0 閲覧数 • 3:38 分 • February 26th, 2026
対照井戸と処理井戸を含んだマイクロプレートを用意し、それぞれにバイオフィルム形成の病原性細菌が接種されています。
処理井戸にはバイオフィルム形成を妨げる酵素が含まれています。
微小嫌気条件下で培養し、低酸素環境を作ります。これにより、表面の付着を媒介する細菌シグナル分子の分泌が促進されます。処理井戸では、酵素がこれらの分子を分解し、細菌の付着を減少させます。
ウェルを洗浄して、非接着細胞を取り除きましょう。
新鮮な培地を導入して培養します。付着した細菌は増殖し、細胞外高分子物質を分泌し、バイオフィルムマトリックスを形成します。
培地を取り除いて井戸を洗いましょう。
陽イオン性染料を加え、負に帯電したバイオフィルム成分に結合するために培養します。
未結合の染料を落とすために洗いましょう。
溶媒を攪拌しながら培養し、結合した染料を溶液中に放出します。
バイオフィルムのバイオマスを定量化するために光学密度(OD)を測定します。
処理井戸内の外径が低いのは、初期細胞接着の障害によるバイオフィルム形成の減少を反映しています。
まず、LBで5ミリリットルのA.baumannii S1を30度の環境で16時間振動インキュベーターで培養します。
培養をOD600 の0.8に調整します。次に、精製されたGKL酵素4ミリグラム/ミリリットルを含む新鮮なLBを使い、培養液を1〜100に希釈します。そして96ウェルのプレートのウェルに100マイクロリットルを加えます。
蓋を使って皿を覆い、10リットルのプラスチック容器に入れます。容器を密閉し、30度Cで3時間培養した後、培地を優しく取り除きます。ウェルにさらに100マイクロリットルの新鮮なLB培地を加え、プレートを30度Cで21時間培養します。
培地を優しく取り除いた後、200マイクロリットルの滅菌水を使ってプランクトン細菌細胞を優しく洗浄します。ピペットの先端をウェルの底に位置させ、液体培地を慎重に取り除き、空気と液体界面間の異物バイオフィルムへの乱れを最小限に抑えます。次に、各ウェルに1%クリスタルバイオレット溶液を100マイクロリットル加え、室温で15分間培養します。
200マイクロリットルの滅菌水で井戸を3回洗浄し、結晶バイオレット溶液を除去します。各ウェルに33%酢酸を100マイクロリットル加え、15分間優しく振って培養して染料を溶かします。600ナノメートルで結晶バイオレットの吸光度を測定してバイオフィルムの量を定量化します。結晶バイオレットの量は、生成されるバイオフィルムの量に比例します。
本研究では、病原細菌によるバイオフィルム形成に対する酵素の影響を調査します。この酵素は、細菌のシグナル分子を分解することでバイオフィルム形成を阻害し、その結果、付着と増殖を抑制します。
酵素によるバイオフィルム抑制の定量的な評価は、細菌の付着とマトリックス形成の直接的な測定を可能にすることで、抗毒性薬開発における極めて重要な課題に対処します。このワークフローは、ターゲット検証に対する予測的な信頼性を提供し、感染症研究開発における初期段階のポートフォリオ選別を支援します。バイオフィルム崩壊の信頼性の高い定量化は、メカニズム的なリスク低減および抗バイオフィルム戦略の優先順位付けに寄与します。
本手法は、ターゲットバリデーションおよびアッセイ開発とトランスレーショナルリサーチを橋渡しし、抗感染症薬R&Dにおける初期探索からリード化合物同定に至る一連の流れに組み込まれます。
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最終更新:22 8月 2026