免疫染色結合型細胞ソーティングによるミクログリアの単離:蛍光活性化細胞ソーティングを用いたゼブラフィッシュ脳細胞からのミクログリアの単離法

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病理学的条件下では、活性化されたミクログリア(特殊な脳マクロファージ)は、病原体や細胞破片の除去に役立ちます。これらのミクログリアは、他のマクロファージと区別する独自の受容体を発現します。

ミクログリアを単離するには、さまざまな細胞型で特定の蛍光分子を発現するトランスジェニックゼブラフィッシュ由来の脳細胞培養から始めます。

培養物には、赤色蛍光を発現するニューロン、緑色蛍光を発現するマクロファージ、および非蛍光ミクログリアの混合物が含まれています。

次に、ブロッキング試薬を加え、断続的に攪拌しながら培養物をインキュベートします。ブロッキング試薬は細胞上の非特異的部位に結合し、バックグラウンドシグナルを減少させます。

次に、一次抗体を加えてインキュベートします。これらの抗体は、ミクログリア表面に発現する特定の受容体に結合します。

培養物を遠心分離し、結合していない抗体を含む上清を除去します。細胞ペレットを新鮮な培地に再懸濁します。

いて、蛍光色素結合二次抗体を加えてインキュベートします。これらの抗体は一次抗体に結合し、ミクログリア抗体複合体に赤色

を与えます。

培養物を遠心分離し、結合していない抗体を除去します。ペレットを新鮮な培地に再懸濁します。

細胞をろ過して破片を取り除きます。

蛍光活性化細胞選別機(FACS)を使用して、細胞サイズと蛍光に基づいてミクログリア細胞の集団を選別します。

離されたミクログリアは、さらなる用途に使用できます。

ミクログリアを免疫染色するには、0.3ミリリットルの培地Aと2%NGSを使用して細胞ペレットを再懸濁します。次に、細胞を3つの1.5ミリリットルのチューブに分割します:1つは自家蛍光を測定するための未染色細胞用、もう1つはミクログリアに対する二次抗体の非特異的結合を測定するためのもの、3つ目はテストとして

すべてのチューブに、1%の低エンドトキシン、アジドフリー(LEAF)を添加して、CD16 / CD32と免疫グロブリンのFcドメインとの相互作用をブロックします。次に、5分ごとに穏やかに撹拌しながら細胞を10分間インキュベートします。

次に、3番目のチューブに4C4抗体を加え、10分ごとに穏やかに攪拌しながら30分間インキュベートします。次に、チューブを300 x g、摂氏4度で10分間回転させます。

上清を廃棄した後、0.5ミリリットルの培地Aと2%NGSでペレットを1回洗浄してから、チューブを再度回転させます。細胞ペレットを0.5ミリリットルの培地Aと2%NGSで再懸濁し、次に1%LEAFを加え、5分ごとに穏やかに攪拌しながら細胞を10分間インキュベートします。

チューブ2と3に二次抗体を加え、チューブを暗所に置きます。チューブを回転させて上清を廃棄した後、0.5ミリリットルの培地Aと2%NGSを使用してサンプルを2回洗浄し、1ミリリットルの培地Aと2%NGSで細胞ペレットを再懸濁します。

細胞懸濁液を35ミクロンの細胞ストレーナーキャップに通し、光から保護された氷上の冷たい5ミリメートルのFACSチューブに移します。最後に、テキストプロトコルに従ってFACSソーティングとRNA抽出を実行します。

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Last updated: 18 July 2026