Name: タンパク質治療薬の製造細胞株の開発のためのハイスループット自動化されたプラットフォーム (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-09-22T12:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 48 s
Description: 学ぶ タンパク質治療薬の製造細胞株開発におけるハイスループット自動化プラットフォームの活用方法。フローサイトメトリーとイメージング技術を用いて、高生産性で安定したクローンを効率的に選抜する手法を解説します。

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1。宿主細胞のトランスフェクション<ol><li> 15 mlの増殖培地（10％を添加したヌクレオチドおよびヌクレオシドとMEMA（ギブコ、カタログ番号12571）γ線照射を特徴とするウシ胎児血清（cFBS）（HyClone、でT75コーニングの細胞培養フラスコ内のシード2 × 10 6 CHO - DXB11細胞カタログ番号SH30071.03）および45％グルコース溶液（シグマ、カタログ番号G8769））トランスフェクションの前日の10 mLの/ L。 </li><li>トランスフェクションの時点で、次のようにトランスフェクション複合体を準備します。 <ol class="lalpha"><li>滅菌マイクロ遠心チューブに血清を含まない増殖培地800μlの8μgのDNAを希釈する。穏やかに混合する。 </li><li>ポリスチレンチューブに血清を含まない増殖培地800μlに40μlのリポフェクタミン™（Invitrogen社18324012）を希釈する。 </li><li>希釈リポフェクタミン™に希釈したDNAを追加。穏やかに混合し、室温で30分間インキュベートする。 </li></ol></li><li> T75の細胞から増殖培地を削除し、血清を含まない増殖培地の6.4 mlを交換してください。フラスコにトランスフェクション複合体1.6 mlを加える。プレートを揺らして穏やかに混合。 </li><li> 6時間CO 2インキュベーターで37セル℃でインキュベートする。 </li><li> 37フラスコとインキュベートする増殖培地8mlを追加で一晩、CO 2インキュベーターでC。 </li><li>吸引によって培養液を除去し、フラスコに新鮮な増殖培地を追加してください。一晩CO 2インキュベーターで37セル℃でインキュベートする。 </li><li> （MEMA媒体ヌクレオチドまたはヌクレオシドなし（ギブコ、カタログ番号12561）10％γ線照射透析ウシ胎児血清（dFBS）（HyClone、カタログ番号SH30079.03）と10 mLの/ L 45を添加した選択培地で増殖培地を交換してください％のグルコース溶液（シグマ、カタログ番号G8769））。 </li><li> 2-3週間のためにCO 2インキュベーターで37セル℃でインキュベートする。 </li></ol> 2。フローサイトメトリー活性化細胞ソーティングによってクローニング<ol><li> 4℃で5分間800rpmでフラスコや遠沈管から​​細胞を取り除きます℃に</li><li> 2％ウシ血清アルブミンおよび1:20希釈で蛍光標識した抗ヒトIgG抗体を添加した選択培地で細胞を再懸濁します。 </li><li> 15〜30分間氷上でインキュベートし、冷PBSで2回洗浄する。ポリプロピレンのチューブに1 × PBSで細胞を再懸濁します。 </li><li> BD FACSAria™上で無菌ソートの準備。各ウェルに200μlの選択培地を含む96ウェル細胞培養プレートを準備します。 </li><li>無菌的に細胞とチューブをロードし、BD FACSAria™に分析し、それぞれ、ステンドグラスと未染色細胞の結果を記録。 </li><li> 96ウェルプレート（S）に必要な蛍光染色プロフィールの単一細胞をソートするには、ゲートと設定を行います。 <ol class="lalpha"><li>トランスフェクションされた細胞は、最初に前方散乱対側方散乱に基づいて分析されます。生細胞用のゲートは、細胞の複雑さや粒度を測定するセルのサイズ、および側方散乱を測定する前方散乱、に基づいて行われます。 </li><li>このゲート内に入る次に、細胞をPEの染色のために検査されます。 PE負のゲートは、非染色トランスフェクションされた細胞や染色した宿主細胞のために設定されています。染色したトランスフェクトした細胞をFACSで検討されているとして、"ハイPE"ゲートは、PE染色に陽性であるすべてのセルの上位5％を包含するように区切られます。 </li></ol></li><li>二週間、37℃のインキュベーターで培養する。 </li></ol> 3。 CloneSelect™イメージャによるコロニー形成のドキュメント 0日目、3日目、ソートFACS後7日目および13日目でCloneSelectイメージャ™上で96 - ウェルプレートでの文書のコロニー形成。画像のドキュメントは、単一細胞に由来するクローンの選択を保証します。その時点で各ウェルに1つのセルだけがあるので、このドキュメントの重要なステップは、0日目の測定のために正しく調整されて焦点面を得ています。それは、それらの単一細胞の画像がフォーカスされていることを非常に重要であり、最高の状態でその上にフォーカスを調整しようとすると、誤解を招く可能性があります。焦点面にはプレートのブランド間で大きく異なると可能性もたくさんの同じブランドの多くにできます。したがって、あらかじめ決められた焦点面には使用する必要があります。これは、テストマイクロビーズまたは使用されている同じロットからのプレート上に堆積した高密度の細胞に着目することによって行うことができます。また、同一ロットから十分に成長したプレートは、この目的のために使用されることがあります。 FACSは、ソートした後、彼らはプレート上の位置に"固定"となるように、細胞がイメージングの前に最低2時間のために解決できるようにすることも重要です。 4。生産性の高いクローンのスクリーニングと選択<ol><li>受信側の96ウェルアッセイプレートの文書のサンプル位置。 </li><li> TECAN自由EVO ®リキッドハンドリングシステムにより、96ウェルアッセイプレートに20μlの上清の転送アリコート（必要に応じて希釈）。この柔軟性と対応ロボットICプラットフォームは、これと他の自動化された細胞培養作業に適応されています。特別なプログラムは、最高の利用と細胞株開発のための自由EVOロボットの機能を強化するために書かれたものです。この例では、単一のコロニーをウェルの中にサンプリングするためのCloneSelect™イメージャのデータを解釈するTECANを設定しています。他のプログラムは、これらのプログラムの多くが容易にできるなど、そのような高産生クローンをスケールアップするために、、必要に応じて手動でプレートをマークカタログやサンプルを、採取されたサンプルの適切な希釈液を作るために解釈するとして、追加の細胞培養のタスクを実行する必要があった384ウェルプレートだけでなく、オリジナルの96ウェルフォーマットに適用。 </li><li>サンプル中の抗体産生は、ヒトIgGはTECAN自由EVO ®リキッドハンドリングシステム上のELISA（ピアース、ロックフォード、IL）を検出するサンドイッチによって分析されます。 <ol><li>サンプルと標準（ヒト骨髄腫はIgG1、カッパ）（シグマ、セントルイス、MO）は、プレコートバイオコート抗ヒトIgGアッセイプレート（BD Biosciences社、サンノゼ、カリフォルニア州）でロードしました。 </li><li>プレートは3つのPBSの洗浄に続いて2時間室温でインキュベートした。 </li><li> ImmunoPureヤギ抗ヒトIgG、（FC -γ）- HRPは（ピアース、ロックフォード、イリノイ州）1:2000の希釈でプレートに添加し、室温で1時間インキュベートした。 </li><li>このプレートをABTS基質を添加する前にPBSで3回洗浄した（ピアース、ロックフォード、イリノイ州）と検出用の405 nmで吸光度を用いて、プレートリーダーで読んでいた。 </li></ol></li><li>生産性の高いクローンを選択して、懸濁培養での生産性を評価する。流加培養のために、細胞を5 g / Lの大豆加水分解物（DMVインターナショナル、カタログ番号SE50MAF - UFを添加した無タンパク質培地JRH直接的なメリット65578で0.3X106細胞/ mL（SAFC Biosciences社、カンザスシティ、ミズーリ）、ロットで接種した番号）と37℃でインキュベートCO 2 7.5％Cを。文化は継続し、2g / Lのグルコース（シグマ、カタログ番号G8769、ロット番号098K2329）培養中のグルコースを加えた乳酸濃度は2g / Lの下に達し、そして供給2mMのグルタミン（Gibco社、カタログ番号25030、を添加したグルタミンのレベルが200以下に到達したロット番号568177）mg / Lであった（YSIバイオアナライザで測定された代謝物）。フェドバッチ培養物を14日と抗体産生を停止させた逆相HPLCにより測定した。 </li><li>蛍光in situハイブリダイゼーションによる候補クローンの遺伝的特性（FISH）5。 </li></ol> 5。代表的な結果： ハイスループットメソッドを使用してクローンを産生する抗体の開発の例を図1および図2に示されています。トランスフェクト細胞プールはBD FACSAria™（図1B）で解析し、ソートされた、蛍光標識した抗ヒトIgG抗体（図1A）で染色した。 96ウェルプレートでのコロニー形成はCloneSelectイメージャ™（図1C）上に結像された。細胞培養上清は、単一のコロニーを含むウェルから採取し、TECAN自由EVO ®リキッドハンドリングシステム（図1D）にELISAによりアッセイした。生産性の高いクローンを蛍光標識した抗ヒトIgGで染色することによって反射されたより高い表面抗体のレベルを示した細胞から発見された。最初のトランスフェクトされた細胞のプールの2つの集団、流加培養で生産性に大きな違いから生成されたクローンを比較するとき（図2）が観察された。高い表面抗体発現（PE高い）を持つ細胞集団から発生した上位2つのクローンの場合は、特定の生産性は50〜70 PG /細胞/日の範囲であった。抗体の生産性のに対し、低表面の抗体の発現（PE低）で細胞集団から発生した上位2つのクローンのための〜20 PG /細胞/日であった。さらに、FACSソーティングにより開発された細胞株は、マニュアル石灰散布の希釈（図3A）を介してクローン化されたものよりも抗体産生に関して、より安定しています。トップクローンの特定の生産性は、手動の石灰散布の希釈によって生成される"クローン1は"、〜30〜80細胞倍加のための培養後にPC​​Dを〜10にPCDを落とした。一方、、"クローン2"ソートFACSによって生成された最上位サブクローンは、少なくとも100細胞の倍加のPCD約20特定の生産性を維持することができた。 in situハイブリダイゼーション（FISH）の蛍光によって、我々は、表現型の混合集団（85％）として示したと表現型B（15％）クローン1を示した。細胞の99.5％が表現型（図3B）であることが証明さとは対照的に、FACSソートされたクローンは、（クローン2）、​​より均質な集団であることを示した。 <img src="/files/ftp_upload/3010/3010fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 図1。CHO細胞からモノクローナル抗体の産生のための生産細胞株の開発。 A）蛍光標識した抗ヒトIgG抗体との最初のトランスフェクトされた細胞のプールの表面染色が。 B）を96ウェルプレートに高い蛍光強度（PE高）と低い蛍光強度（PE低）と細胞集団のソート。 C）コロニーの文書化0日目からCloneSelectイメージャ™上では13日後の播種に形成。 D）ELISAによるスクリーニングのクローン。 <img src="/files/ftp_upload/3010/3010fig2.jpg" alt="図2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図2"> 図2：表面に関連する抗体のレベルは、細胞の抗体産生と相関している。ハイとローの蛍光染色を持つクローンは、細胞株へと発展し、流加培養で評価した両方。体積力価と特異的生産性は、それぞれ人口の上位2つのクローン間で比較した。 <img src="/files/ftp_upload/3010/3010fig3.jpg" alt="図3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図3"> 図3。高い遺伝的等質性とクローンの安定性を示すソートFACSから生成されたクローン。文化の経過時間の〜80細胞倍加用のバッチ培養でA）抗体の生産の安定性。 Δ、クローンは、細胞がよく2000個/ 1000細胞/ウェル、500細胞/ウェルで播種した限界希釈法、使用して生成されました。 <img src="/files/ftp_upload/3010/3010triangle.jpg" alt="ブラック・トライアングル" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="ブラックトライアングル"> 、クローンは、1セル/ウェルでFACSによって生成されました。 B）CHO細胞の染色体における導入遺伝子の組込み部位は、in situハイブリダイゼーション蛍光によって識別されます。

<ol><li>Hung, F., Deng, L., Ravnikar, P., Condon, R., Li, B., Do, L., Saha, D., Tsao, Y. S., Merchant, A., Liu, Z., Shi, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((mRNA+stability+and+antibody+production+in+CHO+cells%3A+improvement+through+gene+optimization%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol.+J%22%5BJournal%5D)">mRNA stability and antibody production in CHO cells: improvement through gene optimization.</a> Biotechnol. J. 5, 393-401 (2010).</li>
<li>Brezinsky, S. C., Chiang, G. G., Szilvasi, A., Mohan, S., Shapiro, R. I., MacLean, A., Sisk, W., Thill, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+method+for+enriching+populations+of+transfected+CHO+cells+for+cells+of+higher+specific+productivity%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol.+Methods%22%5BJournal%5D)">A simple method for enriching populations of transfected CHO cells for cells of higher specific productivity.</a> J. Immunol. Methods. 277, 141-155 (2003).</li>
<li>Kromenaker, S. J., Srienc, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stability+of+producer+hybridoma+cell+lines+after+cell+sorting%3A+a+case+study%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol.+Prog%22%5BJournal%5D)">Stability of producer hybridoma cell lines after cell sorting: a case study.</a> Biotechnol. Prog. 10, 299-307 (1994).</li>
<li>Marder, P., Maciak, R. S., Fouts, R. L., Baker, R. S., Starling, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+cloning+of+hybridoma+cells+for+enhanced+immunoglobulin+production+using+flow+cytometric+cell+sorting+and+automated+laser+nephelometry%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry%22%5BJournal%5D)">Selective cloning of hybridoma cells for enhanced immunoglobulin production using flow cytometric cell sorting and automated laser nephelometry.</a> Cytometry. 11, 498-505 (1990).</li>
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<li>Meng, Y. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Grenn+fluorescent+protein+%28GFP%29+as+a+second+selectable+marker+for+selection+of+high+producing+clones+from+transfected+CHO+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Gene%22%5BJournal%5D)">Grenn fluorescent protein (GFP) as a second selectable marker for selection of high producing clones from transfected CHO cells.</a> Gene. 242, 201-207 (2000).</li>
<li>DeMaria, C. T., Cairns, V., Schwarz, C., Zhang, J., Guerin, M., Zuena, E., Estes, S., Karey, K. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accelerated+clone+selection+for+recombinant+CHO+cells+using+a+FACS-based+high-throughput+screen%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol.+Prog%22%5BJournal%5D)">Accelerated clone selection for recombinant CHO cells using a FACS-based high-throughput screen.</a> Biotechnol. Prog. 23, 465-472 (2007).</li>
<li>Weaver, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gel+microdrop+technology+for+rapid+isolation+of+rare+an+high+producer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Med%22%5BJournal%5D)">Gel microdrop technology for rapid isolation of rare an high producer cells.</a> Nat. Med. 3, 583-585 (1997).</li>
</ol>

この記事の著者は、哺乳類の細胞株からタンパク質治療薬の大規模生産のためにこの方法を使用するメルク社の社員です。

我々はクローンとクローンの安定性を確保しながら生産性の高いクローンの単離を可能にし、平均値で自動化された製造細胞株の開発プラットフォームを発表した。 FACSAria™の細胞選別に続いて表面の抗体染色の関与は、高い抗体の生産性を持つ単一クローンを得るための鍵です。我々の結果と他の報告書2-4は、一過性に細胞表面に表示される抗体のレベルは、セルの生産性とよく相関していることを示唆している。このように、フルオレセイン標識抗体は、膜関連する製品を認識し、高い生産者の分離を支援するために使用することができます。また、レポーター遺伝子およびゲルmicrodrop技術の共発現はFACS 6月8日で高産生クローンの選択を容易にするために使用されている。 FACSを介して高産生するクローンを単離することに加えて、他の技術は同じ目標を達成するために進化してきました。これらは、Genetix ClonePix FLと蛍光抗体の検出システムを用いて生産細胞株のハイスループットスクリーニングを行うStemCell Technologies社ClonaCell EasyPickプラットフォームを生産性の高いクローンを識別し、不要な細胞を排除するmicrospere抗体検出システムとレーザーのスクリーニング技術を使用してトレリスバイオサイエンスCellSpotの技術が含まれています。我々は、操作の容易性、生産性およびクローン上で選択性を組み合わせているため表面に関連付けられた抗体のレベルに基づいて、FACSクローニング法を実装することにしました。 TECAN自由EVO ®リキッドハンドリングシステムの採用が大幅にはるかに大きい細胞プールからの高収率のクローンを選択する機会を提供するスクリーニングのスループットを、増加した。このようなHTRF、BioForteオクテット、HPLC、など、など、アッセイのための他の計測機器は、高い生産者を選択し、低い生産者をスクリーニング可能なすべての手段です。 CloneSelectイメージャ™とクローン形成を追跡することにより、我々はデジタル化された細胞株の歴史を持つクローンを証明するために必要なドキュメントを生成する。クローンは、さらに遺伝的染色体上の単一の導入遺伝子の組込み部位を特徴付けることによって確認されている。通常、クローンを確保するために取られるサブクローニングのステップは、、このように排除することができる。これは、細胞株開発のための時間の4-8週間が保存されます。要約すると、高スループットの自動化されたプラットフォームで生成された高品質の細胞株は、大規模な生産と現在の規制要件への需要を満たす必要が高い生産性、生産の安定性および文書化された細胞株の履歴を示した。

<table border="1"><tbody><tr><td> の名前 </td><td> 会社 </td></tr><tr><td> BD FACSアリア™セルソーター</td><td>バイオサイエンスBD </td></tr><tr><td> CloneSelect™イメージャ</td><td> Genetix </td></tr><tr><td> TECAN自由EVO ®液体ハンドリングシステム</td><td>テカングループ</td></tr></tbody></table>

タンパク質治療薬の製造細胞株の開発のためのハイスループット自動化されたプラットフォーム

A High-throughput Automated Platform for the Development of Manufacturing Cell Lines for Protein Therapeutics

急成長を遂げているバイオ医薬品業界は、薬物の供給の増大する要件を満たすために高効率で信頼性の高い生産システムのスピーディーな開発が求められています。生産細胞株の世代は、伝統的に労働集約的、低スループットとヒューマンエラーに対して脆弱なマニュアル操作が関与しています。ここでは、タンパク質治療薬の生産のための生産細胞株の開発のための統合されたハイスループットおよび自動化されたプラットフォームを報告する。 BD FACS Ariaの組み合わせは、™セルソーター、CloneSelect™イメージャーとTECAN自由EVO ®リキッドハンドリングシステムは、高スループットとより効率的な細胞株の開発プロセスを可能にしました。この操作では、生産の宿主細胞は、最初に選択剤による治療に続い関心1の遺伝子を、発現ベクターでトランスフェクトされています。安定に導入された細胞は、その後、蛍光標識抗ヒトIgG抗体で染色し、続いてフローサイトメトリー分析2-4対象となります。生産性の高い細胞は、蛍光強度に基づいて選択されており、BD FACSAria™上で単一細胞ソーティングによって分離されています。単一細胞期からコロニー形成は微視的に検出されたとの時間周デジタル映像のシリーズは、細胞株の歴史の説明はCloneSelect™イメージャで撮影されています。単一のクローンが形成した後、これらのクローンはTECANフリーダムEVO ®リキッドハンドリングシステム上で実行ELISAによる生産性のスクリーニングを行った。約2,000 - 10,000クローンは現在のシステムのセットアップと操作のサイクルごとにスクリーニングすることができる。 この統合的なアプローチは、治療用モノクローナル抗体（mAb）だけでなく、それらの融合タンパク質の生産のための高生産チャイニーズハムスター卵巣（CHO）細胞株を生成するために使用されています。プローブを検出する、さまざまなタイプの助けを借りて、メソッドが他のタンパク質治療薬の開発や他の生産のホストシステムに適用するために使用することができます。従来の手動の手順と比較すると、この自動化されたプラットフォームが大幅に増加した容量、確保クローン、電子マニュアルを有する細胞株の歴史の中でトレーサビリティと演算子のエラーの多くを低減機会の利点を示した。

タンパク質治療薬を製造するための製造の細胞株開発のハイスループット、自動化されたプラットフォームが記載されている。 BD FACSアリアセルソーター、CloneSelectイメージャとTECAN自由EVOリキッドハンドリングシステムの実装では、改善された細胞株の品質と高い再現性を持つ細胞株の開発における有意に増加した処理能力を実証してきました。

急成長するバイオ医薬品業界では、増大する需要に応えるため、極めて効率的で信頼性の高い生産システムを迅速に開発することが求められています。

本手順の全体的な目的は、クローナリティ（単一クローン性）と高い生産性を兼ね備えたバイオ医薬品製造用細胞株を構築することです。まず、目的遺伝子をコードするDNAを宿主細胞に導入（トランスフェクション）します。次に、FACsを用いて高生産クローンを分離し、続いてクローン選択イメージャーによってコロニー形成を記録します。最終ステップは、高生産性のクローンをスクリーニングし、選択することです。最終的に、逆相HPLCを用いることで、連続培養およびフィードバッチ培養における抗体生産の結果を得ることができます。この手法のデモンストレーションは極めて重要です。なぜなら、ソートおよびpcan 80 dglのステップは、手順に複雑なセットアップが含まれるため習得が困難だからです。そこで、研究室の以下の研究者が、ホスト細胞への導入効果のためのトランスフェクション、コロニー形成の記録のためのソート（Jason Sanders）、およびtecanサンプリング（Russell Kan）の手順についてデモンストレーションを行います。この手順を開始するには、トランスフェクションの1日前に、ホスト細胞を15 mLの増殖培地とともに細胞培養フラスコに播種します。細胞を37 °C、7.5% CO2インキュベーターで培養します。翌日、トランスフェクション複合体を調製します。まず、滅菌マイクロ遠心チューブ内で8 µgのDNAを無血清増殖培地800 µLで希釈し、穏やかに混合します。次に、ポリスチレンチューブ内で40 µLのlipを無血清増殖培地800 µLで希釈します。希釈したDNAを希釈したLipofectamineに加えます。穏やかに混ぜ合わせ、室温で30分間インキュベートして、宿主細胞をトランスフェクションに備えさせます。細胞から増殖培地を除去し、血清を含まない増殖培地6.4 millilitersで置換します。トランスフェクション複合体を1.6 milliliters、フラスコに加えます。フラスコを揺らして、穏やかに混合します。細胞を二酸化炭素インキュベーターにて37 degrees Celsiusで6時間インキュベートします。6時間後、フラスコに8 mLの増殖培地を加え、二酸化炭素インキュベーターを用いて37 °Cで翌日まで一晩培養します。吸引により培地を除去し、フラスコに新鮮な増殖培地を加えます。一晩の培養後、再び細胞を一晩培養します。増殖培地を選択培地に変更します。細胞を二酸化炭素インキュベーターにて37 °Cで2〜3週間培養します。トランスフェクションから2〜3週間後、フローサイトメトリーを用いた活性化細胞ソーティングによるクローニングが可能になります。フラスコから細胞を回収し、4 °Cで800 RPM、5分間遠心分離します。2%牛血清アルブミンを添加した選択培地で細胞を再懸濁します。次に、蛍光標識抗ヒトIgG抗体を加えます。1/20に希釈した抗体を加え、氷上で15～30分間インキュベートした後、冷PBSで2回洗浄し、ポリプロピレンチューブ内で1×PBSを用いて細胞を再懸濁します。染色された細胞の例をこの写真に示します。BD FACSAriaでの無菌ソートに向けて、各ウェルに200 µLの選択培地を入れた96ウェル細胞培養プレートを準備します。細胞が入ったチューブを無菌的にロードし、BD FACSAriaで解析して、染色細胞と未染色細胞の結果をそれぞれ記録します。目的の蛍光染色プロファイルを持つ単一細胞を96ウェルプレートに分取するため、ゲートおよび設定を行います。プレートを37 °Cのインキュベーターで2週間培養し、分取後0日、3日、7日、および13日目に、クローン選択用イメージャーを用いて96ウェルプレート内のコロニー形成を記録し、単一細胞由来のクローンが選択されていることを確認して、高生産性クローンのスクリーニングおよび選択を行います。まず、受け側の96ウェルアッセイプレートにおけるサンプルの位置を記録します。次に、ロボット液体ハンドリングシステムを使用して、20 µLの上清分取液を96ウェルアッセイプレートの各ウェルに転送します。サンプル中の抗体産生量は、サンドイッチ法により分析します。液量操作システムを用いて、以下の方法でヒトIgG検出ELI SAを行います。まず、サンプルと標準品を、あらかじめコード化されたバイオコート抗ヒトIgGアッセイプレートに分注します。プレートを室温で2時間インキュベートした後、PBSで3回洗浄します。次に、免疫精製ヤギ抗ヒトIgG HRPを1:2000に希釈してプレートに加え、室温で1時間インキュベートします。1時間後、プレートをPBSで3回洗浄し、その後ABTS基質を添加します。最後に、プレートリーダーを用いて405 nanometersの吸光度でプレートを測定します。この自動プラットフォームを使用した結果、蛍光標識抗ヒトIgGによる染色で示される表面抗体レベルが、細胞の抗体生産性と相関することがわかりました。ここに、表面抗体発現の高い細胞集団から得られた上位2つのクローンについて示すように、比生産性は50から70 picograms per cell per dayの範囲でした。対照的に、表面抗体発現量が低い細胞集団から作製された上位2つのクローンの抗体生産性は、1細胞1日あたり約20 picogramsでした。さらに、 FACSソートによって構築された細胞株は、手動の限界希釈法でクローニングされた細胞株よりも抗体生産に関して安定していました。手動の限界希釈法で作製された最上位のクローン（クローン1）の比生産性は、80回の細胞分裂を経て培養した後、約30 PCDから約10 PCDまで低下しました。一方で、FACSソートによって得られたクローン2の最上位サブクローンは、少なくとも100回の細胞分裂後も、約20 PCDの比生産性を維持することができました。蛍光in situハイブリダイゼーションによる細胞染色体上の外来遺伝子挿入部位の同定により、クローン1は表現型Aと表現型Bの混合集団であることが示されました。対照的に、FACSソートされたクローンは、細胞の99.5%が表現型Aである、より均質な集団であると考えられました。このビデオを視聴することで、治療用タンパク質の製造に向けた製造用細胞株の開発方法について十分に理解できるはずです。

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自動化は、セル製造におけるアップスケーリングとコスト管理の鍵となります。本稿は、小規模バイオプロセッシングのための緩衝交換および細胞濃度ステップを自動化するための逆流遠心細胞処理装置の使用について説明する。...

小規模セル処理のための自動カウンターフロー遠心システム

ヒト人工多能性幹細胞(hiPSC)培養の自動化と、自動イメージングと解析に対応した神経分化を示す。...

ヒト人工多能性幹細胞由来皮質およびドーパミン作動性ニューロンの統合されたライブ細胞モニタリングによる自動生産

ここでは、GMPグレードの溶解性マイクロキャリアに基づく完全クローズドシステムによる接着細胞の大規模製造を実現するためのプロトコルを紹介します。ヒト間葉系幹細胞、HEK293T細胞、およびVero細胞の培養は検証され、細胞および遺伝子治療業界の量的要求と品質基準の両方を満たしました。...

GMPグレードの溶解性多孔質マイクロキャリアに基づく大規模セル生産

本稿では、臨床用のキメラ抗原受容体T細胞の製造プロセス、特にT細胞のウイルス形質導入および培養を行うことができる自動細胞プロセッサーの使用について詳述する。私たちは、初期段階の臨床試験のプロセス開発と実施中に考慮すべき推奨事項を提供し、落とし穴について説明します。...

自動セルプロセッサーでのキメラ抗原受容体T細胞製造

このプロトコルは、ハイスループット足場ベースの培養プラットフォームであるSPOTの作製と組み立てを96ウェルおよび384ウェルフォーマットで文書化します。また、手動と市販のリキッドハンドラーを使用したSPOTの播種プロセスについても詳しく説明します。...

ハイスループット足場ベースの培養プラットフォームとしてのSPOTの再現性のある製造

本プロトコルは、キメラ抗原受容体(CAR)-T細胞およびサイトカイン誘導キラー(CIK)細胞を含む採用細胞療法(ACT)製品の拡張のためのスケーラブルな手法を、ガス透過性急速増殖(G-Rex)デバイスを用いたもので、臨床的に関連性の高い環境で効率的かつ堅牢な成長を示しています。...

GMPスケーラブルデバイスにおけるCAR-Tおよびサイトカイン誘導キラー細胞の効率的かつ迅速な生成

学ぶ タンパク質治療薬の製造細胞株開発におけるハイスループット自動化プラットフォームの活用方法。フローサイトメトリーとイメージング技術を用いて、高生産性で安定したクローンを効率的に選抜する手法を解説します。

タンパク質治療薬の製造細胞株の開発のためのハイスループット自動化されたプラットフォーム

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