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組織全体では、細胞外小胞またはEVが細胞によって間質液に放出されます。これらには、アポトーシス小体、微小胞、エクソソームが含まれます。EVは、細胞間の通信を維持する上で重要な役割を果たします。
EV を抽出するには、まず組織全体サンプルを採取します。
組織を適切な解離バッファーで処理します。解離バッファーの成分は、組織内に存在する細胞外マトリックスを崩壊させ、最終的に細胞を緩めます。
懸濁液をホモジナイザーに移し、組織をさらに機械的に破壊して解離させ、細胞を放出します。
次に、ホモジネートを低速で遠心分離し、EVが上清に残っている間に細胞と組織断片をペレット化します。
上清を新しいチューブに入れます。高速で遠心分離して、大型のアポトーシス小体のほとんどをペレット化し、小型のEVを上清に残します。
EV含有上清をシリンジに集めます。成分をフィルタリングして、残っているアポトーシス小体を除去し、小型のEV集団を収集します。
濾液を遠心分離して、ペレット中のEVを取得します。残りのバッファーを廃棄し、EVペレットをスクロース溶液に再懸濁します。このソリューションは、EVがその形態を維持するための等張環境を作り出します。
次に、EV サスペンションをさらに使用するまで摂氏 4 度で保管してください。
まず、組織0.4〜1.0グラムごとにHibernate-E培地で10ミリリットルの解離バッファーを調製します。新鮮または凍結した組織全体を50ミリリットルのチューブ内のバッファーに加え、摂氏37度の温水浴で20分間インキュベートします。
この後、解離バッファーにプロテアーゼとホスファターゼ阻害剤を加えて、最終濃度を1倍にします。ティッシュを含む溶液をルーズフィットのDounceホモジナイザーに注ぎます。サンプルごとに約30回のゆっくりとしたストロークを使用して、組織を穏やかに解離させます。
次に、解離した組織と緩衝液を50ミリリットルのコニカルチューブに移します。500 x g および摂氏4度で5分間遠心分離して、細胞と残りの線維性または凝集性組織断片をペレット化します。
上清を清潔な50ミリリットルの円錐形チューブに移し、2,000 x gおよび摂氏4度で10分間遠心分離して、大きな細胞破片をペレット化して廃棄します。
この上清を清潔な50ミリリットルの円錐形チューブに移し、10,000 x g および摂氏4度で40分間遠心分離して、望ましくない大きな小胞または小さなアポトーシス小体をペレット化します。上清を0.45マイクロメートルのフィルターを通して、きれいな12ミリリットルの超遠心分離チューブにデカントします。
次に、サンプルを100,000 x g、摂氏4度で2時間超遠心分離して、小さなEVをペレット化します。上清をデカントし、超遠心分離チューブを5〜10分間逆さまにしておき、頻繁に軽くたたいてチューブの側面に残留液体を取り除きます。
次に、EVペレットを1.5ミリリットルの0.25モルスクロースバッファーに再懸濁します。チューブをパラフィルムで覆い、EVを溶液にボルテックスします。超遠心分離管を室温で15〜20分間揺らし、もう一度ボルテックスします。
チューブを1,000 x g未満の速度で短時間遠心分離し、チューブの底にある液体懸濁液を回収します。必要に応じて、懸濁液を摂氏4度で一晩保管します。