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まずは抗生物質耐性菌株の ビブリオ・コレラ菌 に感染した成体のゼブラフィッシュから始めます。この病原性細菌はβ-ガラクトシダーゼ酵素を発現し、腸管に定着します。
魚を回収し、麻酔薬を過剰に含んだ溶液に移して安楽死させます。
魚を腹側を上にしてピンで固定します。
腹部を消毒し、縦方向の皮膚切開と頭部に向かって側面の切開を2箇所入れ、その後皮膚を固定して腸を露出させます。
ロートを冷却バッファーとガラスビーズを含む均質化チューブに移します。
攪拌しながら培養し、ガラスビーズが組織を破壊し細菌を放出させます。
均質菌を連続的に希釈し、培地にプレートし、培養します。培地には染色生成のβガラクトシダーゼ基質と、汚染物質を除去するための抗生物質が含まれています。
細菌はβ-ガラクトシダーゼ酵素を発現し、染色基質を加水分解して青色素コロニーの形成を引き起こします。
コロニー数を数えて腸内の細菌負荷を推定してください。
実験が望ましい目標に達したら、診断目的で感染水の15ミリリットルサンプルを採取します。その後、魚を回収し、感染した水を適切に処分します。腹側を上向きにし、下顎にピンを通し、肛門のすぐ後ろにもう一本のピンで体を固定します。
両方のピンをボディから外して角度をつけてください。次に、魚の腹面を70%エタノールで拭き取ります。次に、70%エタノールと炎を使ってメスとヴァナスハサミを滅菌します。
次に、メスを使って腹部に小さな縦方向の切開を入れ、鱗を貫通しますが、皮膚の深さまでしか切りません。次に、ハサミで体の長さに沿って切開を慎重に伸ばし、皮膚の高さより深く切らないようにします。肛門を切るのは避けてください。
次に、頭に向かって2回横切って開口部を広げます。次に、側面切開の両側の皮膚を解剖面にピンで固定し、ピンを体から外側に傾けて外側に固定します。腸管は非常に細く淡い管として見えるはずです。
次に、2対の炎で滅菌された鉗子を使って、かなり脆い腸管全体を慎重に取り除いてください。組織をガラスビーズと1ミリリットルの冷却バッファーを含む均質化チューブに移します。次に、テキストプロトコルで説明された組織を均質化し、腸内定着レベルを定量化します。
次に、腸の均質物質とバッファーを連続的に希釈します。魚ごとに、1ミリリットルの量で5〜6倍の10倍の希釈液を用意します。チューブを巻き込んで混ぜます。
次に、ストレプトマイシンとXガロンを含むLB寒天プレートに各希釈液を100〜200マイクロリットルのプレートでプレートします。プレートは30度Cで16〜18時間孵化します。一晩の孵化後、プレート上の V. cholerae のコロニー数を数えます。
これらの細菌は通常、X-galを含むLB培地に淡い青色のコロニーを形成します。