0 閲覧数 • 3:43 分 • March 31st, 2026
まずは、自然免疫の重要な媒介因子であるインターフェロンアダプタータンパク質の発現が低下し、細胞が ブルセラ 感染に対してより感受性が高まった上皮細胞から始めます。
培地を、緑色蛍光タンパク質発現性の Brucella abortus(細胞内通性病原体)を含む感染培地に所望濃度で置き換えます。
プレートを遠心分離して細菌と宿主細胞の接触を促進し、その後細菌の内部化を可能にして培養します。
細胞を血清を含む培地で洗浄し、抗生物質で処理して細胞外細菌を除去します。
さらに培養して 、ブルセラ が細胞内で増殖できるようにします。
細胞をバッファーで洗浄し、パラホルマルデヒドで固定して細胞内構造を保存します。
余分な固定剤を洗い流してください。次に、洗剤を添加したバッファーを加えて細胞を透過性にします。
残留洗剤を洗い流し、DAPIを加えて核を染色し、最後の洗浄を行います。
自動顕微鏡を用いて、宿主上皮細胞内の ブルセラ 感染の高スループット画像を取得します。
自動プレートウォッシャーを使い、トランスフェクション培地を感染培地50マイクロリットルと交換します。フード内では、板を遠心分離機ケージに移し、384ウェル板を400 g × 4 Celsiusで20分間遠心分離します。
その後、パラフィルムでプレートを密封し、予熱したアルミニウムプレート上で37度、CO25 %で4時間培養します。自動プレートウォッシャーでのインキュベーション後、10%のFCSを含む10%のDMEMに100マイクログラム/ミリリットルのゲンタミシンまたはGMを用いて細胞を洗浄し、細胞外細菌を不活化させます。その後、パラフィルムでプレートを密封し、インキュベーター内の予熱されたアルミプレートに戻し、さらに40時間の末端アッセイを行います。
セルを固定するには、まずPBSを使って井戸を洗浄します。次に、PBSを3.7%PFAの50マイクロリットル、0.2モルHEPESでpH7.4に入れ替え、室温で20分間培養します。
インキュベーション後、50マイクロリットルのPBSを使って固定培地を交換します。自動プレートワッシャーでサンプルを染色するには、まずPBS中に0.1%トリトンX-100を50マイクロリットル10分間使って細胞を透過させます。
PBSを使って細胞を3回洗浄した後、50マイクロリットルのPBSを1ミリリットルあたり1マイクログラムのDAPIを加え、室温で30分間培養します。その後、PBSを使って細胞を3回洗い、光から守ります。プレートを自動顕微鏡に移してください。
本プロトコルでは、宿主上皮細胞におけるBrucella abortusの細胞内感染を高スループットでイメージングする方法を解説します。これにより、研究者は感染プロセスを視覚化し分析することができ、Brucellaの病原性の解明に寄与します。
このハイスループットイメージングプロトコルにより、細胞内細菌感染モデルにおける宿主と病原体の相互作用を体系的に解析することが可能になります。特定の遺伝子的摂動下での上皮細胞内におけるBrucella abortusの複製を定量化することで、抗菌薬探索プログラムにおけるターゲットの検証およびメカニズムのリスク低減を支援します。このアッセイ形式は、宿主標的治療薬の優先順位付けや、パスウェイに焦点を当てたリード化合物の同定に向けた予測的信頼性を提供します。
この手法は、ターゲット仮説の検証からリード化合物の同定、そして前臨床段階におけるメカニズムの検証に至る創薬のコンティニュアムに適合し、特に細胞内病原体に関するプログラムにおいて有用です。
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最終更新:29 8月 2026