0 閲覧数 • 3:23 分 • April 30th, 2023
X 線などの電離放射線にさらされると、DNA 損傷を引き起こし、最終的には細胞死につながる可能性があります。細胞死プロファイルに対する電離放射線の影響をスクリーニングするには、カバーガラスの表面に付着したがん細胞を含む培養皿を採取することから始めます。
培養皿にX線を所望の時間照射します。この処理は細胞内にDNA損傷を引き起こします。次に、使用済み培地を培養皿から吸引し、適切な固定剤を加えます。この溶液は細胞に浸透し、その後の染色ステップ中に細胞成分を所定の位置にロックします。
固定液を廃棄します。X線処理細胞を含むカバーガラスを培養皿から取り除きます。カバーガラスを裏返し、細胞がDAPIに直接接触するように、DAPI染色液を一滴乗せたスライドガラスの表面に置きます。
DAPI分子は核に入り、DNAのA-Tに富む部位に結合します。次に、蛍光顕微鏡で細胞を視覚化します。核は青く見え、独特の形態を示します。
凝縮および断片化された核を示す細胞は、アポトーシス、プログラムされた細胞死を示しています。多葉核を示す他のものは、細胞が有糸分裂の大惨事を経験していることを表しています。複数の明るい点を示す平らな核を持つものは、老化中の細胞を示唆しています。
インキュベーターから細胞を取り出し、培養皿から培地を吸引します。1,000マイクロピペットの先端を端から約5ミリメートルはさみで切り取り、それを使用して1ミリリットルの固定液を培養皿に加えます。
細胞への損傷を最小限に抑えるために、培養皿の壁に沿って固定液を塗布します。次に、この培養皿を正方形の培養皿に移し、軽く振って固定液をカバーガラスに均一に分散させます。その後、皿を室温で10分間インキュベートします。
皿から固定液を吸引します。次に、皿の壁に沿って2ミリリットルのPBSを加え、PBSを吸引します。DAPI染色の準備をするには、5マイクロリットルのDAPI染色試薬をスライドガラスに加えます。次に、メスを使用してカバーガラスを皿から取り除き、カバーガラスの端をペーパータオルで触れて、カバーガラス上の余分なPBSを排出します。
次に、スライドガラス上のDAPI染色試薬の液滴にカバーガラスを逆さまに取り付けて、細胞をDAPI染色試薬にさらします。最後に、DAPIフィルターを備えた蛍光顕微鏡で染色された細胞を調べます。
本記事では、電離放射線、特にX線ががん細胞の死滅プロファイルに及ぼす影響について調査します。手法としては、接着性がん細胞に放射線を照射し、その結果生じたDNA損傷を蛍光顕微鏡を用いて解析します。
電離放射線誘発性の細胞死に関する迅速な形態学的スクリーニングは、腫瘍学の創薬における治療仮説の早期リスク排除を可能にします。放射線曝露を特有の核表現型に結びつけることで、本手法はDNA損傷応答経路におけるターゲット検証およびメカニズムの解明を支援します。これにより、予測的な細胞死プロファイリングに基づいた化合物の優先順位付けのための、スケーラブルで再現性のあるアッセイが提供されます。
この手法は、標的仮説の検証からリード化合物の同定、そして前臨床での有効性評価に至る創薬の連続的なプロセスに適合するものであり、特にDNA損傷剤や放射線増感・保護剤に適しています。
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最終更新:22 8月 2026