0 閲覧数 • 4:14 分 • April 30th, 2023
膨張病理学 (ExPath) は、生体標本のサンプル調製技術であり、従来の光学顕微鏡では、ポリマー システムを使用して構造を拡張することにより、ナノスケールの構造を画像化できます。
まず、処理された免疫染色組織検体スライドを取り、タンパク質反応基とポリマー反応基の両方を含むアンカー溶液で覆います。アンカリング試薬のタンパク質反応性基は、細胞内の生体分子のアミンに結合します。
次に、適切なゲル化溶液を標本上に加え、組織内での拡散を可能にするためにインキュベートします。アンカー試薬のポリマー反応基はゲル化溶液内の遊離モノマーに結合し、重合時に生体分子がポリマーに固定できるようにします。
サンプルの重合が完了したら、スライドをプロテイナーゼ溶液で覆います。プロテイナーゼは細胞骨格タンパク質を消化して構造抵抗を取り除き、細胞が破裂することなく増殖できるようにします。酵素消化により、ゲル化したサンプルはスライドから剥離し、懸濁液に移動します。
次に、試料を顕微鏡対応容器内の適切な洗浄バッファーに移します。次に、バッファーを水に置き換えてインキュベートします。ポリマーは、その質量に比べて膨大な量の水を吸収し、膨潤します。
ポリマーが膨張すると、ポリマーネットワークに固定された生体分子は、空間的方向を維持しながら離れます。これにより、従来の光学顕微鏡で簡単に視覚化できます。
原稿の指示に従ってアンカー溶液を準備します。スライドを100ミリメートルのペトリ皿に入れます。固定溶液を組織の上にピペットで移動し、室温で少なくとも3時間インキュベートします。次に、原稿の指示に従ってゲル化溶液を調製します。
組織切片から余分な固定溶液を取り除き、スライドをペトリ皿に戻します。新鮮な冷ゲル化溶液をサンプルに加え、混合物を摂氏4度で30分間インキュベートします。サンプルの周りのスライド上にチャンバーを構築するには、ダイヤモンドナイフでカバーガラスを薄く切断してスペーサーを作成します。ティッシュの両側にあるスペーサーを水で固定し、ティッシュの上に気泡が閉じ込められないように、スライドの上にカバーガラスの蓋を慎重に置きます。
次に、サンプルを摂氏37度で加湿環境で2時間インキュベートします。カミソリの刃をカバーガラスの下にそっとスライドさせ、ゲル表面からゆっくりと持ち上げて、ゲル化チャンバーの蓋を取り外します。組織の周りのブランクゲルをトリミングして体積を最小限に抑え、方向を追跡するためにゲルを非対称に切断するようにします。
プロテイナーゼKを消化バッファーで1:200に希釈し、ゲルを完全に沈めるのに十分な溶液を調製してください。次に、サンプルを密閉容器に入れて溶液とともに摂氏60度で3時間インキュベートします。消化中にサンプルが剥がれない場合は、カミソリの刃を使用してそっと取り除きます。
柔らかい絵筆を使用して、目的のイメージングシステムと互換性があり、完全に膨張したゲルを収容するのに十分な大きさの容器に入った1X PBSに試料を移します。サンプルをPBSで10分間洗浄し、必要に応じて300ミリモルDAPIで再染色します。サンプルを余分な量の二重蒸留水で3〜5回、1回10分間洗浄してサンプルを膨らませます。次に、蛍光イメージングを実行します。
拡張病理学(ExPath)は、生物学的試料中のナノスケール構造を従来の光学顕微鏡で可視化することを可能にする試料調製技術である。この手法では、ポリマーシステムを用いて組織試料を拡張させることで、イメージング能力の向上を実現している。
拡張病理学(Expansion pathology)を用いることで、従来の光学顕微鏡を使用してナノスケールの組織構造の高解像度イメージングが可能となり、初期の探索ワークフローにおける特殊な装置への依存度を低減できます。この手法は、バイオ分子の空間的な方向性を維持しつつ、細胞内詳細の可視化を向上させることで、ターゲットのバリデーションを支援します。また、臨床組織サンプルの再現可能かつ定量的なイメージングを提供することで、前臨床モデルにおける予測の信頼性を向上させます。
拡張病理学は、初期のターゲット仮説の検証から前臨床検証に至る発見の連続体の中に位置づけられ、特にメカニズムの解明にナノスケールの解像度が必要な場合に有用です。
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最終更新:29 8月 2026