Name: エアー液界面におけるマウスの呼吸器上皮細胞と実験たばこの煙への暴露の分離 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-02-21T17:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 47 s
Description: 学ぶマウス気道上皮細胞の分離培養とエアー液界面分化、実験たばこ煙暴露による毒性応答解析。このモデルは呼吸器疾患研究と環境毒性評価に有用です。

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私たちは、貴重な専門知識のための技術支援と博士Shivraj TyagiためEmeka Ifedigboに感謝。我々はまた、顕微鏡の支援のためにハーバードのNeuroDiscoveryセンターに感謝します。この作品は、イレールラム、およびAMK崔に贈られるNIHの助成金、R01 - HL60234、R01 - HL55330、R01 - HL079904に許可を09PRE2250120博士号を取得する前のアメリカ心臓協会によって部分的にサポートされていました。

全体的なプロトコルは、動物の組織、細胞増殖のための5-10日間、および気液界面での細胞分化のための追加10-14日からのセルのアイソレーションのための2日間が必要です。追加日は、セルのエクスポージャーとサンプルの収穫のために必要です。 1。マウス気管上皮細胞（MTEC）の単離。 注：すべての手順以下に説明するがレビューとブリガムアンドウィメンズ病院/ハーバードメディカルスクールのエリアでの動物実験使用の委員会によって承認されている。 始める前に： <ul><li>抗生物質を含むハムF12メディアを準備します。 250mLのハムのF12基礎培地（Cellgro）に100 ×ペニシリン/ストレプトマイシン（10 2 U/mL-10 濃度2μg/ ml）ソリューションと1000 X Fungizone液の250μLの2.50 mLを加える。 4週間まで4℃で保存する。 </li><li> 0.15％プロナーゼの溶液を調製します。抗生物質を含むハムF12メディアを10mLに15 mgのプロナーゼを追加。新鮮確認し、使用するまで氷上に置きます。 </li><li>清潔な作業面と滅菌手術器具小動物の手術のための適切な、およびセルのアイソレーションのためのラメラ組織培養フードを準備します。他のすべての機器は加湿CO 2インキュベーター、寒い部屋、卓上細胞遠心分離機、倒立顕微鏡、および使い捨てのプラスチックピペットと文化のウェアを含む動物細胞培養のための標準と考えられています。 </li><li>コラーゲンを準備I溶液（0.02 N酢酸で50μg/ mlの）。 12ウェルトランスウェルプレート（コーニング）の各ウェルにピペットを1.0 mLのコラーゲン溶液。パラフィルムでラップし、室温で平らな面に一晩放置する。 </li></ul><ol><li>市販のマウス系統（すなわち、男性の6-8週間のC57BL / 6、）を使用して、このようなCO 2誘導性昏睡のような安楽死の承認された方法を使用してマウスを安楽死させる。一般的に6匹のマウスは、種子を12穴トランスウェルプレートのに十分な細胞を（1.5〜2.0 × 10 5細胞/マウス）が得られます。 </li><li>フィールドを殺菌を70％EtOH溶液で動物の死体を吹き付けます。 </li><li>クリーン外科はさみやメスで、気管領域の周囲の皮膚を削除し、気管を公開。腹部を開くと、胸骨に沿って切断し、胸郭を削除します。気管の端が露出するまで組織を削除します。 </li><li>氷の上に、抗生物質を含有する30mLのハムのF12培地を含有する50mLのコニカルチューブに入れます気管。 </li><li>滅菌薄層流フードで、抗生物質を含有する10mLのハムのF12培地を含有する無菌の100ミリメートルシャーレに気管組織を移す。 </li><li>優しく滅菌ピンセットと手術用はさみで結合組織を細かく分析。 </li><li>リンスに抗生物質を含む10mLのハムのF12培地を含有する新しい100ミリメートルシャーレに気管組織を移す。内腔を露出させる縦軸に沿って気管をカット。 </li><li> 10 mLの0.15％プロナーゼ溶液を含む50 mLの試験管に気管を移し、4℃で一晩インキュベート℃、 </li><li>二日目に、用意しておいてください。 <ul><li> DNase I溶液を準備します。に抗生物質を含むハムF12メディアの18 mLのは10 mg / mlウシ血清アルブミン（BSA）ストック溶液2 mlを加え、粗膵臓DNase Iの10 mgのは、-20〜1mLのアリコートとストア° Cを（に融解してください使用前に氷）。 </li><li> 20％ウシ胎児血清（FBS）と抗生物質を含むハムF12培地を準備。 〜200 mLのハムのF12基礎培地（Invitrogen社）を50mLの熱不活化FBS、100 ×ペニシリン/ストレプトマイシン（10 2 U/mL-10 濃度2μg/ ml）ソリューション、および1000 X Fungizone液の250μLの2.5 mLを加え。 </li><li>抗生物質を含有MTEC基本培地を調製。に475.5 mLのDMEM/F12基本的なメディア（Cellgroは）7.5 mLの1 M HEPES溶液を、200mMのグルタミン溶液を、7.5％NaHCO 3溶液、100 ×ペニシリン/ストレプトマイシン溶液5 mLを2 mLの10 mLの、500μLを加える1000 X Fungizoneソリューションの</li><li> MTEC medium/10％FBSを準備します。抗生物質を含有MTEC基本培地45 mLに、5mLの熱不活性化FBSを追加。 </li></ul></li><li>ゆっくりと（ステップ1.8から）10-12回チューブを揺すり、そしてそれが4で30〜60分放置℃を</li><li>チューブやロックの12倍に20％FBSおよび抗生物質を含む10mLのハムF12メディアを追加します。 </li><li> 20％FBSおよび抗生物質を含む10mLのハムのF12培地を含む3 15 mLコニカルチューブを準備します。 </li><li>氷の上でこのソリューションを横に置く、プロナーゼ溶液から気管を外します。ハムのF12を含む最初のコニカルチューブに気管を移し、チューブを12回転倒混和します。このプロセスをさらに2回繰り返します。 </li><li> 1つの50 mlチューブにステップ1.13から三上清とプロナーゼ溶液を組み合わせる。残りの組織を捨てる。 </li><li>で10分間4℃で、そして上清を捨てる、1400rpm（- 4 - 62ローターを装備したエッペンドルフ5810Rの遠心分離機390 × g）で遠心。 </li><li>静かに1 mLのDNase溶液（100〜200μL/気管）でペレットを再懸濁そして氷上で5分間インキュベートする。 </li><li> 4℃で5分間℃で1400rpm（390 × g）で遠心し、上清を捨てる。 </li><li> 10％FBSを含む8 mLのMTEC培地中で細胞ペレットを再懸濁します</li><li> Primariaプレート（ファルコン）上にプレートの細胞懸濁液。 37℃95％空気の雰囲気の中でC、5時間（注：これは、線維芽細胞の負の選択のステップである）ため、5％CO 2。 </li><li>プレートから細胞懸濁液を収集し、4mLのMTECは、10％FBSを含むで二回プレートをすすぎます。プールの細胞懸濁液と50 mLコニカルチューブに一緒に洗う。 </li><li>サイトスピンおよび細胞計数用1 mLを節約する。 5,000 rpmで（エッペンドルフ5415D）で5分間卓上遠心機でスピン。残りの上清に、500μLのペレットを再懸濁しますを削除します。トリパンブルー生体染色法を用いて細胞計数のために100μLを使用してください。サイトスピン分析のために100μLの4アリコートを節約</li><li> 4℃、1400rpm（390 × g）で、残りの15 mLの細胞懸濁液をスピン℃で10分間。 </li></ol> 2。気液界面で伝播し、MTECの分化レチノイン酸のストック溶液を準備します。ストック溶液：95％エタノールに5 mMのストック溶液を作るために暗所でレチノイン酸（ミスター300.44グラム/モル）を秤量。 -80℃ホイル、ラップチューブで℃で保存必要に応じて、50μLの株式を、500μLBSA溶液（100 mg / mLの）と49.5 mLのハンクス平衡塩溶液（HBSS）を追加することにより、ストック溶液Bを（5μM）を用意。箔の店舗は、4週間まで-80℃でチューブを包んだ。 レチノイン酸を含むMTEC増殖培地を準備します。抗生物質を含む45.7 mLのMTEC基礎培地に、2.5 mLの熱不活化FBS、1 mLのレチノイン酸証券B、250μLインスリン溶液（4mMの塩酸で2 mg / mLのインスリン）、250μL上皮成長因子の溶液（5μgの/を追加します。 1 mg / mLのBSAを含むHBSに溶解EGF）、200μLのウシ下垂体抽出物（HBSでの15 mg / mLのは、1 mg / mLのBSAを含む）、50μLトランスフェリン溶液（HBSで5 mg / mLのトランスフェリン1 mg / mLのBSAを含む）、50μLコレラ毒素の溶液（HBSの100 mg / mLのは、1 mg / mLのBSAを含む）。最終的なメディアの準備を滅菌濾過し、準備の2日以内に使用してください。 <ol><li>トランスウェルプレートからコラーゲン溶液を除去する、5分間ボンネットの下に放置し、PBSで2回洗浄する。 </li><li>以下の遠心分離は、ウェルあたり7.5 × 10 4 -1.0 × 10 5細胞のプレーティングを容易にするために増殖培地（500μL）の適切な量で細胞ペレットを再懸濁します。トランスウェルのポリカーボネート膜インサートの先端表面にピペット500μLの細胞懸濁液。トランスウェルの底面コンパートメントに拡散媒体を1.5 ml加え。 </li><li> 37℃水中MTECの文化をインキュベートします7〜10日、95％空気、5％CO 2を含む加湿インキュベーターでCを。 </li><li>メディアを最初に変更する前に、三日待つ。一日おきにメディアを変更します。電極（EVOM Ohmvoltometer、世界の精密機器、サラソタ、フロリダ州）を用いて上皮細胞の抵抗の目視検査及び測定によって文化を監視します。 </li><li>細胞がコンフルエントに表示され、上皮抵抗が1000Ω/ cm 2のに達すると、細胞がALIで差別化する準備が整いました。 </li><li> 2％NuSerumを含むMTEC基礎培地を準備。 2％の最終濃度V / VにMTEC基本培地にNuSerum追加使用する前に、1 × 10 -7 Mの最終濃度にレチノイン酸ストックBを追加。新鮮な準備、2日以内に使用してください。 </li><li>細胞が頂メディアを削除すると2％Nuserumとレチノイン酸を含む750μLMTEC基礎培地と基本培地に置き換えることによって、10〜14日間を区別することができます。基礎培地を変更し、MTECは一日おきに2％NuSerumを含むで頂端側を洗う。 </li></ol> 3。培養上皮細胞へのタバコの煙のアプリケーション<ol><li> CSの細胞の露光装置（EMIインスツルメンツ、ピッツバーグ、PA）を使用して、たばこの主流煙にトランスウェル培養の先端側を公開します。装置の写真については、図1を参照してください。技術的な仕様については、特定の試薬と機器の表を参照してください。簡単に言うと、装置は、通気曝露チャンバーに接続されているポリプロピレンのラインに主流煙で描く、〜7月8日パフで各タバコを吸う蠕動ポンプで構成されています。暴露室は水を循環させることにより37℃でCを維持し、ガスラインで5％CO 2の雰囲気に維持されている。細胞は、ケンタッキー州3R4Fの研究の参照フィルタタバコを（たばこ総合研究所、ケンタッキー大学、レキシントン、ケンタッキー州）を使用して煙に曝露することができます。一般的に細胞は、全体の粒子状物質（TPM）100〜200ミリグラム/ m 3をもたらし、1-2タバコの煙にさらされています。対照培養物は、同等の露光期間に部屋の空気にさらされている。 </li><li> TPMは、TEに付属している製造業者のプロトコルに従って測定され- 10C喫煙のマシン（ティーグの企業）。簡単に言うと、フィルタは（Pallflex）定流量ポンプ（サンプリングユニット）に喫煙室でのサンプリングポートからリードするサンプリングチューブにインラインステンレス製ホルダーに配置されます。流出管は、ガスメータ（乾式ガスメータ、ONM61、67、AEM）にサンプリングユニットを接続します。フィルターは、ガスサンプリングの前後に秤量する。総物質はmgでフィルター上に堆積サンプリング空気の合計量に対して正規化されています。 </li><li>細胞は、任意の時点（すなわち、0〜24時間）スタンダードセル分析手順（すなわち、欧米のイムノブロット分析、mRNAの解析、等）または顕微鏡用露光後（すなわち、共焦点または電子顕微鏡）で収穫することができる。培養培地は、サイトカインや細胞毒性のアッセイのためのLDH放出を分析することができます。 </li></ol> 4。代表的な結果 ALIで成功した上皮単離、増殖、及び分化は、石畳の形態で無傷の単分子層を生成する必要があります。健全な文化のTransepithelilalセル抵抗は、約1000から2000Ω/ cm 2とする必要があります。図2は、制御条件の下で、タバコの煙の曝露後の上皮細胞と繊毛のマーカーに染色したマウス呼吸器上皮細胞の単層を示しています。図3は、超微細構造と繊毛の形態を描いた、健康MTEC文化の代表的な電子顕微鏡写真を示しています。 <img src="/files/ftp_upload/2513/2513fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 図1三相、単離工程、繁殖の段階、および気液界面（スキーム）で、差別化の段階を通じて、上皮細胞の進行の準備。上皮細胞は、マウス気管から分離彼らは液体培養で増殖transwellsに播種し、彼らは完全に区別する気液界面に変換されます。実験は、通常、連続培養24日目に実施しています。写真は、たばこの主流煙に培養細胞の曝露のためのモデルシステムを示しています。トランスウェルALI培養系は、温度、湿度、CO 2のために制御されているカスタムモジュール式のタバコの煙のデリバリーシステム内に配置されます。 <img src="/files/ftp_upload/2513/2513fig2.jpg" alt="図2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図2"> 。と繊毛のマーカーアセチル化α-チューブリン（赤、Cy3結合二次抗体）、 図2上皮細胞培養は、F -アクチン（アレクサ- ® 488標識ファロイジン緑）、核（ヘキスト33258）のために固定し、染色した。下のパネルは4時間、タバコの煙への曝露（2本のタバコ、150 mgの/ m 3）の後に採取した上皮細胞と同等の画像を示す。示されているように（B）乳酸脱水素酵素（LDH）放出は、24時間タバコの煙の様々な用量に暴露した後の基礎培地で測定した。 <img src="/files/ftp_upload/2513/2513fig3.jpg" alt="図3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図3"> 図3マウス気管上皮から分離された上皮細胞の気液界面培養は、透過型電子顕微鏡によって（TEM）繊毛、基底、および非繊毛細胞1の特性を持っているいくつかのサブタイプに分化する。これらの細胞は多列気道上皮を象徴化する。図のラベルはに対応しています：BB：基礎体温、：軸糸、M：ミトコンドリア、N：核、S：基板（ポリカーボネート膜）、MV：microvili

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利害の衝突は宣言されません。

マウス気管上皮細胞の単離を記述するプロトコルは、1、。あなたらのプロトコルから適応、およびその他の変更で2-3。れるセルのアイソレーションを記述する任意のプロトコルと同様に、最も重要な側面は、厳格な無菌操作を用いて、細菌または真菌病原体からの汚染を避けるためです。 2番目に重要なステップは、ステップ1.19で説明されているように線維芽細胞の気管を慎重に解剖することによって回避できます文化の汚染、および負の選択を避けるためです。文化は、監視洗浄し、そして培養培地は、初期72時間のインキュベーション後の一日おきに補充されていれば、文化は完全にALIの開始から約2週間で区別する必要があります。 主に慢性的なたばこの煙の曝露によって引き起こされる慢性閉塞性肺疾患（COPD）は、、世界の主要な健康上の問題4-7を表現し続けています。 COPDは、進行性の気流制限、破壊的な肺胞の損失（肺気腫）、及びタバコの煙4-7肺の誇張された炎症反応によって特徴づけられる。多くの研究で...

*喫煙のマシンは14&quot;X14&quot;X20&quot;デュアルチャンバーと水ジャケット光の色合い明確な証拠1 / 2&quot;システムをシャットオフ制御する温度制御、水位センサーとタバコの煙の曝露のための厚いポリカーボネートレキサンチャンバー設計、製造されたカスタムです。ユニットを吸う/たばこを吸​​うタバコは、レートをパフ変数タバコのためにインストールされています。ユニットが使用されている場合、それは温度、湿度、二酸化炭素がシステムに制御されるという意味でインキュベーターを模倣しています。システムには含まれています：（I）組織培養実験のための制御された環境を維持するカスタマイズされたデュアルチャンバー/水ジャケットユニットを。 （II）水位センサーと温度制御付きデジタルヘビーデューティー、高精度デュアルポンプの水の温度循環システムポンプをパフ付き（III）喫煙ユニット。 （IV）ポンプサイクルセンサー制御率サイクラー（IV）フィルターホルダーラインのステンレス鋼高精度。 （V）取り外し可能なふたはのための括弧で11 / 2&quot;サイズ軸方向均一性のタバコの煙の混合ファン。（VI）水循​​環装置用取付金具付きミディアムサイズの水浴。（VII）1 / 2&quot;厚のプレキシグラスのトレイにマウントたばこの灰のコレクターのためのポンプとホルダーをふかす。 説明したようにこのマシンは、東証のシステム（から利用できる一種とし ​​て同じような市販の喫煙のマシンに置換することができる<a href="http://www.tse-systems.com">www.tse - systems.com</a> ）。

エアー液界面におけるマウスの呼吸器上皮細胞と実験たばこの煙への暴露の分離

Isolation of Mouse Respiratory Epithelial Cells and Exposure to Experimental Cigarette Smoke at Air Liquid Interface  

肺上皮細胞は、マウスの気道から分離し、差別化された呼吸上皮のモデルとしての気液界面（ALI）で培養することができます。プロトコルは、CSの曝露に上皮細胞の応答を研究するために、たばこの主流煙（CS）にこれらの細胞を分離し、公開するために記述されています。マウス気管、気液界面（ALI）として完全に分化した上皮細胞におけるこれらの細胞の培養、及び培養中のこれらの細胞に校正された主流CSの配信から気道上皮細胞の分離：プロトコルは、次の3つの部分から構成されています。 ALI培養系は、より密接に通常の液体培養系よりも生理の設定に似ている条件の下で呼吸上皮の文化を可能にします。 CSの暴露分子と肺細胞応答の研究は、人間の健康に対する環境大気汚染の影響を理解することの重要なコンポーネントです。この分野での研究成果は、最終的に慢性閉塞性肺疾患（COPD）、および世界の主要な健康上の問題を表す他のタバコ関連疾患の病因の理解に向けて貢献するかもしれない。

肺上皮細胞は、マウスの気道から分離し、差別化された呼吸上皮のモデルとしての気液界面で培養することができます。プロトコルは、分離培養し、この環境毒素への分子応答を研究するために、たばこの主流煙にこれらの細胞を露出させるための記述されています。

マウスの呼吸器から肺上皮細胞を単離し、分化した...のモデルとして気液界面（ALI）で培養することができる。

この手順の目的は、タバコ煙曝露による毒性影響を研究するために、気道上皮細胞を単離することです。まずマウスの気管を摘出し、次いでプロナーゼ溶液で気管を消化することでこれを達成します。手順の第2段階では、上皮細胞を回収し、培養液を増殖させます。第3のステップは、気液界面（air liquid interface）で培養物を分化させることです。本手順の最終ステップは、気液界面において上皮細胞を頂端側からタバコ煙に曝露させることです。最終的に、免疫蛍光顕微鏡観察により、完全に分化した上皮細胞の単層が形成された結果を得ることができます。この手法は、慢性閉塞性肺疾患の分野における重要な課題、例えばタバコ煙への曝露がCLIA形態に及ぼす影響や、タバコ煙によって誘発される細胞傷害の生化学的マーカーなどの解明に寄与します。本手順の準備は、解剖の前日にハムF-12培地の調製から開始してください。抗生物質含有ハムF-12培地、および抗生物質含有20% FBS-MTEC基礎培地を準備します。書面の手順書に従い、5% FBS含有MTEC培地、DNA's one solution、レチノイン酸ストック溶液、およびMTEC増殖培地を調製します。解剖当日に、解剖に使用するすべての手術器具を滅菌してください。解剖エリアが清潔であること、およびすべての解剖器具がすぐに使用できる状態で揃っていることを確認してください。組織培養フード内を滅菌します。その後、組織培養フード内で作業を行います。0.15% pronase溶液を調製します。50 mLのコニカルチューブに、抗生物質を含む10 mLのhams. F 12培地と15 mgのプロナーゼを加えます。使用時まで氷上に置いておきます。標準的な手術手順を用いて、マウスから気管を摘出します。気管が入ったチューブを消毒し、組織培養フード内に配置します。気管組織を、抗生物質を含むhams F 12培地が入った100 mmのペトリ皿に移します。滅菌済みの手術用ピンセットを使用して、気管から結合組織を除去します。次に、洗浄した気管を、抗生物質を含むhams. F 12培地を入れた2枚目の100 millimeter Petri dishに転移させます。解剖用ハサミを用いて気管を垂直軸に沿って切断し、管腔を露出させます。気管を10 mLのPronase溶液が入った50 mL遠心チューブに移し、冷蔵庫に入れて4 °Cで一晩インキュベートします。最後に、コラーゲンI処理済みのトランスウェルプレートを準備します。翌日、0.02 N酢酸1 mLあたり50 mgのコラーゲンIを加え、この溶液を12ウェルプレートの各ウェルに1 mLずつピペッティングします。ウェルプレートを洗浄します。プレートをパラフィルムで包み、組織培養用クリーンベンチ内で一晩室温に置きます。翌日。マウス気管が入ったチューブを、ゆっくりと10〜12回転倒混和させます。その後、チューブの内容物を4°Cでさらに30〜60分間インキュベートします。組織培養フード内で、抗生物質および20% FBSを含むHams F12培地10 mLを、消化した気管組織が入ったコニカルチューブにピペットで加え、12回転倒混和させます。次に、抗生物質と20% FBSを含む hams F 12 培地を 10 milliliters ずつ、3本の 15 milliliter コニカルチューブに分注します。滅菌済みのパステールピペットを使用して、プロナーゼ溶液から気管組織を、添加済み hams F 12 培地が入った1本目のチューブに移します。Pronase溶液を氷上に置き、気管組織の入ったチューブにキャップをして、ゆっくりと12回反転させて混ぜ合わせます。次に、パスタピペットを用いて、気管組織を2本目の15 mLコニカルチューブに移し、このチューブを12回反転させます。最後の15 mLコニカルチューブを用いて、同様の移送および反転の手順を繰り返します。最後に、パスタピペットを使用して気管組織を除去し、廃棄します。次に、氷からプロナーゼ溶液を取り出し、添加済みのHams F 12培地15 mLを3量分、プロナーゼ溶液と合わせます。サンプルを冷却遠心機を用い、4 °Cで1,400 rpmで10分間遠心分離します。遠心分離後、上清を廃棄し、気管1つにつき約100～200 µLのDNAase I溶液をペレットに分注して再懸濁します。軽くタッピングして懸濁させる。細胞を氷上で5分間インキュベートする。チューブを4 °Cで1,400 rpmで5分間遠心分離し、上清を捨てる。次に、10%FBSを含むMTEC培地を8mLピペットでペレットに加え、プレートを再懸濁します。パリアプレート上の細胞懸濁液を、37°C、95%空気および5%二酸化炭素の条件下で5〜6時間インキュベートします。これは、線維芽細胞を除去するためのネガティブセレクションステップです。インキュベーション後、パリアプレートから細胞懸濁液を回収し、50 mLコニカルチューブにピペットで移します。次に、10% FBSを含むMTEC培地 4 mLでプレートを2回洗浄します。2回分の洗浄液を、細胞懸濁液が入った50 mLコニカルチューブに加えます。細胞懸濁液を1 mL、エッペンドルフチューブに分注します。この分注分は、サイトスピン分析および細胞数計数用に保存しておきます。残りの15 mLの細胞懸濁液が入った50 mLコニカルチューブを、4 °Cで1,400 rpm、10分間遠心分離します。遠心分離の間、あらかじめ準備したトランスウェルプレートからコラーゲン溶液を取り除き、廃棄します。プレートをフード内で5分間乾燥させ、最後にPBSで2回洗浄します。すべてのPBSを吸引し、遠心分離後、トランスウェルの下部コンパートメントに1.5 millilitersの増殖培地をピペットで加えます。上清を廃棄し、1ウェルあたり500 µLの懸濁液中に7.5 × 10⁴〜1 × 10⁵個の細胞を播種できるよう、適切な量の増殖培地で細胞ペレットを再懸濁します。細胞懸濁液500 µLをTranswellポリカーボネートメンブレンインサートの頂端面にピペッティングします。浸漬させたMTEC培養物を、95%空気および5%二酸化炭素を含む37 °Cの加湿インキュベーター内で7〜10日間培養し、1日おきに培地を交換します。インターバロメーターを用いて経上皮電気抵抗を測定します。上皮抵抗が1000 ohms/cm²に達し、培養細胞がコンフルエントになったことを確認してください。その後、アピカル側の培地を除去し、LI（液-気界面）培養に移行させます。また、基礎培地を2%の新血清およびレチノイン酸を含むMTEC基本培地に交換します。培地交換を1日おきに行いながら、37 °C、5% CO₂条件下で10〜14日間培養し、分化させます。まず、製造元の指示に従って喫煙装置をセットアップします。未使用のポールフレックスフィルターの重量を記録します。次に、喫煙室のサンプリングポートから定流量ポンプへと続くサンプリングチューブ上のインラインステンレス製ホルダーに、フィルターを設置します。CSセル曝露システムを用い、流出チューブを使用してサンプリングユニットをガスメーターに接続します。Transworld培養物の頂端側を、3R 4Fリサーチリファレンスフィルターシガレットからの主流煙に曝露させます。細胞を1本から2本のシガレットの煙に曝露させます。対照群の培養物は、ガスサンプリングによる重量増加後、同等の曝露時間 동안室気（ルームエアー）に曝露させます。プールフレックスフィルターを用い、フィルターに堆積した材料の総量をミリグラム単位で正規化します。サンプリングした空気の総量に対して、通常1〜2本のタバコの煙から1立方メートルあたり100〜200 mgのTPMが得られます。タバコへの曝露後、細胞および基礎培地を回収し、さらなる解析に供します。これは、核および上皮細胞マーカー、およびCマーカーで染色された、マウス呼吸器上皮細胞の健全な単層の例です。上皮細胞の分離、増殖、および分化が成功すると、石畳状の形態を持つ完全な単層が形成されます。これらの培養物は、実質的に線維芽細胞を含んでいません。これらの電子顕微鏡写真は、健康なMTEC培養の代表的な例であり、さまざまな細胞型の微細構造およびCELIA形態を示しています。この生細胞イメージングビデオでは、MTEC培養の健康なC形態を示しています。このビデオを視聴することで、マウス気管上皮細胞の単離方法、気液界面での分化誘導、および主流タバコ煙への曝露方法について十分に理解できるはずです。

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Research

JoVE Journal

Medicine

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