$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
穴あきパッチクランプ技術により、排尿筋平滑筋(DSM)などの膀胱細胞のイオンチャネルの活性に関連するイオン電流をリアルタイムで測定できます。
まず、DSM細胞懸濁液をガラスチャンバーにロードし、細胞の接着を可能にするためにインキュベートします。次に、テトラエチルアンモニウムイオンとセシウムイオンを含む細胞外溶液を接着した細胞に加えます。これらの陽イオンは細胞膜上のカリウムチャネルをブロックし、干渉するカリウム電流を阻害します。
続
いて、研磨されたパッチクランプピペット(アンプに接続された記録電極を含む細い中空ガラス管)を取ります。ピペットに細胞内溶液を前面に充填し、同じ溶液を充填しますが、膜穿孔抗生物質であるアムホテリシン-Bを含みます。
次に、ピペットチップをDSM細胞を含む細胞外溶液に沈めます。電位と電流を適切なレベルに設定した後、ピペットチップを細胞膜に向かって進め、同時に電極抵抗を監視します。
抵抗値の急激な増加は、ピペットチップが細胞膜に到達したことを示します。次に、電極に穏やかな吸引を加えて、ピペットチップと原形質膜の間にギガシールと呼ばれる密閉
性を形成します。
シール形成後、アムホテリシンはゆっくりと先端に拡散し、膜に穴を開けてイオン細孔を形成します。最適な穿孔が達成されると、イオンはセルと電極の間を移動し、イオンチャネルの機能に比例した電流を生成します。
0.25〜1ミリリットルの細胞懸濁液を倒立顕微鏡のステージ上にあるガラス底チャンバーにピペットで移し、少なくとも45分間インキュベートして細胞を接着させます。次に、DSを浴から取り出し、過融合によってE溶液と交換します。
複数のパッチ電極を引っ張り、電極の先端を火磨きし、必要に応じて先端を歯科用ワックスでコーティングします。電極を溶液に短時間浸して、アムホテリシン-Bを含まないピペット溶液をパッチ電極の先端に満たします。パッチクランプ電気生理学の成功は、DSM細胞の品質とアムホテリシンBの可溶化に依存します。
アムホテリシン-Bを含む同じピペット溶液で電極を埋め戻し、パッチクランプアンプヘッドステージに接続されたホルダーに電極を取り付けます。マイクロマニピュレーターを使用して、電極の先端がちょうど水没するように、細胞外溶液の表面のすぐ下に電極を配置します。
次に、商用取得ソフトウェアの膜テストウィンドウ機能を使用して電極抵抗を決定し、電極を目的のセルに向かって進めます。電極でセル表面に触れるときは、チューブを介して電極に穏やかな急速負圧を加えることでギガシールを形成します。これにより、電極の先端に負圧が生じ、メンブレンテストで確認されたギガシールが成功します。
アムホテリシン-Bがピペットを下って拡散し、原形質膜に挿入され、主に一価カチオンに選択的な細孔が形成されるまで30〜60分待ちます。メンブレンテスト機能でギガシールの監視を続けます。
パッチ穿孔が最適である場合は、アンプのセル容量と直列抵抗のダイヤルを調整して、静電容量過渡現象を相殺します。安定した電圧ステップカチオン電流が観察されたら、原稿に記載されているように配線電圧ステッププロトコルを使用して電流を記録します。