Name: 絶縁型、ベンチレーテッド、および計装のマウス肺の特性評価は、拍動流を灌流 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-04-29T17:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 2 s
Description: 学ぶマウス肺の絶縁・換気・灌流法による拍動性肺血管圧力-血流関係の測定。右心室後負荷の定量化と肺血管生理学研究に有用な実験手法を解説します。

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この研究は、健康補助金R01HL086939（NCC）の国立研究所によってサポートされていました。

このプロトコルでは、以前に拍動性の肺血管圧 - 流量の関係（Tuchscherer、ウェブスター、＆チェスラー、2006肺塞栓症と慢性的な低酸素の影響を定量化するために使用されている隔離された、換気、灌流マウスの肺の準備を示しています。Tuchschererら、2007）。簡単に言うと、マウスの肺は、外科的に加熱されたチャンバー内に設置、周囲の組織から単離された（IL - 1、ハーバード装置、ホリストン、MA）されていると換気（換気制御モジュール（VCM）- Rタイマカウンタモジュール（TCM）と、ハーバード装置）。肺血管系は、定常流波形または高頻度振動ポンプ（ボーズエレクトロフォース、エデンを生成するためにシリンジポンプ（コール - パーマー、バーノンヒルズ、イリノイ州）を使用して、3.5％フィコールで加熱されたRPMI 1640細胞培養培地を灌流され拍動性の肺血流波形を作成するには、シリンジポンプと並列にプレーリー、ミネソタ州）。圧力変換器（P75、ハーバード大学の装置）は瞬時肺動脈圧（PAP）と左心房圧（LAP）を測定する。瞬時流量（Q）はインライン流量計（遷音速システムズ、（株）、イサカ、ニューヨーク州）で測定されます。脈動圧力流量の関係は、肺血管の生理学および病理学と右心室の後負荷への洞察を提供するこれらの測定値から導出されています。 1。設備： <ol><li>セットアップマウスの人工呼吸器を含む絶縁型肺</li><li> LabViewのプログラムとデータ収集システムとコンピュータ</li><li>灌流液の流れの2つの圧力変換器と流量計</li><li>気道のフロー用圧力トランスデューサーと流量計（pnemotachometer） </li><li>勝利のテストプログラムと、高頻度振動ポンプとコンピュータ</li><li>ブーム/ズーム顕微鏡、ランプ</li><li> IL - 1システム用高出力ポンプと熱浴</li></ol> 2。 IL - 1システムの準備<ol><li> ℃の加熱浴で37に加熱蒸留水は、IL - 1システムの内部に循環される。 </li><li>すべてのポンプ、トランスデューサ及びIL - 1カニューレは、清潔なチューブを介して接続されていると、すべてのチューブを37に加熱蒸留水℃でフラッシュされます肺と原因の浮腫に旅行ができる空気の気泡が、、削除する必要があります。振動流ポンプからの流量センサーへと流量センサからの肺動脈カニューレのチューブを1％PBSでフラッシュされます。 </li><li> P75圧力トランスデューサは、カニューレにバルブを閉じて大気にバルブを開き、[PLUGSYSアンプで自動ゼロボタンを押すことによってゼロにされます。その後、大気にバルブが閉じられ、カニューレにバルブが開かれる。 </li><li> IL - 1システムの換気経路のセラミック多孔質部分は湿気を提供するために湿らされています。 </li></ol> 3。ソリューション<ol><li>ボリュームはFicoll - RPMI液および滅菌フィルターメディアで3.5％を準備する。メディアをフィルタリングすると、誤って肺に塞栓可能性がない大きな粒子がないことを確認します。滅菌メディアを使用すると、肺に発展突然浮腫の可能性を減らすことができます。各実験試行のためのRPMIで手術一60mlのシリンジ用RPMIで1つの10 mlの注射器を埋める。 37℃の水浴中で灌流液を加熱する。 </li><li>マウスのヘパリン500IU/100g体重（おおよそ）の1mlを準備する。ヘパリン塩は158IU/mgている。 〜25 gのマウスの場合は、小さなマイクロ遠心チューブに1ミリリットルPBS溶液で1.25mg/kgのヘパリン塩を混ぜる。 </li></ol> 4。換気マウス<ol><li>マウスへのキログラム当たりの溶液中でのペントバルビタール150mgの腹腔内注射した後、足にハードピンチを実行することにより、深い麻酔を確認してください。何の反応がない場合は、安定性のためにコルクボードに、その前足を固定することによって、手術のためにマウスを準備する。注：実験麻酔の深さを通しては慎重に動物を観察することによって監視されます。前足と頻繁に切開のピンが侵害刺激として機能する、への応答の欠如は、動物が麻酔の外科的平面に残っていることを確認します。 </li><li>毛皮の下にウェットと首の皮膚をつかむためにまっすぐに鉗子を使用するために95％アルコールで胸にスプレーします。まっすぐはさみを使って皮膚に開いて1cmを切る。 </li><li>首の内側が露出されると、食道と気管を探して、すべての白腺組織と表面的な筋肉を取り除く。両側と後方での​​組織から食道と気管を分離します。 </li><li>気管の下に小さな曲がりの鉗子を挿入し、反対側の縫合糸の一部をつかむ。気管の下に縫合糸を引いて、緩やかな外科医の結び目を作る。縫合糸を締めたり、結び方をしないでください。 </li><li>小さなハサミと気管の小さな角度"v"をカット。気管を介してすべての道をカットしないでください。加熱されたIL - 1システムにコルクのボードとマウスを動かします。 two鈍鉗子を使用して、気管カニューレと"V"下気管をつかむ。その後、気管切開術を施すに気管カニューレをスライドさせ"V"開口部から個。気管周囲縫合と気管の内部にカニューレを確保するために気管カニューレを締めます。結び目を作る。 </li><li>部屋の空気を換気（50％のインスピレーション、深いインスピレーションと90呼吸/分に、）を開始。 </li></ol> 5。通気性のよいマウスを灌流 5.1。ヘパリンを注入するために右心室にアクセス<ol><li>再びアルコールスプレーは、マウスの胸の毛皮を再度湿らせる。ストレートピンセットストレートはさみを使用して肋骨上の胸の皮膚のすべてを削除します。胸骨に沿って上向きにカット。各側面の皮膚を持ち上げ、下部肋骨の行の次の皮膚をカット。 </li><li>ピンセットで胸骨の一番下にある剣状突起をつかみ、まっすぐにハサミを使って横隔膜に穴を開ける。ピンセットでダイアフラムを取得し、肋骨からそれを切り取る。 </li><li>肺を切らないように注意しながら、ピンセット（左手）で再び剣状突起を把握し、胸骨を切断するためにボールチップ、角度のハサミを使用し、リブを介して、心臓や血管は、（上でボールチップを使用してくださいあなたを導くた​​めにはさみ）。そこに血なりますが、限りハサミの刃先を胸骨に反しているとして、心臓や肺がカットされることはありません。 </li><li>左側の肋骨をつかみ、心を公開するなど、多くの肋骨の必要に応じてを切り取る。徐々に0.1mlのヘパリン溶液を用いて右心室に注入する。このステップでは、内皮細胞を損傷し、血流が低下する傾向があるから肺に血液凝固を防止することが重要です。心臓がまだ鼓動している間ヘパリンを注入する必要があります。 </li></ol> 5.2。主肺動脈をカニューレを挿入する<ol><li>静かに肋骨の壁から肺をプッシュするバック（丸い）鉗子の先端を使ってリブの残りの部分（左側と右側）を切り取る。肺グラブ自体は繊細な組織を損傷します。はさみのヒントと肺組織の間で偶発的な接触でもダメージの原因となります。 </li><li>肺上の所定の位置に顕微鏡を移動します。心臓の上に腺と脂肪組織を切り取る。動脈と静脈からそれを引き離し、組織が緊張している間その後、春のはさみでカットしてピンセットを使用してください。 </li><li>ピンセットの別の鈍セット、アトリウム/大動脈と肺動脈（PA）の下にピンセットの先端を得るために心室、左の下に心臓の上から右から左にスクープを使用する。慎重に - そこにこれを行うことがピンセットに抵抗すべきではない。鈍ピンセットを使用すると、誤って肺動脈や大動脈に穴を開けるの可能性を減らすことができます。 </li><li>ピンセットの先端が大動脈とPAの下になると、縫合糸の一部を取得し、乗り越える。緩やかな外科医の結び目を作る。縫合糸を締めたり、結び方をしないでください。 </li><li>オプション：ボディの下半分を削除するには、角度のハサミを使用する。肋骨と背骨を通して伐採​​、大動脈を切断し、下大静脈は流れに血液が大量に発生します - 忠実な流れにQ -ティップを使用する。廃棄用の袋に入れ。 </li><li> RPMIの10mlの注射器から4mlで首相PAカニューレ。すべてのチューブは、空気の泡がないことを再確認してください。蒸留水または泡と肺の血流は浮腫になります。 </li><li>右室自由壁に小さなノッチをカットし、PAカニューレを挿入し、ダウンを目指して右へ。カニューレの先端は、PAの透明な壁を透けて見えるはずです。あなたの場所を確認するために、RPMIの少量を吹き込む。カニューレ、大動脈およびPA周りの縫合糸を締めて、結び目を作る。左心房がカニューレを挿入されるまで、実際の灌流を開始する必要がないので、この時点では、大動脈もオフ結びついていることに注意してください。 </li></ol> 5.3。左心房のカニューレを挿入する<ol><li>左心室の下部にノッチをカットし、不活性、左心房（LA）カニューレ、上方を目指す。わずかな圧力がこの方向での僧帽弁を開くことが必要になる場合があります。正しい場所では、カニューレの先端はすり抜けるし、縫合することなく安全である。 </li></ol> 5.4。血流を始める<ol><li> RMPIが流出チューブ（クリアPBSとは対照的にピンクっぽい色）で明らかになるまで、手動で毎分0.3ミリリットルで10 mlのシリンジからRPMIを吹き込む。流出管、再位置LAカニューレ内に流れがない場合。は流出が再ポジショニングを得られない場合、肺動脈の漏れを確認してください。肺動脈の漏れや涙を修復できません、これは実験の中止の原因です。 </li><li> IL - 1システムを介してPAカニューレに60mlのシリンジを接続し、RPMIが肺に血液を交換していることを示している、漏れをチェックし、肺が白くなることを確認し、潅流液1ml/min注入を開始します。 2分間遅い流れで灌流。 </li></ol> 6。拍動と着実な肺動脈圧 - 流量の関係を測定<ol><li>拍動流の研究については、最初は振動ポンプのピストンの変位を設定する以前の実験に基づいて、ウインテストプログラム内の各周波数での希望のレベル。肺の構造と力学に起因する変動、変位は、それぞれのマウスに合わせて調整する必要があります。希望のレベルに定常流を設定します。振動ポンプへのバルブを開き、右側の振動流のプロファイル（ウインテストプログラム）を実行する前に、記録データを起動します。データファイルを開いて、Excelで実験的な流れ（Q）をプロットします。 Q maxとQ minは、必要に応じているように、各周波数で振動ポンプのピストンの変位を調整する（ウインテストプログラム）。 </li><li>定常流試験のために、振動ポンプのバルブを閉じてください。このバルブが開いたままになっている場合、振動ポンプは別の流量から変更を湿し、コンデンサとして機能します。各流量でまたはPAの圧力になるまで少なくとも10秒間データを収集するには、5％以上変化しません。 </li><li>拍動性または定常流の測定、データ収集前に一定の圧力で古い換気のいずれかの。すぐにデータ収集後に換気を再開する。 </li><li>気道チューブのRPMIを監視、これが浮腫の証拠であり、実験の中止の原因です。また、それはトランスデューサーが破損しますので、RPMIは気道内圧やフローセンサーに到達させてください。 </li></ol> 7。代表的な結果： 代表的な着実な成果： 孤立肺に実験を設定する独立だけでなく、肺血流量Qだけでなく、気道圧P 空気と左心房圧のLAPを制御する能力を持っています。 Q、P、空気とLAPは、肺血管系と、その結果肺動脈圧PAPに影響を与えるので、これは有利で ​​ある。もう一つの利点は、得られた結果は、交感神経系のトーン1、ボリュームのステータス、および麻酔2の独立であるということです。 固定Pの空気と、固定または可変LAPのためのQの階段状の変化によるPAPの変化を図1に示されています。分離された肺の準備に、LAPのカニューレは、通常、廃棄用容器に灌流液を導く配管に接続されていることに注意してください。代わりにこのチューブを使用すると、LAPは、ポアズイユ流に起因するQ上で直線的に依存しています。しかし、コンセントおよび廃棄物の容器の高さを手動で定数、非ゼロLAPまたはチューブを提供するように調整することができますQ.独立しているゼロLAPを許可するように削除することができます代表的な拍動の結果： 任意の拍動流の波形はこのシステムを使用して生成することができますが、我々は、通常はフォームの流れで、f = 1、2、5、10、15および20 Hzの周波数で、Q = 3 + 2罪（2 FπT）ml /分を生成する肺血管系（：上部パネル図2）の線形化インピーダンスを評価する。結果としてPAP、LAPとQの測定値から、肺血管インピーダンスの大きさ（Z）と位相（θ）は最初のシリーズの中にそれぞれ課された正弦波流量の周波数でΔP= PAP - LAPとQの1つの完全な正弦波サイクルを分解して計算されますフーリエ変換を用いて正弦波の高調波。圧の比は収量を変換肺vascualarインピーダンス、PVZ = FFT（ΔP）/大きさZと位相θを持つFFT（Q）を、流れるように変換。入力インピーダンスZ 0、特性インピーダンスZ、C、および波反射R Wのインデックスは、インピーダンスの大きさから計算されます。特に、Z 0はすべての周波数にわたって、Z、Cが最初に最小値（5 Hz）と20Hzの間にZの平均値として計算される平均、およびR Wが計算される0番目の高調波（F = 0 Hz）でZから計算されるとして（Z 0 - Z C）/（Z 0 + Z C）3。 <img src="/files/ftp_upload/2690/2690fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 図1定常流波形（上段）と、その結果圧力（2行目：PAP、P 空気 、LAP）。LAPとPの空気の異なる組み合わせと時間の関数として。流出管が所定の位置にあったので、一番下の行はPAP対Q.において（）と（B）、QとLAPの増加と減少を示しています。このチューブは、そのLAPには定数とQ.独 ​​立しているので、（C）（D）とLAPは高いが、Q. P 空気の独立になるように（E）アウトレットチューブの高さを手動で調整したが、いずれかであったため削除されました吸気終末（A、C、D）または呼気終末（B、E）圧力。 <img src="/files/ftp_upload/2690/2690fig2.jpg" alt="図2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図2"> 図2拍動流波形Q（上部パネル）と、その結果圧力（底部パネル：PAP、LAPおよびP 空気 ）。時間の関数として。これらの拍動性の肺動脈圧 - 流量の関係から、PVZは総右心室の後負荷を反映して、計算することができます。

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</ol>

利害の衝突は宣言されません。

手術の重要なステップそれは、肺から肋骨を切断するときには注意されていることが不可欠です。肺が完全に露出し、奔放インフレ時に周辺組織ではなく、分離の過程で損傷がないことをする必要があります。カットするはさみのための明確なパスが存在するように鉗子のバックエンドのような平らなオブジェクトの使用は、離れて胸壁から肺を保持するために使用することができます。別の重要なステップは、肺動脈と大動脈周囲縫合の配置です。平滑ストレートピンセットを使用すると、肺動脈を穿刺のリスクが軽減されます。手術中の最後の重要なステップは、カニューレの配置です。カニューレは、彼らが心を終了するなど、大血管の平面上に高すぎる場合、カニューレは、肺動脈や肺静脈のいずれかに引き出すことができます。左心房のカニューレが低すぎる場合、それは左肺に流れをブロックすることができます。結果として、より多くのフローは、PAPを増加させると、右肺の浮腫の開発を早め、右肺に行きます。 データ収集時の重要なステップ定常流データの収集は、高い流...

<table><tbody><tr><td>1 ml シリンジ</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-829-10F</td><td></td></tr><tr><td>10 ml シリンジ</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-823-2A</td><td></td></tr><tr><td>60 ml シリンジ</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-689-8</td><td></td></tr><tr><td>GLN 6/PK添加RPMI</td><td>Fisher Scientific</td><td>MT10040CV</td><td></td></tr><tr><td>ボトルトップフィルター</td><td>Fisher Scientific</td><td>09-761-57</td><td></td></tr><tr><td>Ficoll PM 70</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F2878-100g</td><td></td></tr><tr><td>ヘパリン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Y27632</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Y0503</td><td></td></tr><tr><td>角度付きボールアイリス鋏</td><td>Fine Science Tools</td><td>14109-09</td><td></td></tr><tr><td>バナススプリング鋏 - 刃長4mm</td><td>Fine Science Tools</td><td>15018-10</td><td></td></tr><tr><td>精密アイリス剪刀 - 直形</td><td>Fine Science Tools</td><td>14106-09</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #5/45 鉗子</td><td>Fine Science Tools</td><td>11251-35</td><td></td></tr><tr><td>Dumont 医学生物学用ピンセット</td><td>Fine Science Tools</td><td>11254-20</td><td></td></tr><tr><td>Lauda E100 ECO-line 003 </td><td>VWR international</td><td>Lauda-Brinkmann E-103 (62400-922) に相当品</td><td></td></tr><tr><td>IL-1 摘出灌流マウス肺システム </td><td>Harvard Apparatus</td><td>739904</td><td></td></tr><tr><td>PLUGSYSモジュール用血圧トランスデューサーP75</td><td>Harvard Apparatus</td><td>730020</td><td></td></tr><tr><td>TS410 フローモジュール</td><td>遷音速</td><td>TS410</td><td></td></tr><tr><td>ME 4 PXN Precision PXN インライン流量センサ</td><td>遷音速</td><td>ME 4 PXN</td><td></td></tr><tr><td>Cole-Parmer マルチシリンジポンプ</td><td>Cole-Parmer</td><td>EW-74900-20</td><td></td></tr><tr><td>Nembutal 50mg/mL 20mLバイアル</td><td>Amatheon</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

絶縁型、ベンチレーテッド、および計装のマウス肺の特性評価は、拍動流を灌流

Characterization of the Isolated, Ventilated, and Instrumented Mouse Lung Perfused with Pulsatile Flow

孤立は、換気と、インストルメントマウスの肺の準備は着実と拍動性の肺血管圧 - 流量の関係は肺動脈流速、流量波形、気道内圧と左心房圧を個別にコントロールして測定することができます。肺血管抵抗は、マルチポイント、安定した圧力 - 流量曲線に基づいて算出され、肺血管のインピーダンスは周波数の範囲で得られた脈動圧力 - 流量曲線から計算されます。現在臨床的に認識されるので、特に肺循環では、無視できない血管コンプライアンスの影響を、含んでいるので、インピーダンスは抵抗よりも右心室の後負荷の優れた指標です。インピーダンスの3つの重要なメトリクス-ゼロヘルツインピーダンスZ 0、特性インピーダンスZ、C、および波反射R Wの指数は-フロー、近位動脈の剛性と上下流インピーダンスで使用可能な遠位動脈の断面積への洞察を提供ミスマッチ、それぞれ。隔離された、換気と灌流肺で得られたすべての結果は、交感神経系のトーン、ボリュームの状態と麻酔の効果とは無関係です。私たちは、抵抗とインピーダンスに肺塞栓および慢性の低酸素の影響を定量化するためにこのテクニックを使用している、とZ、Cの圧力依存性を用いて血管作用剤と疾患の作用部位（すなわち、近位対遠位）を区別する。さらに、これらの技術は、マウスの遺伝子組み換え株の肺で使用されるときに、肺血管の構造と機能に関する分子レベルの欠陥の影響を決定することができます。

次のプロトコルは、換気を分離し、右心室の後負荷に対する血流、気流、気道の変化や血管の変化の影響を定量化するために着実または拍動肺血管圧 - 流量の関係を測定するためにマウスの肺をインストルメントのプロセスを概説します。

単離・人工換気・計装化されたマウス肺標本を用いることで、定常および拍動的な肺血管の圧力-血流関係を測定することが可能になります。

拍動性の肺血圧・血流関係を研究すること。本プロトコルでは、マウスの肺を摘出し、換気および灌流させる方法について説明します。換気のために気管を外科的に露出させます。次に、肺動脈と左心房にカニューレを挿入できるよう、心臓と肺を摘出します。その後、肺系に灌流を行います。肺動脈血流の流量、振幅、波形、または周波数を変化させることで実験を行います。得られた肺動脈および左心房の圧力波形を記録し、脈動性の肺血流圧関係を実証します。in vivo調製などの既存の手法と比較した本手法の主な利点は、体積状態、交感神経系の緊張、活動、および麻酔の影響による変化を排除した状態で、脈動性の圧力・血流関係を得ることができる点にあります。また、ほとんどの孤立肺標本では定常的な圧力-流量関係のみが測定されますが、本手法では拍動性の圧力-流量関係を決定することが可能です。この手法は、肺血管疾患が拍動性の肺血行動態にどのように影響するか、あるいは主肺動脈の硬化が右室後負荷にどのように影響するかといった、肺生理学分野における重要な疑問を解決するのに役立ちます。心臓と肺を露出させ、肺動脈にカニューレを固定する操作は習得が困難であるため、本手法を視覚的に提示することは極めて重要です。器具による過剰な圧は肺浮腫を引き起こす可能性があり、カニューレの不適切な留置は肺動脈を穿刺させる恐れがあります。実験を開始する前に、孤立肺の換気および灌流に使用するIL oneシステムの準備が必要です。チューブを圧力トランスデューサに接続してください。単一のポンプと流量計を用い、37°Cに加温した蒸留水でシステム全体を完全にフラッシュし、チューブ内の気泡を除去します。次に、Endur techポンプのチューブを1%PBSでプライミングします。その後、ゼロ点調整を行います。まず、IL 1システムへのバルブを閉じ、大気へのバルブを開いて、各P 75トランスデューサーの圧力を調整します。次に、プラグSISアンプを使用して圧力を自動的にゼロ合わせします。動物の準備として、セラミック多孔質片を蒸留水に浸し、IO 1セットアップを加湿します。マウスを麻酔後、前肢をコルクボードにピンで固定し、手術のためにマウスを安定させます。次に、胸部に95%アルコールをスプレーします。直鉗子で頸部の皮膚をつかみ、直剪刀で1 cmの切開を行います。頸部の内部が露出したら、食道と気管を探しながら、表在筋にある白い腺組織を切り取り除去します。食道と気管の周囲および後方の組織を剥離し、気管に緩い縫合糸をかけます。気管にカニューレを挿入するため、小鋏を用いて気管の片側に小さなV字状の切開を慎重に加えます。その後、鈍端鉗子を用いてマウスをIL oneシステムへ移動させます。気管カニューレを掴み、気管内に挿入します。縫合糸でカニューレを固定します。まず室気で換気

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このビデオは、孤立した肺灌流のためのex...

ex vivo肺灌流:ウサギモデルにおける肺研究の手法

低酸素肺血管収縮(HPV)は、肺胞低酸素肺灌流で換気に一致する重要な生理学的現象である。HPVに寄与する主要な血管セグメントは、口腔内動脈である。ここでは、直径20~100μmのマウス肺血管のHPVの分析プロトコルについて説明します。...

マウス精密切り出肺スライスを用いた低酸素肺血管収縮のビデオモルフォメトリクス解析

孤立した血液灌流肺準備が肺表面上の微小血管ネットワークを可視化することが実現可能になります。ここでは、リアルタイムの蛍光画像を用いて単離された肺における単一微小血管の透過性を定量化するためのアプローチを記載する。...

単離された血液灌流ラットの肺の準備にシングル微小血管透過性を定量化する

ex vivoでの肺灌流（EVLP）臓器を評価し、ドナープールを拡張する機能を有効にすることで、より容易に利用できるようになるためにヒトでの肺移植を可能にした。ここでは、ラットのEVLPプログラムと将来の拡張のための再現可能なモデルを可能に改良の開発について説明します。...

孤立の方法<em&gt;エクスビボ</emラットモデルにおける&gt;肺灌流：ラットEVLPプログラムの開発の教訓

ここでは、マウスの肺圧-体積曲線を簡単かつ確実に測定するためのプロトコルを提示し、それが2つの一般的な肺の病状、肺線維症と肺気腫の表現型実質変化を検出するのに十分な感度を持つことを示しています。この指標は、病状の進行に伴う肺の構造変化を定量化する手段を提供します。...

マウス肺における圧力 - 容積曲線の測定

本稿では、マウスで人工心肺を実行する方法について説明します。この小説のモデルは臓器の損傷に関与する分子メカニズムの調査を促進します。...

マウス モデルにおける心肺バイパス: 新しいアプローチ

この方法の目的は、肺腫瘍病理の検査および肺への転移の評価のためのマウス肺の灌流、膨張、および固定のための簡単で効率的な方法を提示することである。...

腫瘍組織学におけるマウス肺の多灌流とインフレーション

孤立したウサギの肺の準備は肺の調査の金の標準的な用具である。この出版物は、気道反応性、肺保存、肺移植および肺水腫における前臨床研究に関与する生理学的および病理学的メカニズムの研究のために開発された技術を説明することを目的とする。...

ウサギモデルにおける孤立した肺灌流システム

ex vivo 肺は、 in vivo 実験の交絡変数を除外しながら生理学的データを収集するためのさまざまな実験に役立ちます。商用セットアップは、多くの場合、高価で、収集できるデータの種類が限られています。ここでは、さまざまな研究デザインに適応できる、完全にモジュール化されたセットアップを構築する方法について説明します。...

ラット Ex Vivo 肺灌流モデルの設計と実装

ここでは、ラットEVLPモデルを確立するために必要な手順を説明し、灌流された肺に関連する炎症プロファイルを示します。その目的は、ラットEVLPモデルに関する知識と経験を広め、その革新的な技術に関連する生物学的応答の統合的な理解を可能にすることです。...

肺移植におけるトランスレーショナルインサイトのための ex vivo 肺灌流ラットモデルの確立

その目的は、EVLP全体で4時間一貫した肺機能を維持できる新しいラットのex vivo肺灌流(EVLP)モデルを開発し、げっ歯類モデルにEVLPを適用するための頑丈な方法を提供する実装仕様を業界に提供することです。...

循環器死後のラット肺に対する新規ex vivo肺灌流システムの確立

学ぶマウス肺の絶縁・換気・灌流法による拍動性肺血管圧力-血流関係の測定。右心室後負荷の定量化と肺血管生理学研究に有用な実験手法を解説します。

絶縁型、ベンチレーテッド、および計装のマウス肺の特性評価は、拍動流を灌流

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