Name: 卵巣と卵管の三次元器官培養用アルギン酸ゲル (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-06-20T12:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 13 s
Description: 学ぶアルギン酸ゲルを用いたマウス卵巣・卵管の三次元器官培養法。正常上皮細胞の特性を保持しつつ、卵巣がんの初期発生メカニズムを解析する新たな研究アプローチを提供します。

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この作品は、臨床およびトランスレーショナル科学のための卵巣癌研究基金[助成金LT/UIC/01.2011]、UICセンター、UICがんセンター、および保健助成金C06RR15482の国立研究所によってサポートされていました。 動物実験は、UICで動物実験委員会が承認した動物のケアのプロトコルの下でAAALACによって定められたガイドラインおよび規制に準拠して行った。このプロジェクトのための動物は、シカゴのイリノイ大学で生物資源研究所（BRL）でバリア室に収容されています。 BRLは、少なくとも1日2回、動物を監視し、動物のケアに関するアドバイスを提供する完全に獣医スタッフがいます。

1。卵巣解剖と組織の分離<ol><li>アルギン酸ナトリウムの0.5％（w / v）の溶液を調製、プロトコールの修正版から準備滅菌PBS、37への熱℃を使用して、これまで5に記載反転またはロッキングによるミックスが、ボルテックスしないでください。 25 Gの針を1mlのシリンジにアルギン酸を描画し、37℃に維持</li><li>架橋組織のカプセル化時にアルギン酸および37に暖かい℃で10mMの無菌CaCl 2溶液を準備</li><li>各実験のための24ウェルプレートにウェル当たりの培地1mLの（αMEM+ 5単位ペニシリン、5μg/ mlのストレプトマイシン）を準備する。種々の薬物、ペプチド、または培養液中のウイルスが含まれています。前の臓器のカプセル化にトランスフェクションのために、37℃で4時間のリポフェクトアミン2000とプラスミドDNAと組織をインキュベート</li><li>動物から臓器を解剖し、任意の脂肪や残存組織を除去する、軽く卵巣周囲の嚢の膜をやってのける、とオルガンを二分することによって4つの部分に卵巣や卵管をカット。動物を頸部脱臼に続いてCO 2窒息により安楽死させた。卵管の場合は、軽く結ぶ膜を離れて引っ張り、切断する前にピンセットを使用して反対方向にチューブの端を拡張することによって組織を解く。 </li><li>滅菌メッシュ繊維の上に単一のアルギン酸の液滴（〜1月3日μL）を置きます。 </li><li>滅菌ピンセットを使用して、アルギン酸の液滴と中央に鉗子を用いて液滴または無菌の注射針を臓器の一部を移動する。 </li><li>滅菌ピンセットでメッシュの繊維を把握し、重力のハンギングドロップにアルギン酸を強制的に許可するように上下逆さまにそれを回して、臓器の一部（オルガノイド）を含む液滴を反転。 </li><li>ドロップは、溶液中に入るように10mMのCaCl 2溶液を含む10cmのペトリ皿の端に鉗子をタップします。 </li><li> 2分間インキュベートし、培地中に余分な10mMのCaCl 2で 、転送を解放するために毛穴を含有する滅菌スプーンで取り除く。最大4つのアルギン酸ゲルへの培地を含む24ウェルプレートの1ウェルに移すことができます。定義された期間のための文化。 </li></ol> 2。細胞のアルギン酸とコレクションの劣化<ol><li>アルギン酸ゲルの可溶化のために、リーボビッツのL - 15 37メディア℃で30分間またはゲルが完全に溶解するまで、Cに溶解したアルギン酸リアーゼの文化（3.4 mg / mL）をインキュベートする。 </li><li>アルギン酸リアーゼから組織を削除します。 </li><li> OSEのコレクションの場合、1時間8リーボビッツのL - 15メディアにおけるコラゲナーゼの500台とオルガノイドをインキュベートする。 1分1秒パルス（1秒間ボルテックスし、1秒休息）に続いて1分間ミディアムパワーで2秒のパルス（2秒ボルテックスし、2秒休息）、の渦。臓器片はマイクロ遠心チューブと新しい滅菌マイクロ遠心チューブに上清をピペットの底に落としてください。ペレットの卵巣の表面上皮に3000 rpmで3分間遠心操作する。 </li><li>卵管上皮のコレクションの場合、5単位のペニシリン、5μg/ mlのストレプトマイシン、4％（v / v）のFBSを含むDMEM中で組織培養プラスチック上縦チューブをカットし、場所。 3-5日にわたり、細胞は卵管間質から"クロール"し、組織培養plastic9に成長する。 </li></ol> 3。パラフィン切片用アルギン酸カプセル化された器官培養の固定<ol><li>選択した時点で培養液からビーズをカプセル化アルギン酸を収集する。 </li><li> 2分間滅菌した10mMのCaCl 2溶液中に文化をドロップすることによってゲルを堅くするアルギン酸をRecrosslink。 </li><li>ゲルは固体のまま、完全に固定の間組織をカプセル化することを確実に50 mMスクロース、10mMのCaCl 2及び50mMのカコジル酸ナトリウムを含有する2％パラホルムアルデヒドでアルギン酸カプセル化された臓器を修正。 </li><li>組織の処理に続いて、5μmのセクションを生成するためにミクロトームでパラフィンやセクションに全体のアルギン酸でカプセル化された器官培養片を埋め込みます。 </li><li>アルギン酸塩を溶解し、ベースの抗原の検索を加熱するため、免疫組織化学を実行する場合は、スライドから削除されます。アルギン酸塩が残っていると立ってヘマトキシリン​​とエオシン染色でエオジンのために染色される。 </li></ol> 4。代表的な結果： 卵巣と卵管の三次元器官培養の例を図1に示されています。卵巣は、異なる大きさの片に切断し、OSEは増殖し、メスで切開から負傷した表面を修復するために移行することができます。このプロセス中に、基盤となる間質に対する相対OSEの正しい向きは、卵巣をカプセル化しているOSEで、維持されます。図2に示すように、四半期またはeighthsにカット卵巣に比べて、半分にカット卵巣のOSEは、より完全に卵巣をカプセル化します。卵巣の傷の修復表面は全体の卵巣の文脈で検討することができ、排卵と表面修復が卵巣の表面の変形を誘導する方法に光を当てることができる。 実験のエンドポイントが必要とされる情報によって異なります。組織構造、細胞形態、および特定の細胞の成長率は、簡単にパラフィン切片を使用して監視されます。 7日間、5μg/ mlのインスリンの添加が、卵巣の表面上皮との複数の層の形成の過剰増殖を誘導しながら例えば、卵巣の表面上皮の単層は、7日間（図3A）の無血清αMEMで培養後に観察され細胞（図3B）。固定前に10μMの24時間の最終濃度で培養物にブロモデオキシウリジンを追加することによって、細胞の増殖は（挿入図3Aおよび3B）を測定することができます。顆粒膜細胞の割合が大きく、増殖しながら、無血清αMEMで維持培養のため、OSEの約3〜5％が、24時間の標識期間（挿入図3A）の間に増殖を受ける。培地にインスリンを添加すると、合計OSE（挿入図3B）の約30％にOSEを増殖の割合が高くなります。緑色蛍光タンパク質（GFP）の免疫蛍光は、cDNAをトランスフェクション（図3C）は、次の標準的な顕微鏡とアルギン酸ゲルを介して可視化することができます。アルギン酸の器官培養では卵巣の表面上皮と一次卵胞の成長と分析のために提供していますが、それは成熟した、二次卵胞は、この培養系（図3D）で生き残るために失敗することに留意すべきである。アルギン酸ハイドロゲルマトリックス内に満期までの個々の卵胞の培養は、他の場所で10記載されている。 タンパク質やRNAの変化は、全体の臓器または酵素的分解（図4）を使用して特定の細胞型から分析することができます。一部の間質細胞はまた、（図4D）絶縁されているものの、コラゲナーゼと培養卵巣オルガノイドの治療は、ペレットは、以下の処置を得られた細胞のOSEの濃縮を可能にしながら（図4C）無傷の基本的な間質を残します。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/2804/2804fig1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 負傷後のOSEを伝播するために使用される図1。マウスの卵巣三次元培養システム。 A）顕微鏡下では、嚢と周囲の脂肪パッドは削除されました。 B）はそのまま卵管チューブと卵巣（O）（T）と脂肪パッド（F）。 C）ブルサと脂肪パッドで卵巣を除去（左）と巻かれていない卵（右）。 D）卵巣や卵管オルガノイドは、アルギン酸の液滴に入れた。 E）アルギン酸包まオルガノイドは、CaCl 2溶液に架橋ゲルを形成するために、アルギン酸塩に滴下した。 F）アルギン酸カプセル化された卵巣オルガノイドは。 G）アルギン酸は、卵管オルガノイドをカプセル化。 H）アルギン酸カプセルオルガノイドは、培養培地中でインキュベートした。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/2804/2804fig2.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図2"> 図2表面領域は、サイトケラチン8によって測定された卵巣の表面が再生成されます。 eighths、四半期、半分にカットされた後、OSEによる卵巣オルガノイドのカプセル化は、BSA培地で培養し、サイトケラチン8（CK8）抗体を用いた免疫組織化学分析により測定。 <img alt="図3" src="/files/ftp_upload/2804/2804fig3.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図3"> 図3。アルギン酸の培養系は、成長因子の通過とOSEへのcDNAのトランスフェクションすることができますが、卵胞の急速な成長と成熟を ​​サポートしていません。 A）卵巣オルガノイドは、OSEをマークCK8表現、について分析した基礎培地で7日間培養。はめ込み、シリアルセクションでは、BrdUの取り込みのために染色。 B）培地にインスリンの添加は、OSEの過形成を誘導する。はめ込み、シリアルセクションでは、BrdUの取り込みのために染色。 C）卵巣オルガノイドは、GFPを発現するようにするcDNAでトランスフェクション。 D）アルギン酸の培養系は、原始卵胞（赤矢印）の成長をサポートしますが、成熟していない二次卵胞（黒矢印）。 <img alt="図4" src="/files/ftp_upload/2804/2804fig4.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図4"> 図4。OSEは、培養後分析のために単離することができる。 A）オルガノイドは最大2週間のための培地で培養する。 B）カプセル化オルガノイドは、オルガノイドをそのままにしておくアルギン酸リアーゼと扱われます。卵巣は、OSEをマークするCK8で染色される。 C）オルガノイドは、基礎となる間質からOSEを分離するコラゲナーゼで処理される。残りの組織片は、卵巣表面の除去を強調するためにCK8で染色した。 CK8（赤）を染色としてD）処理後に回収した細胞は、OSEのために濃縮されます。細胞は核をマークするためにDAPIで対比されています。

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</ol>

開示することは何もありません。

アルギン酸ハイドロゲルを利用した三次元器官培養系の開発は、生物の多種多様な多くの異なる組織型を分析するための汎用的な方法を表します。それは細胞が11を成長することのできる足場を提供するので、3次元培養の使用は、組織工学と再生医療の分野に拡張することができます。現在、私たちの研究室ではヒト卵巣と卵管組織を用いた初期の研究が行われているが、ヒトおよび非ヒト霊長類卵胞の培養は、12,13に記載されている。 文化のオルガノイドにアルギン酸ハイドロゲルの使用は、それらの取り入れコラーゲン、フィブリン、またはヒアルロン酸のようなハイドロゲルの他のタイプに比べていくつかの利点を、提供しています。室温、中性pHでのアルギン酸塩ゲル、ゲルがオルガノイド14カプセルとして組織するために少し混乱を提供する。アルギン酸は、組織の成長の5の化学的に不活性なサポートを提供し、細胞タンパク質とは反応しない。ゲルは培養細胞15の検索を可能にする、カプセル化された組織を分解しない酵素的に分解用いたアルギン酸...

<table border="1"><tbody><tr><th>試薬の名前</th><th>会社</th><th>カタログ番号</th><th>コメント（省略可能） </th></tr><tr><td>リーボビッツL - 15培地</td><td>ギブコ</td><td> 11415 </td><td></td></tr><tr><td> αMEM培地</td><td>ギブコ</td><td> 12000-022 </td><td></td></tr><tr><td>アルギン酸ナトリウム</td><td> Novamatrix </td><td></td><td></td></tr><tr><td>カコジル酸ナトリウム</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> C0250 </td><td></td></tr><tr><td>ポリプロピレンメッシュ繊維</td><td>マクマスターカー</td><td></td><td> 45&quot;ワイドロール、0.0041&quot;オープニング</td></tr><tr><td>リポフェクタミン2000 </td><td>インビトロジェン</td><td> 11668 </td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン/ストレプトマイシン</td><td>ギブコ</td><td> 15070-063 </td><td></td></tr><tr><td>アルギン酸リアーゼ</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> A1603 </td><td></td></tr><tr><td> A1603 </td><td>シグマアルドリッチ</td><td> C9697 </td><td> クロストリジウムヒストリから</td></tr><tr><td>ウシ血清アルブミン</td><td> MPのバイオメディカル</td><td> 103700 </td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎仔血清</td><td>ギブコ</td><td>ギブコ</td><td></td></tr><tr><td> ITSソリューション</td><td>ロッシュ</td><td> 11074547001 </td><td>インスリン/トランスフェリン/亜セレン酸ナトリウム</td></tr><tr><td>サイトケラチン8抗体</td><td>発達研究ハイブリドーマバンク</td><td> TROMA - 1 </td><td> 1:200で使用</td></tr><tr><td> DAPI </td><td>ベクトル研究所</td><td> H1200 </td><td></td></tr><tr><td>ブロモデオキシウリジン</td><td>シグマ</td><td> B50002 - 1G </td><td>最終濃度10μM </td></tr></tbody></table>

卵巣と卵管の三次元器官培養用アルギン酸ゲル

Alginate Hydrogels for Three-Dimensional Organ Culture of Ovaries and Oviducts

卵巣がんは女性のがん死亡の第五の主要な原因であり、アメリカ1位63％の死亡率を持っています。卵巣癌の起源の細胞型は、質問のままですし、どちらか卵巣表層上皮（OSE）または卵管の線毛2,3の先端部上皮かもしれません。 in vitroでの初代培養のような正常細胞の培養は、科学者はそれによって決定的に起源の細胞型を決定する、明確な上皮で卵巣癌につながる可能性のある特定の変更をモデル化することが可能になります。これはこの病気を対象としたより正確なバイオマーカー、組織特異的遺伝子の変化と動物モデル、そしてより良い予防戦略の開発が可能になります。 アルギン酸ヒドロゲルの正常な細胞を維持することは、その三次元のコンテキスト内で細胞の体外培養において短期を促進し、プラスミドDNA、siRNAを、そして小分子の導入を可能にする。単一の臓器からメス、複数の文化を使って戦略的なカットから派生している部分での培養臓器によっては、単一の動物からの実験の数を増やし、生成することができます。これらは、卵巣癌の形成に関連付けられているOSEの増殖につながる排卵のモデルの側面をカットします。このようなプラスチックの表面にも成長していないOSEなどの細胞型は、この方法を用いて培養し、正常な細胞プロセスまたは癌の形成4の初期のイベントに調査を容易にすることができます。 アルギン酸ヒドロゲルは、組織の5の多くの種類の成長をサポートするために使用することができます。アルギン酸は、損傷組織6,7をしない穏やかなゲル化作用で、その結果、β- D -マンヌロン酸とカルシウムイオンで ​​架橋することができるα- L -グルロン酸の繰り返し単位から成る線状多糖類である。このようなマトリゲルなどの他の三次元細胞培養マトリックスのように、アルギン酸は、組織のための機械的なサポートを提供しますが、タンパク質はアルギン酸マトリックスと反応しないため、セルが5をシグナリング開始しない合成細胞外マトリックスとしてアルギン酸機能。アルギン酸ハイドロゲルは、標準的な細胞培養培地中に浮遊してin vitroでの組織の成長のアーキテクチャをサポートしています。 方法は準備、分離、および最大2週間の培養で維持することができるアルギン酸ヒドロゲル、に卵巣と卵管臓器片の埋め込みのために提示されます。器官培養からタンパク質とRNAサンプルの分析のための細胞の酵素放出についても説明します。最後に、主要な細胞型の成長は、マウスからの遺伝的不死化することなく可能であり、ノックアウトやトランスジェニックマウスを使用するために捜査官を許可します。

それらの三次元コンテキストで正常な細胞の培養は、細胞の形質転換および腫瘍形成に必要な初期の事象を研究するための代替メソッドを表します。このメソッドは、卵巣癌の形成の初期イベントを研究するために、通常の卵巣と卵管の細胞を成長させるために使用されます。

卵巣がんは女性におけるがん死の原因として第5位であり、米国における死亡率は63%に達しています1。...の細胞起源は

本手順では、正常な卵巣および輸卵管上皮細胞を3次元器官培養として増殖させる方法について記述します。まず、マウスから卵巣、UCT、脂肪組織、および子宮の一部を摘出します。次に、嚢を 제거し、ピンセットを用いて輸卵管膜を剥離させ、各卵巣またはUCTを2〜4個の断片（オルガノイドと呼ぶ）に切り分けます。最後に、オルガノイドをメッシュファイバー上のアルギン酸液滴に封入します。定義培地で培養されたOSCおよびTECは、本来の三次元構造において正常な細胞特性を維持します。組織切片の免疫組織化学染色、RNA解析、およびタンパク質解析により、卵巣癌におけるOSCおよびTECの影響について知見を得ることができます。従来の二次元不死化細胞培養と比較した本手法の主な利点は、細胞経路を変化させる可能性のある遺伝的不死化を行うことなく、細胞を基底の細胞外マトリックスおよび間質細胞と接触させて培養できる点にあります。この手法は、癌形成における初期イベントの定義や、漿液性卵巣癌がどの細胞型から発生するかを決定するなど、卵巣癌分野における重要な疑問を解決するのに役立ちます。本手法は卵巣癌への洞察を提供できるだけでなく、卵胞培養や膵β細胞島培養などの他の系にも適用可能です。一般的に、この手法に不慣れな方は、卵巣およびUCTを損傷することなく、bursaおよびuc膜を除去することが困難であるため、苦労することがあります。まず、滅菌PBSを用いて0.5%のアルギン酸溶液を調製し、転倒混和またはロッキングミキサーで混合しながら37 °Cに加熱します。次に、25Gの針を装着した1 mLシリンジにアルギン酸を吸入し、37 °Cを維持します。次に、組織のカプセル化時にアルギン酸を架橋させるための10 millimolar 塩化カルシウム溶液を調製し、37 °Cまで温めておきます。また、24ウェルプレートを用いて、各実験につき1ウェルあたり1 mLの培地を調製し、必要に応じて各種薬剤、ペプチド、またはウイルスを培地に添加します。動物から臓器を摘出する際は、脂肪や残留組織を除去してください。卵巣を囲んでいる卵巣膜を慎重に剥がし、器官を二等分して卵巣またはUCTを4等分に切断し、卵管組織をゆっくりと解きます。ピンセットを用いて、接続している膜を引き離し、チューブの両端を反対方向に伸ばします。切断する前に、滅菌済みのメッシュファイバー上に約2 µLのアルギネート液を1滴落とします。滅菌鉗子を用いて、オルガノイドの一部をアルギネート液の中に移動させ、液滴を中央に配置して、オルガノイドを含む液滴を反転させます。メッシュファイバーをひっくり返し、重力によってアルギネートを、10 mM 塩化カルシウム溶液を含む10 cmペトリ皿の端に吊り下げ滴として形成させます。ピンセットを軽く叩き、液滴を溶液の中に落とします。2分間インキュベートします。穴あき滅菌スプーンで取り出して過剰な 10 millimolar 塩化カルシウムを除去し、規定の時間、培養液へと移します。アルギン酸ゲルの可溶化のため、3.4 mg/mLのアルギン酸リアーゼを含むOvitz L-15培地中で、培養物を37 °Cで30分間、またはゲルが完全に溶解するまでインキュベートします。次に、組織をアルギネートリアーゼから取り出します。続いてOSEを回収するため、オルガノイドをOvitz ISS L 15培地中の500 unitsのコラゲナーゼとともに1時間インキュベートします。その後、中出力で2秒間のパルスを1分間、次いで1秒間、ボルテックスで撹拌します。1分間パルス処理します。臓器の断片をマイクロ遠心チューブの底に沈殿させ、上清を新しい滅菌済みマイクロ遠心チューブにピペットで移し、3000 RPMで3分間遠心分離して卵巣表面上皮をペレット化します。最後に、卵管上皮を回収するために、チューブを縦方向に切り、組織培養用プラスチック上に3〜5日間置いて培養します。細胞は管状ストローマから這い出し、組織培養プラスチック上で増殖します。あらかじめ設定した回収タイミングで、培養液からアルギン酸封入ビーズを回収してください。培養物を10 millimolarの滅菌塩化カルシウム溶液に2分間浸すことで、アルギン酸を架橋させ、ゲルの硬度を高めます。次に、アルギン酸でカプセル化したオルガノイドを固定します。その際、固定中にゲルが固形状態を維持し、組織を完全に包包していることを確認してください。OSCのようなプラスチック表面では十分に増殖しない細胞型を培養することが可能です。本手法を用いることで、正常な細胞プロセスや、がん形成の極めて初期の事象に関する研究を促進できます。顕微鏡下で、嚢と周囲の脂肪パッドを除去し、アルギン酸カプセル化したオルガノイドを調製して、培養液中でインキュベートしました。OSCは、メスによる切開で傷ついた表面を、時間と距離の関数として修復しました。サイトケラチン8抗体を用いた免疫組織化学的解析により、卵巣を半分に切断した場合、4等分または8等分に切断した場合よりも、卵巣がより完全に包囲されることが示されました。組織構造、細胞形態、および特定の細胞増殖速度は、パラフィン切片を用いて容易に観察可能です。例えば、無血清MEMで7日間培養した後、卵巣表面上皮の単層が観察されます。5 µg/mLのインスリンを7日間添加すると、卵巣表面上皮の過増殖と多層細胞の形成が誘導されます。ここでは、cDNAトランスフェクション後、標準的な顕微鏡を用いてアルジネートゲルを介して緑色蛍光タンパク質の免疫蛍光を可視化しています。アルジネート・オルガンカルチャーは卵巣表面上皮および初次卵胞の増殖と解析を可能にしますが、成熟した二次卵胞はこの培養系では生存できないことに留意してください。タンパク質またはRNAの変化は、酵素分解を用いることで、器官全体または特定の細胞型から解析することが可能です。培養卵巣オルガノイドをコラゲナーゼで処理すると、下層のストローマは維持され、処理後に得られる細胞ペレットにおいて卵巣表面上皮を濃縮することができます。適切に実施すれば、この手法は1〜2時間で完了します。この手順を行う際は、常に無菌状態を維持することが重要です。本手順に続き、免疫組織化学、ウェスタンブロッティング、転写アレイなどの追加手法を実施することで、細胞形態や組織構造が初期の形質転換イベントにどのように寄与しているかといった、さらなる疑問を検討することが可能です。このビデオを視聴することで、卵巣および卵管の3次元アルギン酸培養の方法を十分に理解できるはずです。

alginate-hydrogels-for-three-dimensional-organ-culture-ovaries

Research

JoVE Journal

Bioengineering

バイオエンジニアリング（生体工学）

3Dフィブリン-アルギン酸相互貫入ネットワークにおける卵胞のカプセル化のための新しい方法が記載されている。このシステムは、成熟した卵母細胞を生成するために未熟な卵胞の発達をサポートするためにタンパク質分解と構造的な支持を兼ね備えています。このメソッドは、拡張を制限することなく、細胞間接触を維持するために培養細胞の集合体に適用してもよい。...

タンパク質分解的に分解性3次元システムにおける卵胞のカプセル化と文化のための方法

このビデオでは、ブタの卵丘-卵母細胞複合体(COC)をフィブリン-アルギン酸ビーズにカプセル化して3D培養を確立するためのプロトコルについて説明しています。このin-vitro成熟システムは、正常な細胞間コミュニケーションを維持し、卵子の成熟と生存率の維持を保証します。...

ブタCOCの3D培養:フィブリン‐アルギン酸ポリマーヒドロゲルビーズにCumulus Oocyte complexesをカプセル化する手順

このプロトコルは、新生児マウスと思春期前のマウスからの個々の卵胞から卵巣を使って、マウスの卵巣組織の初代培養/共培養を説明しています。培養技術は、卵巣上の外因性薬剤の効果の研究を可能にする、高度に生理的な方法で開発を支援し、卵胞の間の相互作用の。...

文化と共培養マウスの卵巣と卵胞

ここでそのままマウス卵巣における受動的な明快さと卵巣の血管と濾胞性毛細血管の可視化における 3 D 画像再構成法の適応を提案する.

受動的な明快さクリア マウス卵巣の血管の 3次元再構築

ここでは、3D培養条件でのブタ卵母細胞のカプセル化のための2つのプロトコルを示します。第1に、cumulus-oocyte複合体(COC)はフィブリンアルギン酸ビーズにカプセル化される。第2に、フッ素化エチレンプロピレン粉末粒子(マイクロバイオリアクター)で封入される。両システムは、3D組織を維持するために最適な条件を保証します。...

ポルシン卵母細胞カプセル化のためのタンパク質分解アルギン酸ヒドロゲルおよび疎水性マイクロバイオリアクター

このプロトコルは、遺伝子発現および組織学的分析のためのマウス子宮内膜上皮オルガノイドを確立するための方法論を説明しています。...

マウス子宮からの3D子宮内膜オルガノイドの確立

このプロトコルは、初代ヒト卵巣表面上皮(hOSE)細胞からの三次元(3D)組織オルガノイドの確立を説明しています。このプロトコールには、新たに採取した卵巣からのhOSEの単離、hOSEの細胞増殖、凍結保存融解手順、およびオルガノイドの誘導が含まれます。免疫蛍光、定量分析、スクリーニングプラットフォームとしての有用性の紹介が含まれています。...

組織再生研究のプラットフォームとしてのヒト卵巣表面上皮オルガノイド

このプロトコールは、チラミン結合ヒアルロン酸ハイドロゲルを用いてマウス卵巣から前胞状卵胞をカプセル化し、培養するための新しい3次元(3D)培養モデルについて述べています。また、ガラス化による卵巣卵胞凍結保存への2つのアプローチについても詳しく説明します。...

新規ヒアルロン酸ハイドロゲルの三次元卵胞培養への応用とマウス卵巣卵胞凍結保存の方法論

in vitro の配偶子形成を補完する新しい足場を含まないアガロースカビで卵胞を培養する方法について説明します。...

足場のないマウス卵胞培養のためのカスタマイズ可能なアガロースモールドの製造と使用

私たちは、卵巣の間質豊富な部分からマウス卵巣体細胞を単離する方法と、足場を使わない方法でマウス卵巣体細胞オルガノイドを生成する方法を述べます。...

卵巣微小環境の探査:マウス卵巣体細胞の単離、2次元培養、オルガノイド培養の方法

学ぶアルギン酸ゲルを用いたマウス卵巣・卵管の三次元器官培養法。正常上皮細胞の特性を保持しつつ、卵巣がんの初期発生メカニズムを解析する新たな研究アプローチを提供します。

卵巣と卵管の三次元器官培養用アルギン酸ゲル

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