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循環無細胞DNAまたはcfDNAは、主にアポトーシスを起こしているがん細胞によって放出される短いDNA断片です。cfDNAは有望ながんバイオマーカーであり、血漿などの体液から単離できます。
cfDNAを単離するには、まずがん患者から血漿サンプルを採取します。次に、プロテイナーゼK、カオトロピック塩、およびキャリアRNAを含む溶解バッファーで血漿を処理します。カオトロピック塩はタンパク質を変性させ、タンパク質から結合したcfDNAを放出します。プロテイナーゼKはヌクレアーゼを不活性化し、それによってcfDNAの分解を最小限に抑えます。
その後、目的の結合バッファーをサンプルに加えます。固相シリカマトリックスを含むスピンカラムを真空装置に組み立てます。カラムにサンプルをロードします。真空を適用してサンプルをシリカ膜に通します。
キャリアRNAはチューブ壁に非特異的に結合します。この非特異的結合は、バッファー中の塩の存在とともに、cfDNAのシリカ膜への結合を促進し、cfDNAの回収率を高めます。タンパク質やその他の汚染物質は膜に保持されません。
次に、スピンカラムを収集チューブに置きます。遠心分離して残留ライセートを除去します。適切な洗浄バッファーと遠心分離機を加えて、カラムから塩と残留汚染物質を除去します。最後に、カラムを新しい収集チューブに移し、適切な溶出バッファーを追加します。遠心分離して、cfDNAを含む核酸をチューブに溶出します。
患者の血漿サンプルから循環無細胞DNAを単離するには、100マイクロリットルのプロテイナーゼKと800マイクロリットルのLysisバッファーを1マイクログラムのキャリアRNAを添加した溶解バッファーを1ミリリットルの患者血漿に加えます。溶液を30秒間完全にパルスボルテックスしてから、摂氏60度で30分間インキュベートします。インキュベーションの最後に、1.8ミリリットルの結合バッファーをチューブに加え、15〜30秒間のパルスボルテックスで完全に混合します。
氷上で5分間インキュベートした後、真空ポンプに接続された真空装置にシリカ膜カラムを挿入し、サンプルの漏れを防ぐために20ミリリットルのチューブエクステンダーを開いたカラムにしっかりと挿入します。インキュベーションの最後に、混合物をチューブエクステンダーに慎重に注ぎ、真空ポンプのスイッチを入れます。すべてのライセートがカラムを完全に通過したら、真空ポンプのスイッチを切り、圧力をゼロミリバールまで解放し、隣接するカラムを汚染することなくチューブエクステンダーを慎重に廃棄します。
カラムを遠心分離のために収集チューブに移し、残留ライセートを除去します。フロースルーを廃棄した後、600マイクロリットルのWash Buffer-1をカラムに加え、2回目の遠心分離を行います。フロースルーを廃棄した後、750マイクロリットルのWash Buffer-2でカラムを再度遠心分離します。フロースルーを廃棄した後、750マイクロリットルの96%〜100%エタノールをカラムに加え、追加の遠心分離を行います。
カラムを新しい2ミリリットルの収集チューブに移して別の遠心分離を行い、メンブレンカラムアセンブリを摂氏56度の新しい2ミリリットルの収集チューブに10分間配置します。インキュベーションの最後に、カラムを新しい1.5ミリリットルの溶出チューブに移し、50マイクロリットルの溶出バッファーをカラムに加え、室温で3分間インキュベートします。次に、回収した溶液を20,000 x g で1分間遠心分離して核酸を溶出します。