得た感染血サンプルを1:1の比率で混合し、混合クローン接種液を作成します。次に、感染させる各マウスの腹腔内に、この混合サンプル100 µLを注入します。各親株の伝播が成功したことを確認するため、単一クローンの感染には2匹のマウスを使用します。雄および雌のガメトサイトと呼ばれる寄生虫の有性世代は、感染から約4日後にマウスの血液中に現れ始めます。前述の方法で尾血を採取し、薄い血液塗抹標本を作成することで、ガメトサイトの出現を毎日モニタリングし始めてください。雄と雌のcytesは、大きな顆粒または色素の存在によって識別可能です。雄のgato sitesの細胞質はピンク色であり、一方で雌のTER sitesの細胞質は青色です。成熟したgato sitesのみに大きな液胞が見られます。雌雄両性の成熟した細胞が検出されたら、そのマウスを蚊に吸血させることができます。感染した各マウスの腹腔内に、ケタミン、キシラジンおよび麻酔薬溶液を50 µL注入します。マウスが麻酔状態になったら、糖分を24時間絶食させた50から100匹の雌のAnis defense enzyme蚊が入ったケージの上に、マウスを腹側が下になるように配置し、30分間中断することなく蚊に吸血させます。給餌期間の直後に、マウスを人道的に安楽死させます。伝播が成功していれば、給餌の9日後には、蚊に取り込まれたガメトサイトが融合して二倍体の接合子となり、それが成熟してオーシストになります。これは昆虫の中腸で観察可能です。検出されるオーシストの数が多いほど、組換え寄生虫が生成された可能性が高くなります。アスピレーターを使用して、ケージから感染した蚊を5〜10匹回収し、小さな容器に移します。二酸化炭素ガスを用いて蚊を麻酔し、氷上のガラス製シャーレに移します。触角が雌よりも明らかに房状になっている雄の蚊は除外してください。2本の注射器にPBSを満たし、26ゲージの1/2インチ針を取り付けます。注射器からガラススライド上にPBSを約100 µL滴下します。麻酔をかけた5〜10匹の雌の蚊を針を用いてPBSの滴上に移し、スライドを解剖顕微鏡に設置します。各蚊の翅と脚を取り除き、胸部と後腹部を持って固定します。中腸（白い袋状の組織）が露出するまで、体を切り離します。中腸を切り出し、解剖しながら体の残りの部分は廃棄します。解剖用針にあるPBSを用いて、中腸を常に湿った状態に保ってください。解剖が完了したら、中腸の上にカバーガラスを被せます。光学顕微鏡を用い、100倍の倍率で中腸を観察してください。OOSは、中腸の外表面に位置する厚壁の円形構造として識別されます。各中腸内のOOSの数をカウントしてください。スポロゾイトを摂取してから17日後には、放出されたマラリア原虫のスポロゾイトが蚊の唾液腺に移行しているはずです。スポロゾイトを回収するための、細い紡錘形の細胞です。まず、清潔なハサミを使用して回収チューブを準備します。500 µLの小型エプンドルフチューブの蓋を切り取ります。滅菌済みの19ゲージ針の先端を加熱し、チューブの底に穴を開けます。チューブの3分の1をガラスウォールで満たし、フィルターを作成します。このフィルターチューブを、より大きな1.5 milliliterのエッペンチューブの中に挿入します。ろ過装置の準備が整ったら、前述の手順に従って蚊を採集し、麻酔をかけます。前述と同様に解剖用に昆虫をエアマウントし、頭部、翅、脚、腹部を取り除きます。感染した唾液腺が含まれているのは胸部のみです。先端の細いピンセットを使用して、胸部を500 µLのPBSを含む1.5 mLホモジナイザーに移します。胸部を氷上でホモジナイズして唾液腺からスポロゾイトを遊離させ、ガラスピペットを用いてホモジナイズ物をろ過装置に移します。フィルターチューブを1000 rpmで10～20秒間遠心分離します。ホモジネートの遠心分離後、22〜30ゲージの針を装着したシリンジを用いて上清を回収します。スポロゾイト懸濁液を100〜500 µL、マウスの腹腔内に注入します。感染から3日後に、マウスのパラサイトおよび赤血球密度のモニタリングを開始してください。クローニング操作のドナーとして、0.1〜1%の寄生率を示し、かつ感染赤血球に主に単一の寄生虫が含まれているマウスを選択します。冷やした1:1の牛血清と哺乳類リンゲル液の混合溶液を用いて、マウスの尾血をPBSで希釈し、感染赤血球の濃度が100 µLあたり0.6〜1個になるように適切な量の血液を採取し、接種液を氷上で保存します。尾部の注射部位をエタノールで清拭し、静脈内に投与します。希釈した感染血100 µLを、マウス100匹のそれぞれに注入します。これにより、各個体あたりの寄生虫数は0または1匹となります。実験が成功した場合、8日目に20～50%のマウスで0.1～0.5%の寄生率が認められます。5〜7日後、塗抹した薄い血液塗抹標本を検査し、マウスに血液期原虫が存在するかどうかをスクリーニングします。交配によって生じた子原虫は、マイクロサテライトや一塩基多型（SNP）などの異なる染色体上の遺伝的マーカーを用い、尾血サンプルから抽出したDNAのPCRによってジェノタイプを判定できます。独立した遺伝子座が2つの親クローンに由来する原虫が、組換えクローンです。組換え寄生虫に感染した動物からの血液は、将来の使用のために凍結保存することが可能です。実験が成功すれば、マウス全体の5〜10%に独立した組換え子が生じます。このビデオを視聴することで、マラリアにおける遺伝的プロセスの構築方法について十分に理解できるはずです。寄生虫と培地の準備。この手法は、他の種の寄生虫にも同様に適用可能です。

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

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げっ歯類のマラリア原虫の遺伝的交雑の生産のためのプロトコル

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